WSSV和干露胁迫条件下脊尾白虾(Exopalamoncarin cauda)ferritin基因及热休克蛋白70基因表达特征

WSSV和干露胁迫条件下脊尾白虾(Exopalamoncarin cauda)ferritin基因及热休克蛋白70基因表达特征

论文摘要

铁蛋白ferritin基因是机体生长及免疫相关的重要功能基因,它具有调节铁代谢平衡、抗氧化细胞保护以及肿瘤免疫治疗等多种复杂的生物学功能,铁蛋白的研究已成为当前生命科学领域研究的热点之一。热休克蛋白70是热休克蛋白家族中的重要成员,是甲壳动物最重要的应激蛋白之一。目前,关于铁蛋白和热休克蛋白70的研究主要集中在脊椎动物上,而对于无脊椎动物,尤其是甲壳动物的铁蛋白的研究相对较少。本实验以脊尾白虾为实验材料,克隆了脊尾白虾ferritin基因,进行了WSSV感染对ferritin基因表达分析,完成了干露胁迫对脊尾白虾成活率、ferritin基因及热休克蛋白70的表达影响,旨在认知脊尾白虾免疫特点和环境胁迫下脊尾白虾的应激反应。研究分为两部分:第一部分是以脊尾白虾为研究对象,利用RT-PCR以及RACE技术获得了总长度为755bp的脊尾白虾(Exopalamon carincauda) ferritin基因cDNA序列。该基因序列5′和3′的非编码区分别为112bp和146bp,开放阅读框497bp,推测编码169个氨基酸。预测蛋白分子量19.1kDa,等电点5.46,5′-非编码区有一个铁反应元件(iron response element,IRE),该基因命名为Ecfer基因。氨基酸序列比对发现与其他甲壳动物铁蛋白氨基酸序列同源性在64%-67%,与脊椎动物铁蛋白H链氨基酸序列同源性在53%-57%。利用Neighbor-joining构建系统进化树分析结果表明Ecfer基因氨基酸序列与无脊椎动物中的甲壳动物聚为一支。运用荧光定量RT-PCR研究分析Ecfer基因在组织中表达分布,以及经WSSV感染后血淋巴、肝胰腺中的表达变化情况。实验结果表明Ecfer在肝胰腺、卵巢、肌肉、鳃和血淋巴中均有分布,在肝胰腺中表达量最高,卵巢中表达量最低。注射WSSV后3h和6h,脊尾白虾肝胰腺和血淋巴铁蛋白基因表达较对照组都有显著上调(P<0.05),并具有显著的时间差异性。说明WSSV感染可显著上调Ecfer基因的表达,提示了Ecfer基因可能参与了脊尾白虾抵抗WSSV入侵的免疫反应,血淋巴在WSSV感染中表现得比肝脏更敏感。第二部分以脊尾白虾为实验动物,以C组(干燥低温)、CG组(干燥常温)、P组(湿润低温)和PG组(湿润常温)四个实验组和一个对照组D组进行为期12h的干露胁迫实验,记录12h各实验组成活率。应用实时定量PCR方法研究了不同干露胁迫条件对脊尾白虾血淋巴、肝胰腺及肌肉中ferritin基因和HSP70基因表达的影响。结果表明:(1)保持虾体湿润并用冰块降温的P组干露胁迫12h后成活率为75%,显著高于其他各实验组(P<0.05)。(2)干露胁迫能上调P组脊尾白虾血淋巴、肝胰腺和肌肉ferritin基因的表达,显著高于对照组(P<0.05),并且各组织ferritin基因表达的上调时间具有差异性,血淋巴最先上调。干露胁迫对C组、CG组和PG组脊尾白虾各组织ferritin基因表达具有下调作用,并显著低于对照组(P<0.05)。(3)干露胁迫能诱导脊尾白虾血淋巴、肝胰腺和肌肉HSP70基因的表达水平,显著高于对照组(P<0.05)。各组织hsp70基因表达的上调时间具有差异性,肝胰腺最先上调。C组、CG组和PG组在1.5h出现大幅度上调,显著高于P组(P<0.05),P组上调缓慢。这些结果表明:保持虾体湿润低温可显著提高干露胁迫12h后脊尾白虾的成活率,干露胁迫与ferritin基因和Hsp70基因有直接影响。在干露胁迫在耐受范围内,ferritin基因和Hsp70发挥抗氧化功能。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第一章 综述
  • 1.1 脊尾白虾养殖产业的发展现状
  • 1.1.1 脊尾白虾分类地位及生物学性状
  • 1.1.2 脊尾白虾养殖发展现状
  • 1.2 甲壳动物的免疫系统
  • 1.2.1 体液免疫
  • 1.2.2 细胞免疫
  • 1.3 铁蛋白
  • 1.3.1 铁蛋白的结构
  • 1.3.2 铁蛋白(ferritin)分类
  • 1.3.3 铁蛋白的功能
  • 1.4 环境因素与甲壳动物的关系
  • 1.5 热休克蛋白 70
  • 1.5.1 热休克蛋白 70 的结构
  • 1.5.2 热休克蛋白 70 的功能
  • 1.6 展望
  • 第二章 脊尾白虾(Exopalamon carincauda)ferritin 基因克隆及表达分析
  • 2.1 材料与方法
  • 2.1.1 试剂
  • 2.1.2 实验仪器
  • 2.1.3 方法
  • 2.2 结果
  • 2.2.1 脊尾白虾总 RNA 提取
  • 2.2.2 脊尾白虾 ferritin 基因中间片段 cDNA 的克隆
  • 2.2.3 Ecfer 基因全长 cDNA 序列分析
  • 2.2.4 Ecfer 基因多序列比对及系统进化树分析
  • 2.2.5 Ecfer基因在脊尾白虾各组织中的表达分布及WSSV对其肝胰腺、血淋巴中表达变化量的影响
  • 2.3 讨论
  • 第三章 ferritin 基因和热休克蛋白 70 在脊尾白虾抗干露胁迫中的作用
  • 3.1 材料与方法
  • 3.1.1 药品试剂及实验仪器
  • 3.1.2 方法
  • 3.2 结果
  • 3.2.1 脊尾白虾不同离水干露条件下 12h 的存活率
  • 3.2.2 干露胁迫对脊尾白虾 ferritin 基因表达的影响
  • 3.3 讨论
  • 3.3.1 干露刺激对脊尾白虾成活率的影响
  • 3.3.2 干露胁迫对脊尾白虾 ferritin 基因表达的影响
  • 3.3.3 干露胁迫对脊尾白虾 HSP70 基因表达的影响
  • 结论
  • 参考文献
  • 硕士在读期间论文发表情况及课题资助
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].Immune Priming Induced by Heat-inactivated White Spot Syndrome Virus (WSSV) in Fenneropenaeus chinensis Cultured at Different Temperature[J]. Animal Husbandry and Feed Science 2017(06)
    • [2].对虾白斑综合征病毒新株型WSSV-CN-Pc的毒力研究[J]. 微生物学杂志 2018(02)
    • [3].Screening White Spot Syndrome Virus(WSSV)-Resistant Molecular Markers from Fenneropenaeus chinensis[J]. Journal of Ocean University of China 2017(01)
    • [4].A new ALF from Litopenaeus vannamei and its SNPs related to WSSV resistance[J]. Chinese Journal of Oceanology and Limnology 2014(06)
    • [5].中国明对虾(Fenneropenaeus chinensis)Tetraspanin-3与WSSV的体外相互作用[J]. 渔业科学进展 2015(06)
    • [6].微囊藻和小球藻携带WSSV量的变化及对水体游离WSSV的影响[J]. 南方水产科学 2014(02)
    • [7].中国明对虾WSSV携带量、生长和抗WSSV育种值的相关性分析[J]. 水产学报 2013(07)
    • [8].5种饵料对日本囊对虾早期生长及感染WSSV存活率的影响[J]. 热带生物学报 2010(04)
    • [9].饲料中添加芽孢杆菌组分对凡纳滨对虾幼虾生长、能量代谢和抗WSSV能力的影响[J]. 中国海洋大学学报(自然科学版) 2020(01)
    • [10].亚硝基氮胁迫下WSSV对凡纳滨对虾致病性研究[J]. 东北农业大学学报 2016(09)
    • [11].中国对虾(Fenneropenaeus chinensis)“黄海2号”人工感染WSSV的荧光定量分析[J]. 海洋与湖沼 2013(03)
    • [12].抑制性消减杂交技术结合cDNA MICROARRAY技术在中国明对虾WSSV感染后差异表达基因研究上的应用[J]. 海洋与湖沼 2008(05)
    • [13].Shrimp arginine kinase being a binding protein of WSSV envelope protein VP31[J]. Chinese Journal of Oceanology and Limnology 2016(06)
    • [14].高位池养殖过程凡纳滨对虾携带WSSV情况的动态变化[J]. 中国水产科学 2012(02)
    • [15].微生物在感染WSSV的克氏原鳌虾死亡过程中的作用研究[J]. 中国农学通报 2011(32)
    • [16].几种理化因子对急性感染WSSV凡纳滨对虾的影响[J]. 中山大学学报(自然科学版) 2010(06)
    • [17].2015年中国典型对虾养殖区WSSV流行株高变异区序列的分析比较[J]. 渔业科学进展 2018(02)
    • [18].流式细胞术检测对虾白斑症病毒(WSSV)对克氏原螯虾血细胞的感染[J]. 中国海洋大学学报(自然科学版) 2008(03)
    • [19].温度对WSSV感染中国对虾越冬亲虾的影响[J]. 中国海洋大学学报(自然科学版) 2008(03)
    • [20].白斑症病毒(WSSV)对克氏原螯虾血细胞的感染规律[J]. 中国海洋大学学报(自然科学版) 2010(09)
    • [21].Effect of Different Diet Combinations on WSSV Load and Survival Rate of Fenneropenaeus chinensis Larvae[J]. Animal Husbandry and Feed Science 2015(06)
    • [22].Characterization and Diagnostic Use of a Monoclonal Antibody for VP28 Envelope Protein of White Spot Syndrome Virus[J]. Virologica Sinica 2011(04)
    • [23].WSSV单抗的制备及其在红螯螯虾病毒病检测中的应用[J]. 集美大学学报(自然科学版) 2009(02)
    • [24].滩涂半精养池塘斑节对虾WSSV携带量与水体理化因子的相关性[J]. 广东农业科学 2012(12)
    • [25].Genotyping of White Spot Syndrome Virus in Chinese Cultured Shrimp during 1998-1999[J]. Virologica Sinica 2011(02)
    • [26].凡纳滨对虾商业苗种抗WSSV性能比较[J]. 渔业科学进展 2019(01)
    • [27].凡纳滨对虾氨氮急性胁迫应激敏感群体和耐受群体对WSSV敏感性的差异分析[J]. 渔业科学进展 2018(01)
    • [28].The Roles of Heat Shock Proteins 70 and 90 in Exopalaemon carinicauda After WSSV and Vibrio anguillarum Challenges[J]. Journal of Ocean University of China 2018(02)
    • [29].Influence of White Spot Syndrome Virus Infection on Hepatopancreas Gene Expression of ‘Huanghai No.2' Shrimp(Fenneropenaeus chinensis)[J]. Journal of Ocean University of China 2017(05)
    • [30].黄芪多糖对克氏原螯虾抗白斑综合征病毒(WSSV)感染的效果研究[J]. 上海海洋大学学报 2014(03)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  

    WSSV和干露胁迫条件下脊尾白虾(Exopalamoncarin cauda)ferritin基因及热休克蛋白70基因表达特征
    下载Doc文档

    猜你喜欢