从生化水平探讨MC-RR及蓝藻水华粗提物经口染毒对小鼠肝脏的毒性效应

从生化水平探讨MC-RR及蓝藻水华粗提物经口染毒对小鼠肝脏的毒性效应

论文摘要

随着世界经济的快速发展,环境水体的污染已成为全世界各国普遍关注的问题。蓝藻水华的频繁发生是导致水环境恶化的主要因素之一,其释放到水体中的大量毒素对人和动物造成了极大危害。微囊藻毒素(Microcystin,MC)是蓝藻水华产生的一组具有肝脏毒性的单环多肽毒素,由于其氨基酸组成的多变性,迄今已发现80多种毒素的异性体,其中以MC-LR、RR和YR最为常见。MC是一类高急性毒性和强促癌性的毒素,其急性毒性是导致动物肝细胞结构破坏、窦状小管结构降解,最终引起肝出血导致个体死亡;而其慢性毒性则是引起慢性肝损伤。此外,MC对动物心、肺、肾以及生殖系统的毒性作用也有广泛报道。人和动物可能通过饮用和进食被毒素污染的水和水生生物经口途径摄入MC,所以在分子水平研究经口暴露MC的毒性作用及致毒机制具有重要的理论和现实意义。目前公认的MC致毒机制之一是抑制体内重要的蛋白磷酸酶1(PP1)和2A(PP2A)的活性,引起体内蛋白的过度磷酸化,导致众多细胞信号传递通路异常,从而产生多种毒性效应。大量研究发现,MC可诱导多种类型的细胞和动物肝组织发生细胞凋亡,提示MC的凋亡诱导作用可能与其毒性作用密切相关,但具体的凋亡诱导机制还不清楚。研究发现不同浓度的MC暴露在体内引起细胞凋亡的机制存在差异,而氧化应激和线粒体损伤可能是MC诱导细胞凋亡主要原因,线粒体途径可能是MC诱导凋亡的主要通路。内质网途径是近年才被证明的内源性细胞凋亡通路,由过度的内质网应激引起。当多种因素引起内质网应激发生,且强度超过细胞内质网自稳定范围时,细胞凋亡的内质网通路被开启。目前关于内质网凋亡通路是否参与MC诱导的细胞凋亡还未见报道。MC家族成员众多,各个成员由于结构的不同,其毒性作用及致毒机制存在差异。MC-RR是蓝藻藻水华释放到水体中主要MC之一,其对生物的毒性作用不可忽视,但目前在活体水平对其经口途径的毒性研究,尤其在哺乳动物中的报道还不多。此外,生活在蓝藻水体爆发水体中生物,并非处于单一毒素的暴露之中,水华释放到水体中的众多有害成分对它们有着复杂的毒性作用。基于此,本研究对MC家族中的重要成员MC-RR以及蓝藻水华粗提物经口途径暴露的毒性作用及致毒机制进行了探讨。本研究中,MC-RR和蓝藻水华粗提物分别以4.6,23,46,93,186μg/kg和4.6,23,46,93μg/kg·MC(RR+LR)的剂量经灌胃方式连续7天染毒小鼠,第八天处死小鼠后摘取肝脏对MC-RR和蓝藻水华粗提物对肝脏的毒性作用及其凋亡机制进行研究:采用TUNEL法测定MC-RR诱导肝组织细胞的凋亡率,通过检测各种凋亡相关(蛋白因子)在染毒小鼠肝脏中的表达或活性变化来探究它们在细胞凋亡过程中的作用,包括用普通显微镜直接观察MC-RR染毒后小鼠肝组织HE染色的结构变化,通过ROS底物DCFH-DA测定染毒后小鼠肝脏ROS的改变,通过测定MDA的含量来检测毒素暴露小鼠脂质过氧化程度,用calpain和PP2A活性检测试剂盒测定MC-RR染毒小鼠肝组织calpain和PP2A酶活性的变化,用免疫印迹法(western blot)检测PP2A-A和C亚基、Bax、Bcl-2、p53、HSP70以及与内质网应激相关蛋白GRP78和CHOP的表达变化。实验结果如下:1.MC-RR染毒小鼠后,小鼠肝组织切片的TUNEL检测结果表明,从46μg/kg染毒组开始,小鼠肝脏细胞的凋亡率出现显著升高并与剂量相关。2.MC-RR染毒小鼠后,在93μg/kg染毒组小鼠肝脏出现ROS显著升高,但所有染毒组未见MDA的明显改变。3.MC-RR染毒小鼠后,所有染毒组均未发现小鼠肝组织PP2A活性和其A、C亚基表达的明显改变。4.MC-RR染毒小鼠后,与对照相比,染毒小鼠肝组织中Bcl-2表达出现下降,并从23μg/kg染毒组开始下降具有显著性;Bax表达在46μg/kg和93μg/kg染毒组出现显著上升;同时Bax/Bcl-2比值从23μg/kg染毒组开始也显著性升高;此外,p53蛋白表达在93μg/kg染毒组出现显著上升。5.MC-RR染毒小鼠后,与对照组相比,小鼠肝组织GRP78和HSP70均在93μg/染毒组表达显著升高,但在所有染毒组CHOP的表达未见明显变化。6.MC-RR染毒小鼠后,所有染毒组小鼠肝组织的calpain活性与对照组相比未见明显改变。7.蓝藻水华粗提物染毒小鼠后,与对照相比,染毒组小鼠肝组织PP2A A亚基表达从23μg/kg染毒组开始出现剂量依赖性显著升高,同时Bax表达呈现明显上升趋势,从23μg/kg染毒组开始表达显著上升;相反,所有染毒组Bcl-2表达改变不明显,但Bax/Bcl-2比值出现显著上升。8.蓝藻水华粗提物染毒小鼠后,与对照组相比,所有染毒组小鼠肝组织均未发现ROS和MDA的显著变化。9.蓝藻水华粗提物染毒小鼠后,与对照组相比,小鼠肝组织GRP78和HSP70均在93μg/kg染毒组表达显著升高,但在所有染毒组CHOP的表达未见明显变化。结论:MC-RR经口染毒7天未发现明显的氧化损伤及PP2A活性的抑制表明它们可能不是MC-RR对小鼠肝组织产生的主要毒性效应;毒素可诱导小鼠肝组织发生细胞凋亡,诱导效应与染毒剂量相关,而与之同时发生的p53水平升高、促凋亡蛋白Bax的升高、抗凋亡蛋白Bcl-2的下降表明毒素诱导凋亡的机理与线粒体途径密切相关;毒素引起了轻度的内质网应激但内质网凋亡信号通路尚未启动。蓝藻水华粗提物经口染毒7天可引起小鼠肝组织发生轻度内质网应激并引起Bax、HSP70表达的显著改变;对PP2A A亚基蛋白水平的明显影响表明其毒性作用可能与干扰了PP2A介导的众多细胞信号通路的调节有关。无论是纯毒素RR还是蓝藻水华粗提物,即使是低剂量经口染毒都可以对小鼠产生影响,预示经口摄入的毒素对动物的毒性是不容忽视的;而蓝藻水华粗提物对同类指标产生的影响与纯毒素相比有类似也有不同,提示对于天然水体水华产生的潜在危害需要进一步全面评价。

论文目录

  • 致谢
  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 缩略语
  • 目次
  • 1 前言
  • 2 实验材料
  • 2.1 动物染毒试剂
  • 2.2 组织匀浆用液(用于ROS和MDA检测)
  • 2.3 活性氧(reactive oxygen species,ROS)检测相关试剂
  • 2.4 丙二醛(malondialdehyde,MDA)检测相关试剂
  • 2.5 蛋白磷酸酶ZA活性检测相关试剂
  • 2.6 Calapala 活性检测试剂盒
  • 2.7 TUNEL(TdT-mediated dUTP-biotin nick and labeling)实验用液
  • 2.8 Western Blot相关用液
  • 2.9 Bradford法蛋白定量试剂
  • 2.10 主要仪器
  • 3 实验方法
  • 3.1 蓝藻水华粗提物的制备及MC(LR+RR)含量测定
  • 3.2 实验动物
  • 3.3 抗氧化系统相关指标测定
  • 3.4 钙蛋白酶calpain活性检测
  • 3.5 蛋白磷酸酶2A活性检测
  • 3.6 TUNEL法检测细胞凋亡
  • 3.7 组织蛋白提取
  • 3.8 Western blot
  • 3.9 数据处理和统计学分析
  • 4 结果
  • 4.1 MC-RR对小鼠肝脏的毒性研究
  • 4.2 蓝藻水华粗提物对小鼠肝脏的毒性研究
  • 5 讨论
  • 5.1 MC-RR经口染毒7天对小鼠肝脏的毒性研究
  • 5.2 蓝藻水华粗提物经口染毒7天对小鼠肝脏的毒性研究
  • 6 结论
  • 参考文献
  • 综述一 蛋白磷酸酶2A与肿瘤关系的研究进展
  • 参考文献
  • 综述二 Bcl-2家族蛋白在线粒体凋亡途径中的作用机制
  • 参考文献
  • 作者简历及在学期间取得的科研成果
  • 相关论文文献

    • [1].微囊藻毒素(MC-RR)对白三叶种子萌发及幼苗生理生化特性影响[J]. 草业学报 2009(06)
    • [2].微囊藻毒素MC-RR在农田土壤中吸附行为研究[J]. 环境科学学报 2016(12)
    • [3].p-n型异质结催化剂Ag_2O-BiVO_4对微囊藻毒素(MC-RR)的光化学氧化机理研究(英文)[J]. 催化学报 2017(02)
    • [4].一株高效MC-RR降解菌的分离鉴定及其降解特性[J]. 环境工程学报 2013(02)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  

    从生化水平探讨MC-RR及蓝藻水华粗提物经口染毒对小鼠肝脏的毒性效应
    下载Doc文档

    猜你喜欢