水稻硅同位素组成及分馏机理

水稻硅同位素组成及分馏机理

论文摘要

硅是地壳和土壤中含量仅次于氧的大量元素,从单细胞的藻类到维管植物,几乎所有的生命体中都可以发现含硅组织的存在。硅是硅藻生长的必需元素,虽然还没有被列为高等植物生长的必需元素,但它的有益作用已被广泛关注。硅不仅是生物体的重要的组成部分,而且还可以缓冲土壤pH值、调节大气CO2浓度。因此,植物硅生理和硅生物地球化学一直是人们研究的热点。研究表明,在岩石风化和生物吸收硅的过程中会发生硅同位素分馏,在不同的物质中留下独特的硅同位素特征值。近年来,随着硅同位素测试精度的提高和快速测量技术的出现,利用硅同位素信号来研究硅生物地球化学循环开始逐渐引起人们的关注。目前关于硅同位素的研究主要集中海洋和河流系统,已报道的生物数据主要是硅藻、海绵体等海洋生物。陆生植物对全球硅循环和硅同位素平衡有重要的影响,但是国际上关于陆生植物的硅同位素组成只有零星的报道,还未开展系统研究。本课题以水稻为对象,研究了陆生高等植物硅同位素组成的分市规律和分馏机理,得到以下主要结论:(1)试验中观察到两种类型的硅同位素分馏:1、在水稻内部不同组织器官之间存在硅同位素分馏。2、在水稻与其生长环境之间存在硅同位素分馏。(2)水稻不同器官间存在明显的硅同位素组成的差异。常规水培条件下水稻不同器官中δ30Si值变化范围是-2.7‰~2.1‰,各器官δ30Si值变化顺序为:茎<根<叶<稻壳<糙米。限定硅源水培条件下水稻不同器官中δ30Si值变化范围是-2.3‰~2.6‰,各器官δ30Si值变化顺序为:茎<根<叶<稻壳<糙米。可以看出,水稻各器官δ30Si值的变化顺序显示出一个明显的趋势。除根外,从下部器官到上部器官δ30Si值逐渐增加。水稻单独器官—稻叶不同部位同样存在明显的硅同位素组成的差异。δ30Si值的变化范围分别为:常规水培,-2.5‰~2.3‰;限定硅源水培,-2.6‰~1.7‰,两种培养方式稻叶各部位δ30Si值变化顺序相同,叶鞘<叶片基段<叶片中段<叶片顶段,也显示出从下部到上部逐渐增加的趋势。(3)植物体内硅同位素分馏的成因是硅随蒸腾流运输到各器官的过程中,相对质量较轻的28Si优先沉淀在蒸腾流先到达的器官,使得蒸腾流中剩余的溶解性硅酸富含30Si,随着蒸腾流的运输,硅沉淀的过程继续进行,溶解硅酸的δ30Si值逐渐升高,因而在硅后续沉淀的器官较先沉淀的器官有更高的δ30Si值,最终在蒸腾流末端沉淀的SiO2获得最高的δ30Si值,整个过程是一个类似于同位素动力学分馏的瑞利行为(Rayleigh-like behavior)。在水稻样品中观察到根部的δ30Si值比茎高。按照瑞利模型来解释植物体内的硅同位素分馏,根部δ30Si值应该最低,因为根是硅进入植株后最先沉淀的器官。结合硅生理研究数据分析显示,取样时在植物根部存有大量的溶解态硅,且这部分溶解硅比根部的沉淀硅有更高的δ30Si值,而所测量的根δ30Si值是根部溶解硅和沉淀硅的混合值,因此显示根部δ30Si值比茎高。(4)水稻与外界环境中溶解硅之间存在硅同位素分馏(植株30Si的亏缺)。这个现象指出在植物根部吸收硅时存在轻硅同位素优先进入植物的生物分馏作用,其成因可能是硅随质流进入植物时,轻硅同位素有更高的扩散系数。本次试验观察到水稻生物硅与外界溶解硅之间的硅同位素分馏系数(αPl-Sol)为0.9986~0.9996。(5)对植物内部及植物与环境之间硅同位素变化特征研究表明,在本试验条件下水稻对硅的吸收和体内运输都主要受蒸腾流的影响,硅吸收为随质流扩散的被动形式占主要成分。试验中观察到植物吸收硅时的生物分馏效应可以用来解释长江、黄河河水中δ30Si值较高的成因,也为研究全球硅同位素平衡提供了重要的基础数据。

论文目录

  • 致谢
  • 摘要
  • Abstract
  • 目次
  • 1 绪论
  • 1.1 硅简介
  • 1.2 陆生植物硅素营养研究进展
  • 1.2.1 硅在陆生植物中的含量
  • 1.2.2 陆生植物与硅循环
  • 1.2.3 陆生植物对硅的吸收
  • 1.2.4 硅在植物体内的分布、形态与结构
  • 1.2.5 植物硅素营养机理
  • 1.3 同位素化学简介及研究进展
  • 1.3.1 同位素化学特征
  • 1.3.2 同位素分析与应用
  • 1.4 硅同位素研究进展
  • 1.4.1 硅同位素简介
  • 1.4.2 硅同位素测试方法
  • 1.4.3 自然界硅同位素组成特征
  • 1.4.4 硅同位素分馏
  • 1.4.5 硅同位素生物地球化学研究与应用
  • 1.5 本课题研究目的、意义及研究内容
  • 1.5.1 研究目的和意义
  • 1.5.2 研究内容和技术路线
  • 2 水稻硅同位素分馏——常规水培
  • 2.1 材料与方法
  • 2.1.1 试验设计
  • 2.1.2 样品处理与测试
  • 2.2 结果与分析
  • 2.2.1 生物量与硅积累
  • 2.2.2 硅同位素组成
  • 2.3 讨论
  • 2.3.1 水稻吸收硅产生的同位素分馏
  • 2.3.2 水稻体内的硅同位素组成变化
  • 2.3.3 水稻硅同位素分馏模型
  • 2.3.4 植硅体硅同位素的应用
  • 2.4 小结
  • 3 水稻体内硅同位素分馏——限定硅源水培
  • 3.1 材料与方法
  • 3.1.1 试验设计
  • 3.1.2 样品处理与测试
  • 3.2 结果与分析
  • 3.2.1 生物量与硅积累
  • 3.2.2 硅同位素组成
  • 3.3 讨论
  • 3.3.1 水稻体内硅同位素组成变化
  • 3.3.2 水稻根部的硅同位素组成
  • 3.3.3 水稻整株与营养液的硅同位素分馏
  • 3.3.4 水稻硅同位素分馏的应用
  • 3.4 小结
  • 4 水稻与营养液间硅同位素分馏
  • 4.1 材料与方法
  • 4.1.1 试验设计
  • 4.1.2 样品处理与测试
  • 4.2 结果与讨论
  • 4.2.1 营养液硅含量和硅同位素组成的变化
  • 4.2.2 营养液与水稻间硅同位素分馏
  • 4.2.3 试验结果的应用
  • 4.3 小结
  • 5 稻叶硅同位素分馏
  • 5.1 材料与方法
  • 5.1.1 试验设计
  • 5.1.2 样品处理与测试
  • 5.2 结果与分析
  • 5.2.1 稻叶不同部位生物量和硅含量变化
  • 5.2.2 稻叶不同部位营养元素含量变化
  • 5.2.3 稻叶不同部位硅同位素组成变化
  • 5.3 讨论
  • 5.3.1 硅及其它营养元素在稻叶中的分配规律
  • 5.3.2 稻叶硅同位素分馏
  • 5.3.3 稻叶硅同位素组成的应用
  • 5.4 小结
  • 6 结论
  • 6.1 全文讨论和结论
  • 6.2 本论文创新点
  • 6.3 存在不足之处及未来工作展望
  • 参考文献
  • 作者简历
  • 相关论文文献

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