高产聚-β-羟基丁酸菌株筛选及发酵提取工艺研究

高产聚-β-羟基丁酸菌株筛选及发酵提取工艺研究

论文摘要

聚-β-羟基丁酸(Poly-β-hydroxybutyrate, PHB)是微生物在碳、氮等营养失衡的条件下合成的碳源与能源的高分子储存物(分子量50000-1000000)。作为微生物合成的可降解材料,PHB除了具有与化学合成高分子相似的理化性质,还具有一般化学合成高分子所没有的性质如光学活性、低透氧性、抗紫外辐射、生物可降解性、生物相容性、压电性和抗凝血性等,在工业、农业、环保、食品、医药等领域具有十分广阔的应用前景。如在医疗领域,PHB可以作为药物基质植入人体,以控制药物的释放,且最终降解产物为B-羟基丁酸,对人体没有任何毒副作用。本文从自然环境分离得到—株较高产PHB巨大芽孢杆菌菌株Bm-10,通过培养条件、培养基组分优化,提高PHB产量,发酵小试初步确定摇瓶发酵条件与发酵罐发酵条件的相对一致性;通过提取条件优化提高PHB的提取效率,从而最大化PHB产量;最后对实验中获得的提取物进行纯化分析,判断其结构、纯度等。首先,从浙江省各地(绍兴、宁波、金华、杭州、台州、丽水、温州)采集的土壤(主要来源有河底淤泥、排污口岸泥土、花坛土壤、菜地土壤等)中分离筛选芽孢杆菌菌株416株。通过对PHB的定性、定量筛选等手段获得较高产PHB菌株,同时进行连续传代培养以获得PHB产量及遗传性状稳定的目的菌株。其次,采用单因素法优化发酵条件,培养基中的碳源、氮源及两者比例。利用响应面法研究对PHB产量影响较大的4个因素(蔗糖浓度、牛肉膏浓度、初始pH、培养温度)之间的交互关系以及最佳值。利用响应面法建立回归方程。通过计算获得最优发酵条件为:初始pH为7.40,培养温度为29.81℃,蔗糖浓度为48.48 g/L,牛肉高浓度为26.06 g/L。经过单因素及响应面优化后Bm-10的PHB产量为5.308 g/L,比筛选时PHB产量(0.76g/L)提高6.98倍。第三,在摇瓶发酵条件优化的基础上,研究菌株Bm-10应用于工业化的潜力。以菌体情况、PHB产量、PHB所占菌体百分比及溶氧情况为检测指标,在3.7L发酵罐上进行研究,为实验室后期优化生产PHB打下一定基础。第四,为了尽可能的使PHB产量最大化,还对提取工艺进行了初步研究。主要从单因素实验的基础上再进行响应面优化提取条件。从单因素实验得出当提取液中氯仿浓度75%,提取温度60℃,提取时间3.0 h。通过响应面法优化PHB提取条件,得到一个二次多项式回归模型(R2=0.9953),模型失拟项不显著(P=0.058>0.05),拟合度良好,这说明采用响应面法得到的工艺参数较为可信。最终结果表明PHB的最佳提取条件:氯仿浓度69.7%,提取温度59.7℃,提取时间3.0 h。最后,将实验提取获得的粉末状或薄膜状固体采用紫外吸收光谱(UV)、核磁共振(NMR)等手段进行了分析,并与标准品进行比较。紫外吸收光谱中无杂质峰并且与PHB标准品的吸收峰一致,证明提取产物较纯,初步确定该提取物为PHB类似物,在浓硫酸降解过程中出现巴豆酸;核磁共振中的氢谱和碳谱分析可知,该提取物的结构为—[—O—CH(CH3)—CH2—CO—-]—-n。综合结果表明,从巨大芽孢杆菌内提取获得的物质为聚-β-羟基丁酸(PHB)并且纯度接近100%。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 目录
  • 第一章 文献综述
  • 1 PHB概述
  • 1.1 PHB的结构与性质
  • 1.2 PHB研究的必要性
  • 2 PHB的应用
  • 2.1 PHB的生理功能
  • 2.2 PHB在生产上的应用
  • 3 PHB的合成
  • 3.1 PHB的生物合成
  • 3.2 活性污泥生产PHB
  • 3.3 化学合成PHB
  • 3.4 转基因植物生产PHB
  • 4 PHB降解
  • 4.1 热降解
  • 4.2 生物降解
  • 5 PHB研究进展
  • 5.1 应用研究
  • 5.2 国内外应用基础研究
  • 6 立项背景
  • 7 研究内容及目的
  • 7.1 主要研究内容
  • 7.2 研究目的
  • 7.3 技术路线
  • 第二章 高产PHB芽孢杆菌菌株培育
  • 1 材料与仪器
  • 1.1 菌株来源
  • 1.2 培养基
  • 1.3 药品及仪器
  • 2 实验方法
  • 2.1 菌株的分离
  • 2.2 产PHB菌株的初筛
  • 2.3 PHB含量测定及目的菌株确定
  • 2.4 菌株形态鉴定及染色鉴定
  • 2.5 菌株的生理生化性质鉴定
  • 2.6 16S rDNA的PCR扩增、序列测定和系统发育分析
  • 3 结果与分析
  • 3.1 芽孢杆菌的分离纯化
  • 3.2 定性筛选含PHB芽孢杆菌
  • 3.3 定量筛选及目的菌株确定
  • 3.4 菌株的鉴定
  • 4 讨论
  • 第三章 PHB发酵培养基主要组分及摇瓶培养条件优化
  • 1 材料
  • 1.1 菌种
  • 1.2 培养基配方
  • 1.3 仪器与药品
  • 2 实验方法
  • 2.1 氮源对PHB产量的影响
  • 2.2 碳源对PHB产量的影响
  • 2.3 接种量对PHB产量的影响
  • 2.4 培养时间对PHB产量的影响
  • 2.5 摇床转速对PHB产量的影响
  • 2.6 培养温度对PHB产量的影响
  • 2.7 初始pH对PHB产量的影响
  • 2.8 碳氮源浓度对PHB产量的影响
  • 3 结果与分析
  • 3.1 氮源对Bm-10菌株PHB产量的影响
  • 3.2 碳源对Bm-10菌株PHB产量的影响
  • 3.3 接种量对PHB产量的影响
  • 3.4 培养时间对PHB产量的影响
  • 3.5 摇床转速对PHB产量的影响
  • 3.6 培养温度对PHB产量的影响
  • 3.7 初始pH的影响
  • 3.8 碳氮源浓度对PHB产量的影响
  • 4 讨论
  • 第四章 响应面法优化PHB发酵条件
  • 1 材料
  • 1.1 菌种
  • 1.2 培养基配方
  • 1.3 仪器与药品
  • 2 实验方法
  • 2.1 菌体培养
  • 2.2 菌体预处理
  • 2.3 PHB的测定
  • 2.4 Box-bohnken实验设计
  • 3 结果与分析
  • 3.1 数学模型的建立
  • 3.2 响应面及等高线分析结果
  • 4 讨论
  • 第五章 发酵小试
  • 1 材料
  • 1.1 菌种
  • 1.2 培养基配方
  • 1.3 仪器与药品
  • 2 实验方法
  • 2.1 菌体培养
  • 2.2 摇瓶放大实验
  • 2.3 上罐测定
  • 2.4 菌体干重测定
  • 2.5 PHB的测定
  • 3 结果与分析
  • 3.1 摇瓶放大实验
  • 3.2 上罐发酵
  • 4 讨论
  • 第六章 聚-β-羟基丁酸(PHB)提取工艺的优化
  • 1 材料与方法
  • 1.1 实验菌种
  • 1.2 培养基
  • 1.3 仪器与药品
  • 2 实验方法
  • 2.1 菌体培养
  • 2.2 菌体预处理
  • 2.3 PHB的测定
  • 2.4 细胞破碎法对PHB提取的影响
  • 2.5 提取温度对PHB提取的影响
  • 2.6 提取时间对PHB提取的影响
  • 2.7 提取液配比对PHB提取的影响
  • 2.8 响应面优化提取条件
  • 3 结果与分析
  • 3.1 细胞破碎法对PHB提取的影响
  • 3.2 提取温度对PHB提取量的影响
  • 3.3 提取时间对PHB提取量的影响
  • 3.4 氯仿浓度对PHB提取量的影响
  • 3.5 响应面优化实验
  • 4 讨论
  • 第七章 PHB纯化分析
  • 1 材料
  • 1.1 实验菌种
  • 1.2 培养基
  • 1.3 仪器与药品
  • 2 实验方法
  • 2.1 菌体培养
  • 2.2 PHB的提取纯化
  • 2.3 紫外吸收光谱分析
  • 2.4 核磁共振分析
  • 3 结果与分析
  • 3.1 PHB的提取纯化
  • 3.2 紫外吸收光谱分析(UV)
  • 3.3 核磁共振分析PHB结构
  • 4 讨论
  • 第八章 小结与建议
  • 1 小结
  • 2 建议
  • 参考文献
  • 附录 巨大芽孢杆菌Bm-10的来源、鉴定及发酵情况
  • 攻读学位期间取得的研究成果
  • 致谢
  • 相关论文文献

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