刺参(Apostichopus japonicus)感染两种病原菌前后体内凝集素的分离纯化与性质研究

刺参(Apostichopus japonicus)感染两种病原菌前后体内凝集素的分离纯化与性质研究

论文摘要

凝集素(lectin)是一类具有糖专一性,可促使细胞凝集的蛋白质或糖蛋白,其研究历史已有一百多年。凝集素可与生物体内大量功能各异的糖复合物结合,形成一系列生物学功能。在动物和植物体内,凝集素又有一些不同的功能。凝集素的独特的生物学功能为其应用开辟了广阔的前景。早期对凝集素的研究多集中于高等植物。2001年, Yeaton在103种无脊椎动物体内发现了凝集素的存在,并推断在所有无脊椎动物体内可能都有凝集素。凝集素除了存在于甲壳动物、软体动物等无脊椎动物的血清中,也常常吸附在血细胞的细胞膜上。仿刺参(Apostichopus japonicus)属于棘皮动物门(Echinodermata)海参纲(Holothuroidea)楯手目(Aspidochirota)刺参科(Stichopodidae)仿刺参属(Apostichopus)。仿刺参为温带种,在我国主要分布于辽宁、河北、山东和江苏等沿海省份。仿刺参营养丰富,体壁含有丰富的胶原成分和蛋白聚糖,还含有大量的黏蛋白及多种氨基酸。最近有研究证明仿刺参含有防衰老的酸性粘多糖(硫酸软骨素),具有较广的抗肿瘤及抗凝血的作用,并具有增强机体免疫功能的作用,是一种药用价值极高的海洋生物。仿刺参作为一种无脊椎动物,一般认为缺少适应性免疫,其“非己”识别免疫功能存在于某些特性的、可溶的或与细胞膜结合的模式识别受体(pattern recognition receptors , PRRs),也成为模式识别蛋白(pattern recognition proteins , PRPs)或模式识别分子( pattern recognition molecules ,PRMs),这种模式识别受体就包含凝集素。因此,凝集素在仿刺参体内起着重要的免疫功能。当仿刺参受到病原及其它外界条件影响时,体内产生免疫反应,因此其体内凝集素的量必将与正常状况下有所不同。20世纪80年以来,我国的海水养殖业逐渐振兴并发展迅速,鱼类、海珍品类的增养殖进入快速发展时期。仿刺参人工育苗,年产量猛增数千万头,仿刺参增养殖在山东、辽宁等地初具规模。随着国内仿刺参养殖业的迅速发展,养殖面积的迅速扩张以及集约化养殖方式下的不规范操作,养殖过程中相继出现一系列病害问题,给仿刺参养殖业带来了巨大的损失。仿刺参“烂皮病”因其高传染性、高死亡率成为刺参养殖病害研究的重点。其发病特征一般为:感染初期刺参口部先出现感染症状,表现为围口膜松弛,触手对外界刺激反应迟钝,继而出现排脏现象;感染中期刺参身体收缩、僵直,口腹部出现小面积溃疡,形成蓝白色小斑点,逐渐丧失摄食能力;感染末期刺参的病灶变大,溃疡处增多,表皮腐烂面积变大,最后导致刺参死亡,溶化成鼻涕状胶体。本文利用本实验室已分离出的两种刺参烂皮病病原菌(Tenacibaculum属和Vibrionales属)对健康个体进行感染,分别分离纯化其凝集素,利用动物的红细胞对其凝集素的凝集活性分别进行检测,并进行分子量、含糖量、最适pH、耐热性等性质的研究,以期为仿刺参的免疫机制研究及药用研究提供科学的数据参考。研究方法及结果为:仿刺参经磷酸盐缓冲溶液抽提,20 %~75 %硫酸铵分级沉淀, DEAE-Sepharose F.F.和Sephadex G-100柱层析,得到仿刺参凝集素(AJL)。经SDS-PAGE显示单一条带,亚基相对其分子量为31 kDa。分别提取感染Tenacibaculum属和Vibrionales属病原菌的仿刺参凝集素,感染Tenacibaculum属病菌仿刺参的凝集素产量较大,但凝集兔红细胞的作用均不被D-果糖、D-甘露糖、D-葡萄糖、D-半乳糖、L-鼠李糖、蔗糖、乳糖、麦芽糖、棉子糖所抑制,而仅被牛甲状腺球蛋白所抑制,其中,感染Tenacibaculum属病菌仿刺参的凝集素更易受到牛甲状腺球蛋白的抑制。凝集兔红细胞的作用均不被二价金属离子Ca2 +、Mg2 +、Mn2+、Zn2+及EDTA所抑制。在pH 4. 0~10. 14系列缓冲液中均有活性,其中在pH 4. 4~7. 5范围内血凝性最高。该凝集活性在90℃加热30 min后仍然对红细胞有凝集活性,显示出较高的热稳定性。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第一章 文献综述
  • 1 凝集素研究现状
  • 1.1 凝集素简介
  • 1.2 凝集素的分布
  • 1.3 凝集素的结构
  • 1.4 凝集素的分类
  • 1.5 凝集素的特性
  • 1.5.1 能特异性地与受体结合
  • 1.5.2 能改变受体物质的生物学特性
  • 1.6 凝集素在生物学研究中的应用
  • 1.6.1 凝集素可用于恶性肿瘤等疾病的诊断
  • 1.6.2 利用凝集素来设计抗菌、抗病毒药物
  • 1.6.3 利用凝集素设计“生物导弹”
  • 2 仿刺参研究现状
  • 2.1 海参简介
  • 2.1.1 分类地位
  • 2.1.2 生活习性
  • 2.1.3 种类与分布
  • 2.2 仿刺参简介
  • 2.2.1 仿刺参的分类地位
  • 2.2.2 形态特征
  • 2.2.3 仿刺参分布
  • 2.2.4 生活习性
  • 2.2.5 生活史
  • 2.2.6 营养价值
  • 2.3 仿刺参养殖业及其对生态环境的影响
  • 2.3.1 仿刺参养殖业的发展
  • 2.3.2 养殖仿刺参业对生态环境的影响
  • 2.4 仿刺参养殖业病害问题
  • 2.4.1 研究现状
  • 2.4.2 病害类型
  • 3 研究目的和意义
  • 第二章 致病菌感染实验
  • 1 实验材料与方法
  • 1.1 实验材料
  • 1.2 实验仪器设备
  • 1.3 实验药品
  • 1.4 培养基配方
  • 1.5 制备菌悬液
  • 1.6 准备致病菌感染场所
  • 1.7 仿刺参的前处理
  • 1.8 加入菌悬液
  • 1.9 观察记录
  • 2 实验结果及讨论
  • 2.1 致病菌感染健康仿刺参
  • 2.2 讨论
  • 3 小结
  • 第三章 仿刺参凝集素(AJL)的分离纯化与性质鉴定
  • 1 实验材料与方法
  • 1.1 实验材料
  • 1.2 实验仪器设备
  • 1.3 实验药品
  • 1.4 可溶性蛋白质浓度测定
  • 1.5 凝集素活力测定方法
  • 1.6 凝集素纯化鉴定路线
  • 1.7 凝集素分离纯化
  • 1.7.1 试剂配制
  • 1.7.2 粗提液制备
  • 1.7.3 硫酸铵分级
  • 1.7.4 DEAE-离子交换层析
  • 1.7.5 Sephadex G-100凝胶过滤层析
  • 1.8 凝集素性质鉴定
  • 1.8.1 试剂配制
  • 1.8.2 亚基分子量的测定
  • 1.8.3 血凝活性的测定
  • 1.8.4 热稳定性试验
  • 1.8.5 pH 对血凝活性的影响
  • 1.8.6 EDTA 及二价金属离子对血凝活性的影响
  • 1.8.7 糖抑制实验
  • 2 实验结果及讨论
  • 2.1 实验结果
  • 2.1.1 凝集素的纯化
  • 2.1.2 仿刺参凝集素亚基分子量
  • 2.1.3 3种仿刺参凝集素的血凝活性
  • 2.1.4 热稳定性
  • 2.1.5 pH 对3组凝集素血凝活性的影响
  • 2.1.6 EDTA 及金属离子对3组凝集素血凝活性的抑制作用
  • 2.1.7 糖抑制试验
  • 2.2 凝集素纯化方法讨论
  • 2.2.1 有关硫酸铵分级范围
  • 2.2.2 关于离子柱层析
  • 2.2.3 关于分子筛层析
  • 2.3 关于凝集素性质鉴定
  • 2.3.1 亚基分子量的确定
  • 2.3.2 关于温度、pH 对凝集素活性的影响
  • 2.3.3 抑制实验
  • 2.4 制备红细胞悬液的注意事项
  • 3 小结
  • Chapter Ⅰ Literature Review
  • 1 Researching Status of Lectin
  • 1.1 About Lectin
  • 1.2 Distribution
  • 1.3 Structure
  • 1.4 Classification
  • 1.5 Characteristic
  • 1.5.1 Combining with receptor specifically
  • 1.5.2 Change receptor’characteristic
  • 1.6 Application of Lectin in Biology Research
  • 1.6.1 Diagnosis of malignant tumor
  • 1.6.2 Design the antibiont and antiviral drug by the lectin
  • 1.6.3 Design "biological missile" by lectin
  • 2 Present researches of Apostichopus japonicus
  • 2.1 Brief introduction of sea cucumber
  • 2.1.1 Status
  • 2.1.2 Habit
  • 2.1.3 Species and distribution
  • 2.2 Brief introduction of Apostichopus japonicus
  • 2.2.1 Status
  • 2.2.2 Morphological Characteristics
  • 2.2.3 Distribution
  • 2.2.4 Habit
  • 2.2.5 Life history
  • 2.2.6 Nutritional value
  • 2.3 Rearing industry of Apostichopus japonicus and the environment
  • 2.3.1 Development of rearing industry
  • 2.3.2 Influence on ecological environment
  • 2.4 Diseases of rearing industry
  • 2.4.1 Researching Status
  • 2.4.2 Type of diseases
  • 3 The purpose and significance
  • Chapter Ⅱ Infect Apostichopus japonicus by two pathogens
  • 1 Materials and Methods
  • 1.1 Materials
  • 1.2 Equipments
  • 1.3 Reagents
  • 1.4 Formula of medium
  • 1.5 Prepare suspension of bacteria
  • 1.6 Prepare places for infection
  • 1.7 Pre-treatment of Apostichopus japonicus
  • 1.8 Inject the suspension of bacteria
  • 1.9 Observe and record
  • 2 Results and discussion
  • 2.1 Pathogens infect healthy Apostichopus japonicus
  • 2.2 Discussion
  • 3 Conclusion
  • Chapter III Isolation, purification and properties of lectins from Apostichopus japonicus
  • 1 Materials and Methods
  • 1.1 Materials
  • 1.2 Equipments
  • 1.3 Reagents
  • 1.4 Determine the concentration of soluble protein
  • 1.5 Determine hemagglutinating activity
  • 1.6 Course of purification and identification
  • 1.7 Isolation and purification
  • 1.7.1 Prepare reagents
  • 1.7.2 Prepare crude extract
  • 1.7.3 Ammonium sulfate fractionation
  • 1.7.4 DEAE-Sepharose-F.F
  • 1.7.5 Sephadex G-100
  • 1.8 Characterization of lectins
  • 1.8.1 Prepare reagents
  • 1.8.2 Determine molecular weight of subunit
  • 1.8.3 Determine hemagglutinating activity
  • 1.8.4 Thermal stability of lectins
  • 1.8.5 Affection of pH
  • 1.8.6 Affection of EDTA and divalent metal ion
  • 1.8.7 Inhibition of hemagglutinating activity of lectin by sugers
  • 2 Results and discussion
  • 2.1 Results
  • 2.1.1 Purification of lectin
  • 2.1.2 Molecular weight of subunit
  • 2.1.3 Hemagglutinating activity of the AJL(CK,C6,TB )
  • 2.1.4 Thermal stability of lectins
  • 2.1.5 Affection of pH
  • 2.1.6 Affection of EDTA and divalent metal ion
  • 2.1.7 Inhibition by sugers and glycoprotein
  • 2.2 Discussion about the purification
  • 2.2.1 About the range of ammonium sulfate fractionation
  • 2.2.2 About ion exchange chromatography
  • 2.2.3 About molecular sieve chromatography
  • 2.3 About the characterization of lectins
  • 2.3.1 Determine molecular of the subunit
  • 2.3.2 About the affection of temperature and pH
  • 2.3.3 About the inhibition
  • 2.4 About the Suspension of erythrocyte
  • 3 Conclusion
  • 参考文献
  • 附录
  • 致谢
  • 攻读硕士学位期间发表学术论文
  • 相关论文文献

    • [1].刺参多刺品系子三代池塘养殖中试与效果评价[J]. 河北渔业 2020(02)
    • [2].刺参“鲁海1号”[J]. 中国水产 2020(06)
    • [3].刺参-中国对虾复合养殖系统重金属分布特征[J]. 河北渔业 2020(07)
    • [4].威海市刺参产业现状及可持续发展对策研究[J]. 水产养殖 2020(08)
    • [5].夏季高温对刺参养殖的影响及应对措施[J]. 中国水产 2020(09)
    • [6].刺参“安源1号”[J]. 海洋与渔业 2018(09)
    • [7].刺参“东科1号”[J]. 中国水产 2019(07)
    • [8].刺参吐脏再生对胰蛋白酶活性影响的研究[J]. 中国海洋大学学报(自然科学版) 2019(S1)
    • [9].几种饵料原料直接饲喂刺参试验[J]. 农业开发与装备 2019(07)
    • [10].“安源1号”刺参新品种苗种引进培育项目顺利通过验收[J]. 科学养鱼 2019(11)
    • [11].刺参“鲁海1号” 长速快 成活率高[J]. 海洋与渔业 2019(10)
    • [12].刺参换季养殖及其池塘闲置期科学利用实用技术[J]. 水产养殖 2019(11)
    • [13].不同海区条件对南移刺参养殖效果的影响[J]. 科学养鱼 2017(12)
    • [14].灿烂弧菌对刺参养殖的危害及防控方法[J]. 科学养鱼 2017(02)
    • [15].刺参‘水院1号’幼参培育水质检测分析[J]. 天津农业科学 2016(12)
    • [16].刺参升温苗成活率的比较及经济效益分析[J]. 湖北农业科学 2017(12)
    • [17].大连海域刺参原产地大型底栖动物群落结构调查及修复策略[J]. 水产学杂志 2017(04)
    • [18].北方池塘刺参生态健康养殖新技术[J]. 科学养鱼 2016(01)
    • [19].青、白刺参(Apostichopus japonicus)体壁营养成分的比较分析[J]. 渔业科学进展 2016(03)
    • [20].刺参池塘健康养殖技术要点[J]. 科学养鱼 2014(12)
    • [21].刺参池塘养殖中人工参礁的类型及优缺点[J]. 科学养鱼 2014(12)
    • [22].基于抑制消减杂交识别白化刺参和青刺参差异表达基因[J]. 宁波大学学报(理工版) 2014(01)
    • [23].几种微生态制剂对刺参幼参生长、存活和消化酶活性的影响[J]. 大连海洋大学学报 2015(03)
    • [24].刺参池塘悬浮式网箱育苗技术探讨[J]. 科学养鱼 2015(07)
    • [25].山东省刺参产业提升发展的战略思考[J]. 中国海洋经济 2019(02)
    • [26].夏季养殖刺参(Apostichopus japonicus)大面积死亡的原因分析与应对措施[J]. 海洋科学集刊 2017(00)
    • [27].2013年山东省养殖刺参死亡的原因分析与防治对策[J]. 科技致富向导 2013(34)
    • [28].植物刺参[J]. 百科知识 2014(12)
    • [29].刺参养殖技术研究[J]. 当代水产 2013(12)
    • [30].刺参无公害养殖标准化发展现状与对策[J]. 中国标准化 2011(05)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  

    刺参(Apostichopus japonicus)感染两种病原菌前后体内凝集素的分离纯化与性质研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢