TGF-β1及其信号传导分子Smad2和Smad4在羊驼睾丸的表达与定位

TGF-β1及其信号传导分子Smad2和Smad4在羊驼睾丸的表达与定位

论文摘要

雄性生殖机能及其调控机制的研究历来受到广泛关注,雄性生殖腺—睾丸雄性激素的分泌与精子的发生受到多种因素的调节,TGF-β1及其细胞内信号传导分子Smad2与Smad4蛋白参与睾丸发育及精子发生的调控。为了阐明TGF-β1在羊驼睾丸发育及精子发生中的作用及其作用的分子机制,本实验以12月龄和24月龄的羊驼睾丸为研究对象,采用Western Blotting技术,对TGF-β1,Smad2与Smad4在羊驼睾丸蛋白水平的表达进行研究;采用免疫组织化学SABC法对TGF-β1、Smad2与Smad4在羊驼睾丸的表达进行组织学定位。免疫组化的定量采用Mias-2000图象分析系统进行光密度(Opitical density,OD)的测定,实验结果用One-Way ANOVA单因子方差分析。 Westem blotting结果显示羊驼睾丸组织粗蛋白提取物中存在分子量约为25KD,与多克隆兔抗TGF-β1抗体发生免疫阳性反应的蛋白条带;分子量约为52KD,与多克隆兔抗Smad2抗体发生免疫阳性反应的蛋白条带;分子量约为62KD,与多克隆兔抗Smad4抗体发生免疫阳性反应的蛋白条带;免疫组化结果显示TGF-β1及其细胞内信号传导分子Smad2与Smad4在12月龄和24月龄羊驼睾丸的间质细胞、支持细胞和各级生精细胞均有不同程度的表达。光密度测定结果显示:TGF-β1在12、24月龄羊驼睾丸间质细胞的光密度分别为0.7305±0.0115、0.5626±0.0122,在支持细胞分别为0.4207±0.0130、0.3257±0.0082,在精原细胞分别为0.4579±0.0092、0.3743±0.0158(P<0.01),在管周肌样细胞分别为0.64554±0.0820、0.65694±0.0230(p>0.05);Smad2在12、24月龄羊驼睾丸间质细胞的光密度分别为0.54460±01034、0.5712±0.0086(p>0.05),在支持细胞为0.1741±0.0088、0.3794±0.01066,在精原细胞为0.30160±.01440、0.5604±0.0078(P<0.01);Smad4在12、24月龄羊驼睾丸的间质细胞的光密度分别为0.7425±0.0113、0.6599±0.0107,在支持细胞为0.2552±0.0129、0.4699±0.0083,在精原细胞为0.4417±0.0138、0.5136±0.0089(p<0.01),TGF-β1、Smad2与Smad4在同一年龄阶段的不同细胞的表达差异显著(p<0.01,P<0.05)。 结论:羊驼睾丸有TGF-β1及其细胞内信号传导分子Smad2与Smad4的表达;TGF-β1

论文目录

  • 中文摘要
  • 前言
  • 1.睾丸生长发育的调节因子
  • 2.TGF-β1在睾丸中的表达及研究展
  • 3.TGF-β受体
  • 4.Smads在睾丸中的表达
  • 5.羊驼的生殖特性
  • 材料与方法
  • 1.组织材料
  • 2.免疫印记杂交反应(Western Blotting Hybridization)
  • 3.HE染色
  • 4.免疫组织化学SABC反应
  • 结果
  • 1.Western Blotting印迹杂交结果
  • 2.HE染色结果
  • 3.免疫组化结果
  • 讨论
  • 1.羊驼睾丸组织学结构特征分析
  • 2.TGF-β1在羊驼睾丸表达的分析
  • 3.Smad2蛋白在羊驼睾丸表达的分析
  • 4.Smad4在羊驼睾丸表达的分析
  • 5.TGF-β1与Smad2、Smad4在羊驼睾丸表达的分析
  • 结论
  • 参考文献
  • 英文摘要
  • 附图
  • 图版说明
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].Smad2蛋白在子宫颈癌中的表达及意义[J]. 中国现代医学杂志 2012(20)
    • [2].苦参碱调控TGF-β/Smad2信号通路逆转大鼠胰腺纤维化的作用研究[J]. 江西医药 2019(04)
    • [3].黄芪甲苷激活TGF-β1/Smad2信号通路诱导骨髓间充质干细胞向周细胞分化的作用研究[J]. 现代生物医学进展 2018(08)
    • [4].信号传导蛋白Smad2和Smad3的研究进展[J]. 辽宁医学院学报 2009(03)
    • [5].银屑病患者皮损中转化生长因子-β_1、-β_1受体及其信号转导蛋白Smad2、3的表达[J]. 临床皮肤科杂志 2014(05)
    • [6].内毒素所致肺损伤纤维化时转化生长因子-β_1/Smad2信号通路的变化[J]. 广东医学 2012(02)
    • [7].Smad2、Erk2及NF-kB在宫腔粘连组织中表达的临床研究[J]. 妇产与遗传(电子版) 2017(04)
    • [8].Treg与促炎因子协同作用活化子宫内膜间质细胞Smad2信号通路[J]. 现代免疫学 2016(06)
    • [9].清燥救肺汤对乌拉坦诱导肺癌模型鼠TGF-β1、Smad2和p38 MAPK的影响[J]. 中药药理与临床 2018(03)
    • [10].μ阿片受体通过调控Smad2抑制乳腺癌细胞迁移侵袭[J]. 岭南急诊医学杂志 2020(01)
    • [11].Smad2蛋白在正常宫颈、宫颈上皮内瘤变与宫颈浸润癌中的表达及意义[J]. 中国现代医生 2013(29)
    • [12].“三法三穴”推拿手法对坐骨神经损伤大鼠运动功能和转化生长因子β1/Smad2通路蛋白表达的影响[J]. 中国康复理论与实践 2020(04)
    • [13].转录因子Smad2高表达载体的构建和鉴定[J]. 国外医学(医学地理分册) 2015(04)
    • [14].单味药鹿茸调控大鼠骨关节炎软骨组织Smad2、3表达的研究[J]. 中国中西医结合杂志 2014(02)
    • [15].来氟米特干预肾小球系膜细胞Smad2的表达及Ⅳ型胶原分泌的体外研究[J]. 广州医药 2013(03)
    • [16].替米沙坦抑制SHR大鼠心肌Smad2、3蛋白表达及减轻心肌纤维化作用的研究[J]. 中国当代医药 2010(25)
    • [17].姜黄素通过抑制TGF-β/smad2信号通路抑制人肝星状细胞纤维化作用研究[J]. 中国免疫学杂志 2020(04)
    • [18].Smad2在附植后早期绵羊子宫内膜和滋养层的分布[J]. 中国农学通报 2010(12)
    • [19].来氟米特对转化生长因子β_1诱导的体培养的大鼠肾小球系膜细胞中Smad2表达的影响[J]. 中华妇幼临床医学杂志(电子版) 2010(06)
    • [20].子宫内膜异位症患者子宫内膜组织中Rab5、Smad2基因表达及其临床意义[J]. 河北医科大学学报 2019(07)
    • [21].道地通管汤对输卵管炎大鼠转化生长因子-βⅡ型受体和Smad2的mRNA表达的影响[J]. 广西医学 2016(09)
    • [22].Smad2基因敲除小鼠冷冻胚胎库的建立[J]. 实验动物科学 2008(01)
    • [23].茵陈蒿汤对肝纤维化大鼠Caspase-12通路以及TIMP-1、Smad2的影响[J]. 实验动物科学 2020(02)
    • [24].淫羊藿次苷Ⅱ抑制慢性脑低灌注大鼠海马PDE 4、PDE 5蛋白表达及TGF-β1/Smad2信号通路[J]. 遵义医学院学报 2019(02)
    • [25].复方牛胎肝提取物抑制小鼠转化生长因子β1/Smad2信号通路发挥抗纤维化的作用机制[J]. 临床肝胆病杂志 2014(04)
    • [26].转化生长因子-β1诱导下肾小球系膜细胞Smad2的表达与Ⅳ型胶原分泌的相关性研究及来氟米特的干预作用[J]. 中华妇幼临床医学杂志(电子版) 2013(04)
    • [27].半导体量子点-Smad2单克隆抗体探针检测大鼠牙乳头细胞内Smad2信号蛋白分子核移位过程[J]. 基础医学与临床 2009(08)
    • [28].益气化瘀清热方及其拆方对大鼠肾系膜细胞表达Smad2及泛素mRNA的影响[J]. 时珍国医国药 2017(05)
    • [29].TGF-β1、Smad2和Smad4蛋白表达在可手术切除非小细胞肺癌中的表达[J]. 中国肺癌杂志 2015(09)
    • [30].深低温停循环对大鼠额叶皮质Smad2和Smad4表达的影响[J]. 昆明医学院学报 2011(06)

    标签:;  ;  

    TGF-β1及其信号传导分子Smad2和Smad4在羊驼睾丸的表达与定位
    下载Doc文档

    猜你喜欢