论文摘要
本文围绕杆状病毒泛素(ubiquitin,ubi)基因启动子结构及功能元件、杆状病毒IE1及hr3对晚期ubi和极晚期polh启动子的作用、参与杆状病毒晚期基因泛素表达的病毒因子、耐高温β-glucosidase在家蚕中的表达及纯化等方面作了一定的研究。 (1)杆状病毒ubiquitin基因启动子结构及功能元件的分析 克隆的启动子与BmNPV T3株及AcMNPV C6株ubi启动子的同源性分别为98.9%、99.5%,二者之间的同源性为92.8%。该序列中具有两个杆状病毒晚期基因转录起始位点TAAG和两个TATA box,三个CAAT。Northern blot证明杆状病毒ubi为晚期表达基因,在病毒感染后约12h或更早开始大量表达,并具有多个转录本。 ubi启动子区域缺失分析证明Acubi启动子对病毒因子的主要响应区在ATG上游-595~-382bp;而Bmubi启动子中则主要位于ATG上游-382~-124bp;在ATG上游-383~-187 bp的196 bp启动子片段,含有一个TAAG、CAAT基序和TATA box,也具有启动子的活性。 对ubi启动子进行突变分析发现,TATA box和TAAG突变后均能下调该启动子的活性,而CAAT突变却可以上调启动子的转录活性大约3至4倍左右。 (2)杆状病毒IE-1及hr3对晚期ubi和极晚期polh启动子的作用 在病毒感染的情况下,顺式连接或反式作用的hr3可分别上调ubi启动子活性达62和1.4倍左右;与ie-1共转染时,顺式连接的hr3可上调ubi启动子转录约210;反式作用则为9倍。ubi启动子序列中与ie-1响应的区段主要位于ATG上游-595~-382 bp之间。 对于极晚期polh启动子,在BmNPV感染的细胞中,顺式连接的hr3可增强报告基因表达283倍,反式作用为1.8倍左右;报告质粒与ie-1共转染时,顺式或反式的hr3可分别增强polh启动子控制的报告基因表达621倍和4.2倍。 用报告质粒转染家蚕5龄第二天的幼虫,hr3同样可显著提高ubi和polh启动子的转录活性。 (3)参与杆状病毒晚期基因ubi表达的病毒因子研究 通过构建BmNPV基因组文库,对参与ubi基因转录的病毒因子进行了筛选。单独的立即早期基因ie0、ie2、pe38等对ubi基因启动子没有激活作用,ie-1能反式激活ubi基因启动子的转录,但报告基因的表达量较低。在ie-1存在时,he65、lef-11、lef-6、p35及gp118-gp119,gp104-gp107片段均能启动ubi启动子的转录。 (4)耐高温β-glucosidase在家蚕中的表达及纯化 获得了能够表达β-glucosidase的重组病毒。酶活性为10 199.5 U/毫升血淋巴,19 797.4 U/头蚕。酶的最适反应温度为105 ℃,最适反应pH为5.0,在90-110℃保温10 min,酶活性没有大的影响,当温度升高到140℃时,酶活才会急剧下降;二价离子及高盐对表达的β-glucosidase活性均没有显著影响。初步纯化的上清酶液中含有约80%以上的重组蛋白。耐高温β-glucosidase在家蚕杆状病毒表达系统中的成功表达,为该酶的大规模生产及应用奠定了坚实的基础。
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摘要Abstract目录中英文缩略表第一章 研究目的、内容和意义1.1 研究目的1.2 研究内容1.2.1 杆状病毒AcMNPV和BmNPV ubiquitin启动子的特性分析1.2.2 杆状病毒IE-1及hr3对晚期ubiquitin和极晚期polyhedrin启动子的作用1.2.3 病毒因子对杆状病毒泛素基因转录的调控作用1.2.4 耐高温β-gulosidase在家蚕杆状病毒表达系统中的表达及纯化方法的建立1.3 研究意义第一部分 杆状病毒ubiquitin、polyhedrin基因启动子分析第二章 文献综述2.1 杆状病毒编码泛素的研究进展2.1.1 泛素依赖的蛋白水解系统2.1.2 病毒泛素基因的研究2.2 病毒基因启动子的研究2.2.1 病毒编码的启动子概况2.2.2 几种主要杆状病毒编码启动子研究进展2.2.3 泛素基因启动子研究情况2.3 杆状病毒晚期表达因子的研究2.3.1 参与病毒DNA复制的LEFs2.3.2 参与病毒DNA转录的LEFs2.3.3 其它转录LEFs2.4 杆状病毒泛素启动子的研究意义第三章 材料和方法3.1 细胞的冻存、复苏、传代及病毒繁殖3.1.1 冻存3.1.2 复苏3.2 PCR反应3.2.1 病毒基因组模板3.2.2 质粒模板3.2.3 普通PCR反应体系3.2.4 普通PCR反应条件3.2.5 定点突变PCR3.3 限制性内切酶反应3.4 玻璃奶法纯化回收DNA片段3.5 DNA的连接3.6 荧光素酶报告质粒的构建3.7 大肠杆菌感受态细胞的制备和质粒转化3.7.1 少量制备3.7.2 批量制备3.7.3 质粒转化3.8 质粒DNA抽提3.8.1 小量抽提3.8.2 大量抽提3.9 病毒基因组文库的构建3.9.1 基因组DNA的提取3.9.2 基因组DNA的部分消化和片段的回收3.9.3 连接,转化及扩增3.10 质粒DNA的转染3.11 细胞裂解和荧光素酶活性的测定、蛋白质定量3.11.1 细胞裂解3.11.2 Luciferase活性测定3.11.3 蛋白浓度测定3.12 细胞总RNA的抽提3.13 随机引物法标记杂交探针3.14 Northern blot3.14.1 电泳与转膜3.14.2 杂交、洗膜和冲片第四章 BmNPV、AcMNPV ubiquitin基因启动子的结构与功能分析4.1 材料和方法4.1.1 材料4.1.2 方法4.2 结果4.2.1 杆状病毒ubiquitin基因启动子的序列分析4.2.2 Northern blot分析4.2.3 ubiquitin基因启动子的功能分析4.3 讨论第五章 hr3、ie-1对杆状病毒晚期、极晚期启动子的激活作用5.1 材料方法5.1.1 报告质粒的构建5.1.2 IE-1与ubiquitin基因启动子顺式元件的结合5.1.3 ie-1、hr3对晚期ubiquitin基因启动子的作用5.1.4 ie-1、hr3对极晚期基因polh启动子的作用5.1.5 家蚕饲养和转染5.2 结果5.2.1 功能质粒的构建5.2.2 ie-1、hr3对晚期ubiquitin基因启动子的作用5.2.3 ubiquitin启动子中对ie-1的响应区段研究5.2.4 ie-1、hr3对极晚期polh基因启动子的作用5.3 讨论第六章 参与杆状病毒泛素基因转录的病毒因子的研究6.1 材料方法6.1.1 病毒和细胞6.1.2 BmNPV基因组文库构建、瞬时表达分析6.1.3 DNA共转染6.1.4 重组质粒的构建6.2 结果6.2.1 BmNPV文库DNA对ubiquitin启动子转录的影响6.2.2 对ubiquitin启动子具有激活作用的病毒因子6.2.3 病毒因子的突变分析6.3 讨论第二部分 耐高温葡萄糖苷酶在家蚕杆状病毒中的表达第七章 引言7.1 杆状病毒表达系统研究7.1.1 转移载体的发展7.1.2 亲本病毒及重组介质的改良7.1.3 外源蛋白表达的影响因素7.1.4 表达系统的应用7.2 高温β-葡萄糖苷酶的研究情况7.2.1 β-葡萄糖苷酶主要应用第八章 耐高温葡萄糖苷酶在家蚕杆状病毒表达载体系统中的表达、特性分析及纯化8.1 材料和方法8.1.1 耐高温古细菌(Pyrococcus furiosus)基因组DNA的提取8.1.2 重组表达质粒的构建8.1.3 超速离心法制备病毒Bm-BacPAK6基因组DNA8.1.4 Bm-BacPAK6基因组DNA的线性化8.1.5 共转染8.1.6 重组病毒的筛选、纯化和扩增8.1.7 PCR鉴定外源基因的整合8.1.8 家蚕接种和样品的初步纯化8.1.9 β-glucosidase表达时相8.1.10 SDS-PAGE电泳8.1.11 celB标准曲线的制作8.1.12 耐高温β-glucosidase的活性分析8.2 结果8.2.1 celB基因序列分析及重组质粒的构建8.2.2 同源重组及重组病毒的筛选8.2.3 重组病毒在家蚕中的表达及初步纯化8.2.4 表达的外源蛋白的特性分析8.3 讨论第九章 结论9.1 ubiquitin基因启动子克隆及功能分析9.2 IE-1、hr3对杆状病毒晚期ubiquitin基因启动子的调控9.3 IE-1、hr3对杆状病毒极晚期polh基因启动子的调控9.4 参与ubiquitin基因表达的病毒因子的鉴定9.5 耐高温β-glucosidase的表达及特性分析参考文献致谢作者简历附录
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杆状病毒泛素、多角体基因启动子分析及表达系统的应用
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