乳酸菌食品级基因表达载体的构建

乳酸菌食品级基因表达载体的构建

论文摘要

乳酸菌(Lactic bacteria)大多是益生菌,食品级的乳酸菌工程菌本身及其表达产物可直接应用于食品工业、医药工业和保健业等领域。乳酸菌食品级表达载体的构建,对一些有益蛋白的表达具有诱人的发展前景。本课题从具nisin抗性的乳酸菌中扩增nisin抗性基因(NSR)作为食品级基因表达载体的选择标记,代替乳酸菌表达载体pMG36e中的红霉素抗性标记,构建乳酸菌食品级基因表达载体pMG36n,并电转化乳酸菌。通过含nisin和溴甲酚紫的培养基,从鲜牛奶中初步筛选得到5株具nisin抗性的菌株,命名为N1、N2、N3、N4、N5;同时,对实验室保藏的乳酸菌进行筛选,其中乳酸乳球菌乳脂亚种(Lactococcus lactis subsp. cremons)和M2(嗜热链球菌,Streptococcusthermophilus)不具有nisin抗性,且不含质粒,因此,构建以nisin抗性基因作为选择标记的载体后,两株菌可以作为受体菌。分别以N1、N2、N3、N4、N5的基因组和质粒为模板扩增NSR基因保守序列,只有以N1、N2、N5的质粒为模板时,扩增出约400bp的片段,说明NSR基因位于质粒上,而不是基因组中。对N1、N2、N5进行生理生化和16S rDNA鉴定,结果表明三者均为乳酸乳球菌乳亚种。采用抑菌圈法研究N1、N2、N5的发酵液,结果表明3株菌的发酵液对金黄色葡萄球菌均无抑制作用,即3株菌本身都不产生nisin。将3株菌的16SrDNA测序结果提交GenBank,序列号分别为HQ647114、HQ647115、HQ647116。以N1、N2、N5质粒为模板,扩增包含起始密码子和转录终止子的NSR全长序列,得到约1000bp左右的片段。将N1的NSR产物连接到pMD19-T载体进行测序,测序结果提交GenBank,序列号为HQ701130;通过生物信息学分析得知,N1菌株NSR基因全长1014bp,含A碱基383个,C碱基149个,G碱基175个,T碱基307个;第4960位是开放阅读框(ORF),可编码318个氨基酸;在第12个氨基酸左右有一个明显的疏水区;第1030个氨基酸间可能有一个跨膜结构。将N1菌株的NSR基因插入载体pMG36e的多克隆酶切位点,CaCl2法转化大肠杆菌DH5α,NSR基因能使宿主菌具有nisin抗性,可以作为筛选标记。采用PCR法扩增载体pMG36e中除红霉素抗性基因以外的序列——pMG36e-片段;将pMG36e-片段和N1的NSR全长基因进行连接,得到重组食品级载体pMG36n;采用电转化法在电压2000V、电容25μF、电击常数5ms的条件下将pMG36n成功转入乳酸乳球菌乳脂亚种,转化菌株可在含nisin的选择性培养基上生长。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第一章 前言
  • 1.1 食品级表达载体
  • 1.1.1 糖类利用选择性标记
  • 1.1.2 营养缺陷型互补标记
  • 1.1.3 乳酸菌抗性筛选标记
  • 1.1.4 其他食品级选择标记
  • 1.2 食品级宿主菌
  • 1.2.1 乳球菌
  • 1.2.2 乳杆菌
  • 1.2.3 双歧杆菌
  • 1.3 食品级诱导物
  • 1.4 乳酸菌的食品级表达系统
  • 1.4.1 Nisin 诱导的食品级表达系统
  • 1.4.2 糖诱导的食品级表达系统
  • 1.4.3 嘌呤诱导的食品级表达系统
  • 1.4.4 温控食品级表达系统
  • 1.4.5 pH 值诱导食品级表达系统
  • 1.5 本课题研究的目的和意义
  • 1.5.1 研究目的
  • 1.5.2 研究意义
  • 1.6 研究内容
  • 第二章 实验材料与方法
  • 2.1 实验材料
  • 2.1.1 实验菌株
  • 2.1.2 主要试剂
  • 2.1.3 工具酶
  • 2.1.4 实验常用溶液
  • 2.1.5 实验仪器设备
  • 2.1.6 分析工具
  • 2.2 实验方法
  • 2.2.1 培养基的制备
  • 2.2.2 nisin(乳链菌肽)抗性菌株的筛选
  • 2.2.3 nisin 抗性基因(NSR)保守序列的克隆
  • 2.2.4 nisin(乳链菌肽)抗性菌株的鉴定
  • 2.2.5 nisin(乳链菌肽)抗性菌株发酵液的研究
  • 2.2.6 nisin 抗性基因(NSR)全长序列的克隆及测序
  • 2.2.7 NSR 全长序列的生物信息学分析
  • 2.2.8 NSR 基因在大肠杆菌中的表达
  • 2.2.9 pMG36n 载体的构建
  • 2.2.10 pMG36n 质粒的电转化
  • 第三章 结果与分析
  • 3.1 nisin 抗性菌株的筛选
  • 3.1.1 nisin 原液活性的验证
  • 3.1.2 实验室保藏菌种 nisin 抗性的鉴定
  • 3.1.3 鲜奶中 nisin 抗性菌的筛选
  • 3.2 nisin 抗性基因(NSR)保守序列的克隆
  • 3.2.1 nisin 抗性菌质粒的提取
  • 3.2.2 nisin 抗性菌基因组的提取
  • 3.2.3 nisin 抗性基因(NSR)保守序列的扩增
  • 3.3 nisin 抗性菌株的鉴定
  • 3.3.1 nisin 抗性菌株的生理生化鉴定
  • 3.3.2 nisin 抗性菌株的 16S rDNA 鉴定
  • 3.4 nisin 抗性菌株抗性分子机制的初步判定
  • 3.5 nisin 抗性基因(NSR)全长序列的克隆及生物信息学分析
  • 3.5.1 NSR 全长序列的扩增
  • 3.5.2 NSR 全长序列切胶纯化
  • 3.5.3 重组质粒的检测
  • 3.5.4 重组质粒的鉴定
  • 3.5.5 NSR 全长基因测序结果
  • 3.5.6 NSR 序列的生物信息学分析
  • 3.6 NSR 基因在大肠杆菌中的表达
  • 3.6.1 pMG36e 质粒的提取及含酶切位点的 NSR 基因的扩增
  • 3.6.2 NSR 基因和 pMG36e 质粒双酶切
  • 3.6.3 NSR 和 pMG36e 的连接以及重组质粒 pMG36e-NSR 的 PCR 鉴定
  • 3.7 pMG36n 载体的构建及电转化
  • 3.7.1 含相同酶切位点的 NSR 基因(NE)和 pMG36e-片段的扩增
  • 3.7.2 NE 片段和 pMG36e-片段的双酶切
  • 3.7.3 NSR 和 pMG36e-的连接以及重组质粒 pMG36n 的 PCR 鉴定
  • 第四章 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 附录
  • 个人简历
  • 攻读硕士学位期间发表的学术论文
  • 相关论文文献

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