中国西北越夏区小麦条锈菌分子流行学研究

论文摘要

小麦条锈病是由小麦条锈菌(Puccinia striiformis f.sp.tritici)引起的气流传播性病害,是我国小麦上最重要的病害。西北地区特别是甘肃陇南地区是我国小麦条锈菌最重要的越夏区之一,也是我国小麦条锈菌新小种的策源地,该区秋季的菌源可向东部广大冬麦区传播,越冬后春季菌源可向北部和西部麦区蔓延,对周边地区有重要影响。新毒性小种的出现和群体数量的增长,使病原菌群体结构的改变,一些品种的抗病性丧失,导致病害的发生和流行。认识越夏易变区小麦条锈菌自然群体的遗传结构对抗病育种、抗病基因的合理布局以及开发更有效的病害防治策略具有重要的参考价值。本研究采用SSR分子标记技术,对1447个菌系进行了DNA指纹分析,包括甘肃和青海2省20个县市,其中,青海菌系270个,临夏州菌系206个,平凉菌系50个,陇南菌系971个;对西北越夏区的小麦条锈菌群体结构进行全面系统的研究,了解甘肃省小麦条锈菌在地区间的遗传多样性和遗传分化水平,分析陇南地区小麦条锈菌群体结构在季节间和年度间的稳定性,推断西北越夏区小麦条锈菌的传播途径。本研究主要取得如下结果:(1)小麦条锈菌毒性变异与DNA多态性的相关性分析。为了了解毒性和DNA多态性之间的相关性,对90个代表性的菌系进行了毒性和DNA多态性分析。毒性分析发现了14种致病类型或生理小种, SSR分子标记分析发现了75个基因型, DNA指纹的多态性远比毒性的多态性丰富。不同的小种有相同或相近的DNA指纹,同一小种可能有不同的DNA指纹。因此,毒性特征和DNA多态性之间并不存在相关性。(2)菌系数量对条锈菌群体遗传结构的影响。为了确定一个群体或亚群体的菌系数量,即能反映条锈菌遗传结构的真实水平,也不要增加额外的工作量,分析了菌系数量对条锈菌遗传结构的影响。结果表明,当菌系的数量小于10时,反映的遗传结构偏离真实水平,菌系的数量大于20时,基本接近真实水平,当菌系的数量大于30时,反映的遗传结构无限接近真实水平。因此,分析小麦条锈菌群体遗传结构时,一个群体或亚群体的菌系数量应大于30个,不少于20个。(3)甘肃省小麦条锈菌群体空间遗传结构的SSR分析。为了了解甘肃小麦条锈菌群体遗传多样性水平,明确地区间存在广泛的菌源交流,测试陇南地区是甘肃小麦条锈菌的菌源中心这一假说,对甘肃省小麦条锈菌群体结构进行了分析。结果表明甘肃省小麦条锈菌遗传多样性比较丰富,在亚群体之间,遗传多样性有显著的差异,其中,天水种群(H =0.28,I =0.41)和陇南种群(H =0.26,I =0.42 )的遗传多样性最高,临夏种群(H =0.22,I =0.36)次之,平凉种群(H =0.18,I =0.28)最低,表明陇南和天水地区是甘肃省小麦条锈菌的中心。SSR标记系统揭示甘肃小麦条锈菌群体遗传分化程度较小(Gst=0.15),地区间的遗传变异仅占1.38%,群体间的遗传变异占总变异的15.57% (P<0.001),群体内遗传变异占83.5%,遗传变异主要存在于群体内部。甘肃小麦条锈菌群体的基因流(Nm)为1.38,表明小麦条锈菌在甘肃各地区间存在广泛的交换。因此,甘肃小麦条锈菌群体遗传多样性丰富,遗传分化较小,各地区内和地区间存在广泛的菌源交流。(4)陇南地区不同海拔区域内小麦条锈菌群体遗传多样性的分析。为了了解不同海拔高度区域内小麦条锈菌群体的遗传结构和分化程度,明确海拔高度对小麦群体遗传多样性的影响,测试小麦条锈菌在陇南地区可以完成周年循环的假说,对陇南地区不同海拔高度的地区内小麦条锈菌群体遗传多样性进行了研究。结果表明陇南地区小麦条锈菌遗传多样性比较丰富,各亚群体存在显著差异,高山种群和半山种群的多样性最丰富,川道种群的相对较低。不同生态区域内,小麦条锈菌群体遗传分化程度不同,高山区和半山区遗传分化程度大,川道区群体遗传分化程度比较小。不同海拔区域的条锈菌群体之间有基因流的存在,从分子水平证实了小麦条锈菌在高海拔山区与川地之间进行移动,可就地完成周年循环这一假说。(5)陇南地区小麦条锈菌群体结构的季节性变化。为了了解小麦条锈菌群体遗传多样性的季节性变化规律和分化程度水平,评价小麦条锈菌群体结构的稳定性,对陇南地区小麦条锈菌群体结构的季节性变化进行了研究,结果表明,不同季节间,小麦条锈菌群体间遗传多样性没有显著的差异,群体遗传分化程度不同,越夏种群遗传分化程度较大,越冬和春季流行群体遗传分化程度比较小。陇南地区小麦条锈菌群体结构的季节性变化分析,表明陇南地区小麦条锈菌群体结构虽有局部的变化,但整体保持稳定。(6)陇南地区小麦条锈菌群体结构的周年时空变化。为了了解不同年度间小麦条锈菌群体的遗传多样性变化和分化程度水平,评价小麦条锈菌群体结构的稳定性,对陇南地区小麦条锈菌群体结构的年度时空变化进行了研究。结果表明,不同年度间,小麦条锈菌群体间遗传多样性和遗传分化没有显著的差异,陇南地区小麦条锈菌群体结构的年度间时空变化分析,表明陇南地区小麦条锈菌群体结构虽有局部的变化,但整体保持稳定。(7)西北越夏区小麦条锈菌长距离传播的分子证据。为了探索西北越夏区小麦条锈菌的传播途径,对西北越夏区小麦条锈菌群体结构进行了分析。结果表明,西北越夏区小麦条锈菌群体遗传多样性比较丰富,地区之间有显著的差异,陇南地区小麦条锈菌遗传多样性明显比临夏和青海地区的高。西北越夏区小麦条锈菌群体的基因流(Nm)为1.37,表明小麦条锈菌在西北越夏区各地区间存在广泛的交换或长距离的移动。我们的分子数据证实了在西北越夏区各地区之间有基因流的存在或病原菌的传播,陇南到青海的传播路线,是陇南直接传播到青海为主,辅助临夏到青海的传播。(8)小麦条锈菌体细胞遗传重组的分子证据。11对SSR引物中4对能够检测到陇南地区小麦条锈菌群体存在体细胞遗传重组,而且重组体出现的频率不同,CPS15揭示的条锈菌重组体出现的频率为20.0%, CPS34揭示的条锈菌重组体出现的频率为18.5%,RJ20揭示的条锈菌重组体出现的频率为12.8%, RJ18揭示的条锈菌重组体出现的频率为15.0,陇南地区小麦条锈菌群体重组体出现频率平均为16.6%。本文揭示的遗传重组现象表明陇南地区条锈菌体细胞结合十分普遍,由此推测我国小麦条锈菌在自然条件下通过遗传重组而导致毒性变异的可能性。

论文目录

• 摘要
• ABSTRACT
• 第一章 文献综述
• 1.1 西北地区小麦条锈病的流行规律
• 1.1.1 越夏
• 1.1.2 秋苗发病
• 1.1.3 越冬
• 1.1.4 春季流行
• 1.1.5 陇南地区在小麦条锈病大区流行中的特殊作用
• 1.2 植物病害分子流行学的研究内容和主要方法
• 1.2.1 植物病害分子流行学的基本概念
• 1.2.2 植物病害的传统流行学和分子流行学比较
• 1.2.3 分子流行学研究方案
• 1.2.4 植物病原菌群体遗传结构的时空变化
• 1.2.5 病原菌的长距离传播和移动
• 1.2.6 植物病害分子流行学研究的主要标记方法
• 1.3 小麦条锈菌分子流行学研究进展
• 1.4 小麦条锈菌群体结构分化及影响因子
• 1.5 TP-M13-SSR 技术
• 1.6 本研究的目的意义
• 1.7 本研究的方法及技术路线
• 第二章 小麦条锈菌毒性变异与DNA 多态性的相关性分析
• 2.1 材料与方法
• 2.1.1 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 2.1.2 鉴别寄主
• 2.1.3 毒性分析
• 2.1.4 基因组DNA 提取方法
• 2.1.5 TP-M13-SSR 体系的SSR 引物和M13 荧光引物的合成
• 2.1.6 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 2.1.7 PCR 扩增产物的电泳检测
• 2.1.8 数据处理
• 2.2 结果与分析
• 2.2.1 小麦条锈菌菌系毒性分析
• 2.2.2 小麦条锈菌菌系的DNA 多态性分析
• 2.2.3 微卫星分析与毒性分析的比较
• 2.3 讨论
• 2.4 结论
• 第三章 菌系数量对条锈菌群体遗传结构的影响
• 3.1 材料与方法
• 3.1.1 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 3.1.2 基因组DNA 提取方法
• 3.1.3 TP-M13-SSR 体系的SSR 引物和M13 荧光引物的合成
• 3.1.4 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 3.1.5 PCR 扩增产物的电泳检测
• 3.1.6 统计分析
• 3.2 结果与分析
• 3.2.1 菌系数量对条锈菌遗传多样性的影响
• 3.2.2 菌系数量对条锈菌遗传分化的影响
• 3.3 讨论
• 3.4 结论
• 第四章 甘肃省小麦条锈菌群体空间遗传结构的SSR 分析
• 4.1 材料和方法
• 4.1.1 小麦条锈菌群体标样的采集
• 4.1.2 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 4.1.3 基因组DNA 提取方法
• 4.1.4 TP-M13-SSR 体系的SSR 引物和M13 荧光引物的合成
• 4.1.5 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 4.1.6 PCR 扩增产物的电泳检测
• 4.1.7 统计分析
• 4.2 结果与分析
• 4.2.1 SSR 引物的PCR 扩增结果
• 4.2.2 甘肃省小麦条锈菌群体遗传多样性水平
• 4.2.3 甘肃省小麦条锈菌群体遗传分化水平
• 4.2.4 甘肃省小麦条锈菌不同种群间的遗传距离和遗传一致度
• 4.3 讨论
• 4.4 结论
• 第五章 陇南地区不同海拔区域内小麦条锈菌群体遗传多样性分析
• 5.1 材料和方法
• 5.1.1 小麦条锈菌群体标样的采集
• 5.1.2 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 5.1.3 基因组DNA 提取方法
• 5.1.4 引物合成
• 5.1.5 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 5.1.6 PCR 扩增产物的电泳检测
• 5.1.7 数据分析
• 5.2 结果与分析
• 5.2.1 陇南地区不同农业生态区域的小麦条锈菌群体遗传多样性水平
• 5.2.2 陇南地区不同农业生态区域的小麦条锈菌群体遗传分化水平
• 5.2.3 聚类分析
• 5.2.4 海拔高度与遗传多样性的相关性分析
• 5.3 讨论
• 5.4 结论
• 第六章 陇南地区小麦条锈菌群体结构的季节性变化分析
• 6.1 材料和方法
• 6.1.1 小麦条锈菌群体标样的采集
• 6.1.2 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 6.1.3 基因组DNA 提取方法
• 6.1.4 引物合成
• 6.1.5 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 6.1.6 PCR 扩增产物的电泳检测
• 6.1.7 数据分析
• 6.2 结果与分析
• 6.2.1 陇南地区小麦条锈菌越冬群体结构分析
• 6.2.2 陇南地区小麦条锈菌春季流行群体结构分析
• 6.2.3 陇南地区小麦条锈菌越夏群体结构分析
• 6.2.4 陇南地区小麦条锈菌群体遗传多样性的季节性变化分析
• 6.2.5 陇南地区小麦条锈菌群体遗传分化水平的季节性变化分析
• 6.2.6 陇南地区小麦条锈菌群体结构季节性变化分析
• 6.3 讨论
• 6.4 结论
• 第七章 陇南地区小麦条锈菌群体结构的年度间时空变化分析
• 7.1 材料和方法
• 7.1.1 小麦条锈菌群体标样的采集
• 7.1.2 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 7.1.3 基因组DNA 提取方法
• 7.1.4 引物合成
• 7.1.5 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 7.1.6 PCR 扩增产物的电泳检测
• 7.1.7 数据分析
• 7.2 结果与分析
• 7.2.1 2006 年陇南地区小麦条锈菌群体结构分析
• 7.2.2 2007 年陇南地区小麦条锈菌群体结构分析
• 7.2.3 2008 年陇南地区小麦条锈菌群体结构分析
• 7.2.4 陇南地区小麦条锈菌群体遗传多样性的年度间时空变化分析
• 7.2.5 陇南地区小麦条锈菌群体遗传分化水平的年度间时空变化分析
• 7.2.6 陇南地区小麦条锈菌群体结构年度间时空变化分析
• 7.3 讨论
• 7.4 结论
• 第八章 西北越夏区小麦条锈菌长距离传播的分子证据
• 8.1 材料和方法
• 8.1.1 小麦条锈菌群体标样的采集
• 8.1.2 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 8.1.3 基因组DNA 提取方法
• 8.1.4 引物合成
• 8.1.5 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 8.1.6 PCR 扩增产物的电泳检测
• 8.1.7 数据分析
• 8.2 结果与分析
• 8.2.1 陇南地区小麦条锈菌群体结构分析
• 8.2.2 临夏地区小麦条锈菌群体结构分析
• 8.2.3 青海小麦条锈菌群体结构分析
• 8.2.4 西北越夏区小麦条锈菌群体结构分析
• 8.2.5 西北越夏区小麦条锈菌群体遗传分化和基因流水平
• 8.2.6 西北越夏区省小麦条锈菌不同种群间的遗传距离和遗传一致度
• 8.2.7 西北越夏区小麦条锈菌群体的聚类分析
• 8.2.8 西北越夏区小麦条锈菌群体共享基因型的聚类分析
• 8.3 讨论
• 8.4 结论
• 第九章 小麦条锈菌体细胞遗传重组的分子证据
• 9.1 材料和方法
• 9.1.1 小麦条锈菌群体标样的采集
• 9.1.2 小麦条锈菌的繁殖与保存
• 9.1.3 基因组DNA 提取方法
• 9.1.4 引物合成
• 9.1.5 TP-M13-SSR PCR 扩增条件
• 9.1.6 PCR 扩增产物的电泳检测
• 9.1.7 数据分析
• 9.2 结果与分析
• 9.2.1 陇南地区小麦条锈菌群体遗传多样性水平
• 9.2.2 小麦条锈菌群体遗传结构与分化
• 9.2.3 陇南地区小麦条锈菌体细胞遗传重组的分子证据
• 9.3 讨论
• 9.4 结论
• 参考文献
• 附录
• 致谢
• 作者简介