论文摘要
DNA复制调控是细胞周期调控的一个核心事件。在DNA合成过程中,细胞周期通过Cyclin、CDK、CKI及其它相关蛋白对DNA复制复合体进行复杂的活性调控,因而保证每个细胞周期中DNA只能精确地复制一次。此外,细胞周期还控制着复制体相关基因的表达。DNA合成时,DNA聚合酶δ(polδ)与PCNA、RFC构成复合体,进而完成导前导链与后滞链的延伸。真核细胞polδ由4个亚基组成,POLD1基因编码了催化亚基,其mRNA及蛋白水平在G1/S期达到高峰,但是至今尚不清楚细胞周期通过何种通路调控POLD1启动子活性。本研究运用细胞周期同步化及荧光素酶报告基因测定了人乳腺癌MCF7细胞中POLD1启动子在细胞周期不同时相的活性。结果显示启动子活性随着细胞周期进程而变化,在早S期最高。瞬时共转染实验发现,随着E2F1的积累,POLD1启动子活性逐渐升高,表现出剂量依赖效应。E2F1最大能将POLD1启动子活性提高到对照组的2.98倍。运用染色体免疫共沉淀(ChIP)技术证明E2F1能够与POLD1启动子结合。为进一步确定调控POLD1表达的细胞周期相关因子,应用质粒pXJ41-neo、pEGFP-p53、pXJ41-p21、pXJ41-as-CDK2、pXJ41-as-CyclinE、pXJ41-as-CDK4及pXJ41-as-Cyclin D1分别转染MCF7细胞,分别筛选得到稳定细胞系。结果表明增强p53或p21的表达,抑制CDK2或Cyclin E的表达都能抑制POLD1启动子活性;而抑制CDK4或Cyclin D1的表达对启动子活性没有明显影响。随着CDK2或Cyclin E表达量的降低,POLD1启动子活性逐渐降低,表现出剂量依赖效应。抑制CDK2的表达能将POLD1启动子活性降低到对照组的50%左右,而抑制Cyclin E的表达能降低到30%。此外,对POLD1启动子的抑制作用还表现出时间依赖效应,一般在转染24小时后才能表现出较强的抑制,而转染48小时后的抑制最强。用pEGFP-p53重组质粒瞬时转染MCF7细胞,RT-PCR结果显示由于p53表达增强,POLD1基因mRNA水平降低。染色体免疫共沉淀和荧光素酶实验证明p53在细胞内直接结合POLD1启动子而抑制其活性,且这种抑制具有时间依赖效应和剂量依赖效应。间接免疫荧光和荧光定位实验均显示p53在G1期进入细胞核而在S期和G2期则被转运至细胞质。但是荧光素酶实验显示p53在细胞周期各时相都能抑制POLD1启动子活性,表现出细胞周期非依赖性特点。本研究还发现,在p21表达增强的细胞中,POLD1 mRNA及蛋白水平都有所下降。p21高表达后能抑制POLD1启动子活性,且这种抑制具有剂量依赖效应,抑制最强时,启动子活性只相当于对照组的27%。同时,这种抑制也具有时间依赖效应,在转染后36小时后才能达到最大抑制。p21还可以通过影响E2F1的活性而消除E2F1对POLD1启动子的促进作用。利用p21的截取突变体和点突变体发现p21对POLD1启动子的抑制作用不依赖于Cyclin/CDK复合体或PCNA。利用一系列POLD1启动子突变体发现,p21对POLD1启动子的抑制是通过位于启动子+29~+33和+44~+48位置的CDE/CHR元件实现的。突变部分或全部的该元件后,p21几乎不能抑制启动子活性。这些结果说明p21能够以较为复杂的方式抑制POLD1启动子活性。本研究首次系统探讨了细胞周期重要调控因子对POLD1基因启动子活性的调控作用,确定出E2F1、CDK2、Cyclin E、p53和p21对POLD1启动子活性的影响及作用方式。这些结果有助于理解细胞周期进程中DNA复制的调控机理。
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摘要ABSTRACT第一部分 文献综述一 DNA 聚合酶δ1 polδ的组成及功能1.1 polδ是多亚基组成的复合体1.2 polδ的功能2 POLD1 基因及其启动子结构研究2.1 POLD1 基因结构2.2 POLD1 基因启动子的克隆及功能研究二 哺乳动物细胞 DNA 复制体及 DNA 复制机制1 哺乳动物DNA 复制体1.1 DNA 复制体的组成1.2 DNA 复制体核心蛋白的结构及功能1.3 polδ与PCNA 的相互作用2 哺乳动物DNA 复制模型三 细胞周期依赖的 DNA 复制体活性调控1 DNA 复制过程中的CYCLIN/CDK 复合体转换及其对DNA 复制体的影响2 CYCLIN/CDK 复合体对DNA 复制体的磷酸化3 其它细胞周期相关蛋白对DNA 复制体的调控作用四 POLδ的细胞周期依赖性调控是 DNA 复制体研究的重要内容第二部分 材料与方法一 实验材料1 菌株2 细胞株3 质粒二 主要试剂1 酶类2 抗体3 试剂盒和其他主要生化试剂三 仪器设备四 实验方法1 质粒的构建1.1 G1 期周期调控因子真核表达载体的构建1.2 POLD1 启动子各种突变体的构建1.3 p21 各种突变体质粒的构建及鉴定2 细胞转染及稳定表达细胞株的筛选2.1 细胞培养2.2 细胞转染2.3 G418 筛选转染细胞系3 启动子活性的测定3.1 细胞转染3.2 细胞提取物的制备3.3 β-半乳糖苷酶活性的检测3.4 荧光素酶活性的检测4 蛋白表达量的检测4.1 蛋白的提取4.2 蛋白浓度的测定(Bradford 法)4.3 Western blotting 检测蛋白的表达量5 RNA 的提取及RT-PCR 检测MRNA 的表达5.1 RNA 的提取5.2 RT-PCR 检测mRNA 的表达6 染色体免疫共沉淀(CHROMATIN IMMUNOPRECIPITATION,CHIP)7 细胞周期分析7.1 TdR 双阻断法进行细胞周期同步化7.2 流式细胞光度术(FCM)分析细胞周期8 细胞间接免疫荧光(IF)及荧光定位实验8.1 细胞间接免疫荧光8.2 p53 荧光定位实验第三部分 实验结果一 POLD1 启动子在细胞周期不同时相的活性分析二 E2F1 对 POLD1 启动子活性的促进作用1 E2F1 对POLD1 启动子活性的促进1.1 E2F1 真核表达载体的构建1.2 E2F1 能够促进POLD1 启动子活性2 E2F1 与POLD1 启动子在细胞内的结合三 G1 期周期调控因子对 POLD1 基因启动子活性的调控1 真核表达载体的构建及鉴定2 G1 期周期调控因子对POLD1 启动子活性的影响3 CDK2 对POLD1 启动子活性的调控4 CYCLIN E 对POLD1 启动子活性的调控四 P53 对 POLD1 基因的表达调控作用1 P53 对POLD1 基因转录的抑制2 P53 对POLD1 启动子活性的抑制2.1 p53 对POLD1 启动子的抑制具有剂量依赖效应2.2 p53 能够持续抑制POLD1 启动子活性3 P53 在细胞内与POLD1 启动子的结合4 细胞周期对P53 核转运的调控4.1 内源性表达的p53 在MCF7 细胞中的定位受到细胞周期的严格调控4.2 EGFP-p53 融合蛋白在MCF7 细胞中的核转运也受到细胞周期的严格调控5 P53 对POLD1 启动子活性的细胞周期非依赖性抑制五 P21 对 POLD1 基因表达的抑制作用1 P21 高表达对POLD1 基因MRNA 水平及蛋白表达的影响1.1 p21 对p125 蛋白表达水平的影响1.2 p21 能够抑制POLD1 mRNA 表达2 P21 对PODL1 启动子活性的抑制2.1 p21 抑制POLD1 启动子具有剂量依赖效应2.2 p21 在一定时间内能够持续抑制POLD1 启动子3 P21 能够影响E2F1 对POLD1 启动子的激活作用但不影响E2F1 的表达3.1 p21 能够影响E2F1 对POLD1 启动子的激活作用3.2 p21 的高表达不影响E2F1 的表达4 P21 各种突变体对POLD1 启动子活性的影响4.1 p21 截短突变对POLD1 启动子的影响4.2 p21 点突变对POLD1 启动子的抑制作用5 P21 的抑制作用与POLD1 启动子CDE/CHR 元件的相关性5.1 POLD1 启动子3’端2306p 区域内可能存在受p21 抑制的调控元件5.2 POLD1 启动子3’端截取突变体对p21 抑制的敏感性分析5.3 p21 可以通过CDE/CHR 元件抑制POLD1 启动子活性第四部分 讨论一 POLD1 启动子活性受到细胞周期的调控二 E2F1 在细胞内与POLD1 启动子结合并促进其活性三 CYCLIN E/CDK2 复合体参与了POLD1 的表达调控四 P53 在细胞内与POLD1 启动子,并以细胞周期非依赖方式抑制其活性1 P53 的高表达能够抑制POLD1 基因MRNA 转录2 首次证明P53 在细胞内能够直接与POLD1 启动子结合3 首次在细胞周期进程中关注P53 对POLD1 启动子的调控3.1 证明了p53 的亚细胞定位在MCF7 细胞中受到细胞周期的严格调控3.2 p53 对POLD1 启动子的抑制作用表现出细胞周期非依赖特点五 P21 参与了POLD1 基因的表达调控1 首次发现P21 能够抑制POLD1 基因的表达2 P21 能影响E2F1 对POLD1 启动子的促进作用3 P21 对POLD1 的抑制机制较为复杂3.1 p21 可能直接与E2F1 结合而抑制POLD1 启动子3.2 p21 通过其它转录因子抑制POLD1 启动子活性4 P21 通过CDE/CHR 元件影响POLD1 启动子活性六 POLD1 基因的细胞周期表达调控网络参考文献致谢缩略语表个人简历附录:相关质粒的测序结果
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标签:基因论文; 启动子论文; 细胞周期论文;
细胞周期调控基因与POLD1基因转录活性的相关性研究
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