论文摘要
生产、生活污水的排放使湖泊和其他自然水体中的营养盐类的浓度增加,水体富营养化在世界范围内频繁发生,部分地区的发生频率和程度呈现增长的趋势。有害水华中的某些主要藻类产生的微囊藻毒素,是一种强烈的肝脏肿瘤促进剂。在藻类死亡过程中会从藻细胞中释放到水中,鉴于微囊藻毒素对人体健康和生态环境的危害,世界卫生组织将水中MC-LR的检出限定为1μg/L。本研究从实验室扩大培养的铜绿微囊藻(Microcystis aeruginosa)中分离并纯化MC-LR供实验使用。系统研究了所用的固相萃取方法对MC-LR的提取效率,结合高效液相色谱和质谱分析方法,研究了亚硝酸盐以及紫外结合亚硝酸盐对MC-LR的降解和对铜绿微囊藻生长和产毒的影响。主要结论如下:1.在使用HPLC方法检测藻毒素过程中,MC-LR样品中甲醇含量对MC-LR检测结果有着显著的影响。在不同比例的甲醇中,相同含量的MC-LR在HPLC的检测结果不同。在甲醇比例在80%以下时,相同浓度MC-LR的HPLC检测响应值(峰面积)随着甲醇的比例的增加而缓慢增加。到80%时达到最大,之后随甲醇比例的继续增加而显著降低。因此,样品中甲醇的含量对MC-LR的检测结果有着显著的影响,在使用HPLC方法检测时应严格控制样品中甲醇的含量,以使检测结果具有准确性和可比性。2.实验首次观测到在HNO2存在的情况下,MC-LR发生降解,并初步研究了MC-LR与HNO2反应的准一级动力学特征,探索了不同条件(反应溶液的pH、NaNO2浓度以及MC-LR浓度)对MC-LR降解速率的影响,并结合LC-MS研究了亚硝酸盐对MC-LR的降解动力学及反应机理。在pH为1.73,NaNO2浓度为5 mmol/L, MC-LR浓度为9.78 mg/L时MC-LR的降解速率最快,5h内MC-LR的去除率达到94.89%。MC-LR降解的准一级动力学速率常数k随着pH值的升高而降低。本实验中,在NaNO2浓度小于5 mmol/L时,MC-LR降解的反应速率常数k随NaNO2浓度升高而增加,但在NaNO2浓度大于5 mmol/L时,k随NaNO2浓度升高而降低,亦即k在NaNO2浓度为5 mmol/L时达到最大。MC-LR浓度对其降解无显著影响。HNO2对MC-LR的降解机理主要是破坏Adda基团的共轭二烯双键,和苯环发生亲电加成反应和与MC-LR分子中-NH2末端发生的重氮化反应。3.在UV365/NaNO2对MC-LR的降解过程中,MC-LR的降解可以分别用准一级动力学方程和二级动力学方程拟合,但使用准一级动力学方程拟合的相关系数更高。MC-LR的降解速率分别随着pH值降低而增加,随着NaNO2浓度的升高而增加,随着紫外强度的增加而增加,随着MC-LR浓度的增加而降低。结合质谱分析结果提出了UV365/对MC-LR的具体反应机理:MC-LR分子中的共轭双键和Adda基团末端的苯环是降解过程中的主要反应位点,通过与OH自由基和NO自由基之间的亲电加成反应达到了降解的目的。MC-LR分子中的甲氧基和环状分子中的双键也是主要的反应位点。在紫外的作用下,NaNO2和MC-LR之间的反应可以使这两类污染物在短期内从水中去除。4.文章初步探索了UV365/NaNO2对铜绿微囊藻生长和产毒的影响。在实验室培养的条件下,铜绿微囊藻在15d内进入生长的稳定期。结果表明,在硝酸盐充足的条件下,当向培养基中加入较高浓度的亚硝酸盐(30mg/L)时,其浓度会随时间的增加而降低,当向培养基中加入较低浓度的亚硝酸盐(10mg/L和20mg/L)时,其浓度会随时间的增加而升高。亚硝酸盐对铜绿微囊藻的生长和产毒影响不显著,UV365对其光和速率和胞内毒素含量有着显著的影响。
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摘要Abstract缩写词对照表第一章 引言1. 水体富营养化2 MC-LR及其危害3 自然界中氮元素与亚硝酸盐含量3.1 自然界中的亚硝酸盐3.2 富营养化水中的亚硝酸盐4 MC-LR检测方法研究综述4.1 化学仪器分析法4.2 生物分析法5 MC-LR降解方法研究综述5.1 物理法5.2 生物降解法5.3 化学降解法5.4 高级氧化技术365/NaNO2反应体系研究进展'>5.5 UV365/NaNO2反应体系研究进展6 研究目的和意义7 技术路线第二章 铜绿微囊藻细胞内MC-LR提取和HPLC检测1 材料与试剂1.1 供试藻种1.2 试剂1.3 仪器2 实验方法与步骤2.1 从铜绿微囊藻细胞中提取并纯化MC-LR2.2 MC-LR检测2.3 MC-LR在不同比例甲醇溶液中的标准曲线3 结果与分析3.1 MC-LR的HPLC检测结果3.2 铜绿微囊藻细胞中MC-LR含量3.3 MC-LR的标准曲线3.4 MC-LR的回收率3.5 不同甲醇含量的溶液中MC-LR的HPLC标准曲线4 讨论4.1 MC-LR标准样品的制备4.2 HPLC检测的流动相选择4.3 固相萃取过程中洗脱液的选择5. 本章小结2对MC-LR的降解'>第三章 HNO2对MC-LR的降解1 实验材料与试剂1.1 供试藻种1.2 化学试剂1.3 仪器与设备2 实验方法与步骤2.1 MC-LR提取和溶液制备2.2 MC-LR的HPLC检测2.3 实验设计2.4 不同参数对MC-LR降解的影响3 结果与分析3.1 降解过程中MC-LR的HPLC检测结果3.2 pH对MC-LR降解的影响2浓度对MC-LR降解的影响'>3.3 NaNO2浓度对MC-LR降解的影响3.4 MC-LR浓度对其降解速率的影响3.5 降解动力学分析3.6 反应速率常数与溶液中理论亚硝酸浓度的关系4 降解机理分析4.1 反应途径1:酸催化亚硝化反应4.2 反应途径2:重氮化反应4.3 反应途径2:亚硝酸与Adda基团末端的苯环反应5 讨论6 小结365/HNO2对MC-LR的降解'>第四章 UV365/HNO2对MC-LR的降解1 实验材料与试剂1.1 供试藻种1.2 化学试剂1.3 仪器与设备2 实验方法与步骤2.1 MC-LR提取和溶液制备2.2 MC-LR检测2.3 实验方法与步骤2.4 各参数对MC-LR降解的影响3 实验结果与分析365/HNO2作用下MC-LR的HPLC检测结果'>3.1 UV365/HNO2作用下MC-LR的HPLC检测结果3.2 pH值对MC-LR降解的影响2浓度对MC-LR降解的影响'>3.3 NaNO2浓度对MC-LR降解的影响3.4 MC-LR浓度对其降解的影响3.5 紫外强度对MC-LR降解的影响3.6 降解动力学分析365/硝酸对MC-LR降解的协同作用'>3.7 UV365/硝酸对MC-LR降解的协同作用3.8 中间产物分析4 降解机理分析4.1 反应途径1:OH自由基攻击Adda基团的双键4.2 反应途径2:OH自由基攻击Adda基团的苯环4.3 反应途径3:NO自由基与Adda基团的苯环加合4.4 反应途径4:OH自由基与MC-LR分子中Adda基团上的甲氧基反应4.5 反应途径5:OH自由基与MC-LR分子七肽环中的双键反应5 小结365/NaNO2对铜绿微囊藻生长和产毒的影响'>第五章 UV365/NaNO2对铜绿微囊藻生长和产毒的影响1 实验材料与试剂1.1 供试藻种1.2 化学试剂1.3 仪器与设备1.4 光照培养装置1.5 紫外光源2 实验方法与步骤2.1 铜绿微囊藻的培养365/NaNO2对铜绿微囊藻细胞总数的影响'>2.2 UV365/NaNO2对铜绿微囊藻细胞总数的影响2.3 铜绿微囊藻细胞中叶绿素a含量的测定365/NaNO2对铜绿微囊藻光合速率的影响'>2.4 UV365/NaNO2对铜绿微囊藻光合速率的影响365/NaNO2浓度对铜绿微囊藻胞内MC-LR含量的影响'>2.5 UV365/NaNO2浓度对铜绿微囊藻胞内MC-LR含量的影响2.6 培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量的测定3 结果与分析365/NaNO2对铜绿微囊藻细胞生长的影响'>3.1 UV365/NaNO2对铜绿微囊藻细胞生长的影响365/NaNO2对铜绿微囊藻产生MC-LR的影响'>3.2 UV365/NaNO2对铜绿微囊藻产生MC-LR的影响365/NaNO2对培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量的影响'>3.3 UV365/NaNO2对培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量的影响4 讨论4.1 亚硝酸盐对铜绿微囊藻生长的影响365/NaNO2对铜绿微囊藻生长的影响'>4.2 UV365/NaNO2对铜绿微囊藻生长的影响4.3 培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量的变化5 小结第六章 结论与展望1 主要结论1.1 MC-LR的HPLC检测结果与溶液中甲醇含量的关系1.2 使用固相萃取方法纯化MC-LR过程中洗脱液对MC-LR检测结果的影响2对MC-LR的降解作用'>1.3 HNO2对MC-LR的降解作用365/HNO2对MC-LR的降解机理'>1.4 UV365/HNO2对MC-LR的降解机理365/NaNO2对铜绿微囊藻生长和产毒的影响'>1.5 UV365/NaNO2对铜绿微囊藻生长和产毒的影响2 主要创新点3 自然降解实验设计的限制因素和存在的主要问题3.1 实验模拟条件与自然条件下藻类的生长环境的差别3.2 无法模拟自然水体中紫外的强度亚硝酸盐含量和pH值4 后续研究展望4.1 紫外/亚硝酸体系在天然有机物降解中的贡献4.2 紫外/亚硝酸体系与铜绿微囊藻/MC-LR的关系4.3 水华暴发前后氮元素形态变化参考文献攻读学位期间发表的学术论文及所获专利致谢
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标签:紫外论文; 亚硝酸论文; 微囊藻毒素论文; 动力学论文; 机理论文; 铜绿微囊藻论文; 生长论文; 产毒论文;
UV365/NaNO2对Microcystin-LR的降解机理及对铜绿微囊藻生长和产毒的影响
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