猪MEF2A基因的克隆及表达规律的研究

猪MEF2A基因的克隆及表达规律的研究

论文摘要

MEF2家族属于MADS超家族,广泛的存在于骨骼肌与心肌细胞中,是最早发现具有肌肉调控特性的DNA结合活性因子。MEF2是肌肉组织发生和发育过程中的重要调控因子,控制脊椎动物肌肉特异基因表达,在肌纤维发育和神经系统发育中都起重要调节作用。基于肌细胞增强子在调控细胞增殖和肌肉分化中的重要作用,进一步揭示其功能和作用机理,有助于更好的理解肌肉组织的发生与发育模式。本研究采用比较基因组学和生物信息学等方法,克隆MEF2A基因并对其结构进行分析;通过构建分子进化树来研究MEF2A基因的系统发育;采用Real time PCR方法,研究了纯种大白猪MEF2A基因不同组织不同发育阶段的表达规律和MEF2家族4个基因的组织表达规律。主要研究结果如下:1.克隆了猪MEF2A基因cDNA序列(Genbank Accession Number:EF576923),基因编码区全长1524 bp,编码508个氨基酸,分子量为50844.98 Da,其结构上存在一个MADS-box的结构域、位于10-243附近。2.对猪MEF2家族基因的4个基因进行多重序列比对,发现一个极高的同源性区域,此处主要为MADS-box区。4个基因的MADS保守结构域同源比对分析,表明MEF2B与MEF2D的MADS-box结构域的同源性最高为100%,MEF2A与MEF2B和MEF2D的MADS-box结构域分化程度最大,同源性为89%。3.基于猪MEF2A基因的cDNA序列,依据Neighbor-Joining算法,构建了9个物种分子进化关系树。4.采用Real time PCR的方法对90、180、270日龄纯种大白猪的MEF2A基因心、肝、胃、脾、肾、肺、大肠、小肠、背肌、腿肌10个组织表达量进行了检测:表明MEF2A基因在肌肉组织中表达量较高且稳定,在其他组织中表达量较低,肝中的表达量最低。5.同样方法对90日龄MEF2家族4个基因进行了10个组织的表达量检测,4个基因组织表达上具有共同特征:肌肉组织(背肌、腿肌、心肌)表达量较高,脏腑肌(胃、大肠、小肠)表达量次之,其他组织中表达量较低;同时,也对同一组织中4个基因的表达情况进行了比较。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 1 前言
  • 1.1 骨骼肌发生和发育过程中的调控因子
  • 1.2 骨骼肌发育正调控因子一肌细胞增强因子2(MEF2)
  • 1.2.1 MEF2 的概念与结构
  • 1.2.2 MEF2 的生理功能
  • 1.2.3 MEF2 家族基因的定位与多态性研究
  • 1.2.4 MEF2 家族基因表达和激活的调节
  • 1.3 实时荧光定量PCR
  • 1.3.1 实时荧光定量PCR 检测方式
  • 1.3.2 荧光定量PCR 的定量方法
  • 1.3.3 2 -△△CT 方法的原理
  • 1.3.4 实时荧光定量PCR 技术的应用
  • 1.4 本项研究的目的意义
  • 2 材料与方法
  • 2.1 实验材料
  • 2.1.1 实验动物
  • 2.1.2 组织样品
  • 2.1.3 主要仪器设备
  • 2.1.4 主要药品、试剂及配置
  • 2.2 实验方法
  • 2.2.1 总RNA 提取
  • 2.2.2 RT-PCR 反应
  • 2.2.3 引物设计与合成
  • 2.2.4 PCR 反应
  • 2.2.5 PCR 产物的克隆测序
  • 2.2.6 Real Time PCR 反应
  • 2.2.7 主要分子生物学软件及统计分析软件
  • 2.2.8 相关生物信息学网站
  • 3 结果与分析
  • 3.1 MEF2A 基因的克隆及生物信息分析
  • 3.1.1 MEF2A 基因的克隆
  • 3.1.2 MEF2A 的结构、功能分析
  • 3.1.3 MEF2A 基因分子进化分析
  • 3.2 MEF2A 基因表达规律分析
  • 3.2.1 RNA 的质量检测
  • 3.2.2 MEF2A 基因组织表达谱
  • 3.2.3 MEF2B 基因组织表达谱
  • 3.2.4 MEF2C 基因组织表达谱
  • 3.2.5 MEF2D 基因组织表达谱
  • 3.2.6 定量检测
  • 3.2.7 统计分析
  • 4 讨论
  • 4.1 猪MEF2A 基因的克隆分析
  • 4.2 猪MEF2A 基因的进化分析
  • 4.3 猪MEF2A 及其家族基因的表达规律分析
  • 4.4 关于荧光定量方法的讨论
  • 5 结论
  • 致谢
  • 参考文献
  • 攻读学位期间发表的学术论文
  • 相关论文文献

    • [1].兴义鸭MEF2A基因mRNA在组织中表达研究[J]. 畜牧与兽医 2017(07)
    • [2].兴义鸭MEF2A基因克隆及生物信息学分析[J]. 基因组学与应用生物学 2016(04)
    • [3].MEF2A基因与冠心病易感性的关系[J]. 中国实用医药 2015(02)
    • [4].马身猪MEF2A基因4种可变剪接体的克隆和生物信息学分析[J]. 中国畜牧兽医 2017(04)
    • [5].黄牛MEF2A基因克隆及真核表达载体构建[J]. 畜牧兽医学报 2013(01)
    • [6].中国人群MEF2A基因突变与冠心病易感性的关系[J]. 华中科技大学学报(医学版) 2010(04)
    • [7].MEF2A基因多态性与重庆地区汉族人群冠心病的相关性[J]. 广东医学 2012(15)
    • [8].MEF2A启动子多态性对转录活性及冠心病易感性的影响[J]. 基础医学与临床 2015(11)
    • [9].兴义鸭MEF2A基因的SNPs筛选及其生物信息学分析[J]. 广东农业科学 2015(04)
    • [10].MEF2A基因多态性位点及其冠心病相关性[J]. 中外医疗 2014(30)
    • [11].MEF2A基因单核苷酸多态性与早发冠心病血瘀证的相关性研究[J]. 辽宁中医杂志 2015(06)
    • [12].猪MEF2a基因的克隆与表达[J]. 畜牧兽医学报 2009(08)
    • [13].牦牛MEF2A基因克隆与差异性表达分析[J]. 家畜生态学报 2020(02)
    • [14].CDKN2A、CDKN2B、MEF2A、VEGF基因表达与冠状动脉粥样硬化性心脏病发生的相关性[J]. 中国医科大学学报 2016(06)
    • [15].粤北地区早发冠心病与MEF2A基因11外显子的关系[J]. 心脏杂志 2012(06)
    • [16].普通人群急性心肌梗死患者MEF2A第11外显子的基因变异研究[J]. 中国心脏起搏与心电生理杂志 2008(02)
    • [17].MEF2A RNA干扰对小鼠主动脉内皮细胞MEF2A表达及细胞间黏附分子-1、血管细胞黏附分子-1表达的影响[J]. 郑州大学学报(医学版) 2016(04)
    • [18].优质鸡MEF2A基因的SNPs检测及其与屠体性状的相关研究[J]. 畜牧兽医学报 2009(08)
    • [19].MEF2A基因第11外显子CAG重复序列多态性与冠心病易感性研究[J]. 诊断学理论与实践 2008(04)
    • [20].MEF2A第11号外显子CAG三联核苷酸重复序列的改变与其转录激活活性的相关性[J]. 医学研究杂志 2009(04)
    • [21].MEF2A基因CAG三核苷酸重复序列与冠状动脉病变及严重程度的相关性[J]. 中国动脉硬化杂志 2010(04)
    • [22].MyoG和MEF2a基因多态性聚合效应对鸭屠宰性状的影响[J]. 中国农业科学 2016(18)
    • [23].MEF2A第11号外显子四个特殊变异位点的生物学活性研究[J]. 中国分子心脏病学杂志 2009(03)
    • [24].牵张力对C2C12细胞株MEF2A基因表达的影响[J]. 天津医科大学学报 2015(04)
    • [25].MEF2A基因第11外显子多态性与颈动脉斑块易损性的关联分析[J]. 浙江医学 2018(21)
    • [26].MEF2a基因在肌肉组织中的表达研究[J]. 中国农学通报 2009(04)

    标签:;  ;  ;  ;  

    猪MEF2A基因的克隆及表达规律的研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢