IBDV VP1单克隆抗体的制备和稳定表达Vero E6细胞系的建立

IBDV VP1单克隆抗体的制备和稳定表达Vero E6细胞系的建立

论文摘要

传染性法氏囊病(Infectious bursal disease,IBD)是危害世界养禽业的主要传染病之一,其病毒(Infectious bursal disease virus,IBDV)主要侵害雏鸡的中枢免疫器官法氏囊,导致免疫抑制。VP1是一种依赖RNA的RNA聚合酶,与IBDV的复制效率和毒力的关系日趋成为研究IBDV的热点。笔者现有资料,国内关于IBDV VP1的表达、单克隆抗体的制备和稳定表达VP1细胞系的建立尚未见报道。本研究的目的之一是构建IBDV VP1基因的原核表达载体,以原核表达的VP1蛋白为免疫原制备特异性单克隆抗体,制备的单克隆抗体可以为下一步建立细胞系提供检测的物质条件;目的之二构建IBDV VP1基因的真核表达载体,建立稳定表达VP1蛋白的Vero E6细胞系,为深入研究VP1与病毒复制和毒力的关系奠定基础。本课题主要研究内容包括以下几方面:1.IBDV VP1的原核表达及其多克隆抗体的制备从已构建含有IBDV Gt株B节段的质粒中扩增出VP1基因,将其克隆到表达载体pET32a。转化感受态细胞E.coli DH5α,获得重组阳性质粒pET32a-VP1。将pET32a-VP1转化宿主菌BL21(DE3),在IPTG诱导下成功表达了约115 ku的VP1融合蛋白,并以包涵体形式存在。用电泳法纯化蛋白并免疫BALB/c小鼠,制备了多克隆抗体。Western blot分析表明,纯化的蛋白能够被抗His单克隆抗体和IBDV阳性血清识别。ELISA分析表明,制备的融合蛋白抗血清效价在1:12800以上。间接免疫试验表明,多克隆抗体能与自然结构的IBDV发生特异性反应。2.IBDV VP1单克隆抗体的制备与鉴定取上面免疫小鼠的脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞常规融合,依次进行HAT选择培养,间接ELISA法筛选阳性克隆,有限稀释法进行单克隆化。获得了C4、D4两株能稳定分泌抗IBDVVP1的杂交瘤细胞株,并对C4、D4进行了稳定性、特异性方面的鉴定。腹水的效价分别为1×105和1×102,IgG亚类鉴定均为IgG1。3.稳定表达IBDV VP1的Vero E6细胞系的建立将IBDV Gt株的VP1基因分别克隆到真核表达载体pCI-neo和pEGFP-N1,获得真核表达质粒pCI-neo/VP1和pEGFP-N1/VP1。在脂质体介导下,将其导入Vero E6细胞,进行瞬时表达分析。经G418筛选后得到稳定转染细胞株,用有限稀释法获取亚克隆细胞株。然后通过间接免疫荧光和RT-PCR检测VP1基因在Vero E6细胞中的稳定表达情况。经过RT-PCR检测到该细胞中有VP1 mRNA的表达,用间接免疫荧光法可以在稳定转染质粒pCI-neo/VP1的Vero E6细胞上检测到较强的绿色荧光,证实Vero E6细胞内有VP1蛋白的表达。获得了稳定表达VP1蛋白的Vero E6细胞系。

论文目录

  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 1 引言
  • 1.1 病原学
  • 1.2 IBDV的基因组结构和编码的蛋白
  • 1.3 IBD流行病学
  • 1.4 IBDV抗原与毒力变异的分子基础
  • 1.5 IBD的防制
  • 1.6 IBDV的VP1基因(RdRp)研究进展
  • 1.7 研究的背景、目的和意义
  • 2 材料与方法
  • 2.1 试验材料
  • 2.1.1 病毒、细胞和实验动物
  • 2.1.2 菌株、质粒和表达载体
  • 2.1.3 主要试剂
  • 2.1.4 主要仪器设备
  • 2.1.5 引物
  • 2.2 实验方法
  • 2.2.1 IBDV VP1的原核表达及其多克隆抗体的制备
  • 2.2.2 IBDV VP1单克隆抗体的制备与鉴定
  • 2.2.3 稳定表达IBDV VP1的Vero E6细胞系的建立
  • 3 结果与分析
  • 3.1 IBDV VP1的原核表达及其多克隆抗体的制备
  • 3.1.1 原核表达载体的构建和鉴定
  • 3.1.2 表达产物SDS-PAGE电泳分析
  • 3.1.3 Western blot分析
  • 3.1.4 鼠抗VP1蛋白多克隆抗体的制备和鉴定
  • 3.1.5 鼠抗VP1蛋白多克隆抗体的效价测定和间接免疫荧光试验
  • 3.2 VP1单克隆抗体的制备与鉴定
  • 3.2.1 重组蛋白pET32a-VP1包被ELISA方法最佳工作条件的建立
  • 3.2.2 细胞融合率与阳性率的计算
  • 3.2.3 单克隆抗体的筛选与单克隆杂交瘤细胞株的建立
  • 3.2.4 单克隆抗体效价的测定
  • 3.2.5 单克隆抗体亚类鉴定
  • 3.2.6 染色体分析
  • 3.2.7 杂交瘤细胞稳定性分析
  • 3.2.8 间接免疫荧光实验
  • 3.2.9 Western blot分析
  • 3.3 稳定表达IBDV VP1的Vero E6细胞系的建立
  • 3.3.1 重组质粒pCI-neo/VP1和pEGFP-N1/VP1的鉴定
  • 3.3.2 G418工作浓度的确定
  • 3.3.3 G418筛选Vero E6细胞的阳性克隆
  • 3.3.4 pEGFP-N1/VP1的EGFP表达检测
  • 3.3.5 pCI-neo/VP1的间接免疫荧光表达分析
  • 3.3.6 RT-PCR检测稳定转染细胞的mRNA
  • 4 讨论
  • 4.1 IBOV VP1原核表达载体的构建与诱导表达
  • 4.2 免疫原的制备与免疫佐剂的选择
  • 4.3 细胞的融合及单克隆细胞株筛选
  • 4.4 真核表达载体的选择和G481的选择培养
  • 4.5 细胞系的细胞克隆和基因整合
  • 5 结论
  • 致谢
  • 参考文献
  • 攻读硕士学位期间发表的学术论文
  • 相关论文文献

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