基于表达序列标签的玉米单核苷酸多态性标记开发

论文摘要

单核苷酸多态性（Single Nucleotide Polymorphism, SNP）是由单碱基颠换、转换、插入或缺失引起的DNA序列变异。与限制性片段长度多态性（Restriction Fragment Length Polymorphism, RFLP）和简单重复序列（Simple Sequence Repeat, SSR）等常用分子标记相比,SNP具有分布密度高、遗传稳定、与表型性状相关性强、检测简便、易于实现自动化分析等诸多优点,被称为第三代分子标记。针对SSR分子标记密度不足,现有的SNP分子标记开发一般只基于两种基因型的序列差异,用以检测其他基因型的材料时多态性不高,不能满足目前玉米基因精细定位需要的现状,本研究从公共数据库下载来自不同遗传背景的玉米表达序列标签（Expressed Sequence Tag,EST）,运用各种生物信息学软件和自主编写的程序,开发基于EST序列的SNP分子标记,并通过高分辨率熔解（High Resolution Melt, HRM）技术验证部分标记的多态性。以生物信息学理论为基础,利用Blast、CrossMatch、Phrap、ePrimer3、e-PCR和自主开发的Perl脚本程序,基于Windows XP和Linux操作系统构建数据分析系统,并使用Perl语言结合Bioperl模块编写的脚本程序让整个分析过程自动化,使EST数据得到快速、有效的分析。该数据分析系统完成了EST序列聚类,载体序列、低质量序列和重复序列的去除,EST序列拼接,SNP位点的发掘,PCR引物的设计和筛选,SNP分子标记定位以及多态性信息含量（Polymorphism Information Content, PIC）计算。通过对2018530条玉米EST序列的聚类与拼接发掘出遍布全基因组的80363个SNP位点。在SNP位点两侧的保守序列上设计PCR引物,开发出12388个SNP分子标记,包含34721个SNP位点,12762个位点的多态性信息含量（PIC）大于0.4,具有高度多态性。其中,6008个标记只含单一的SNP位点。根据SNP标记所在“B73”自交系基因组BAC序列在染色体上的位置,12117个标记可定位于玉米的10条染色体上,以第1染色体上的标记最多。并基于Microsoft Windows XP操作系统,利用Adobe Dreamweaver等软件在四川农业大学玉米研究所网站上建立标记公共数据库的静态平台（http://www.sicau.edu.cn/web/yms/snp/snp.html）,所有SNP分子标记及相关信息可登录该网页查阅。从所开发的SNP分子标记中随机挑选9对标记引物,以46个玉米自交系的为材料,根据差异核苷酸高分辨率熔解曲线形状的不同,利用HRM技术对加有饱和荧光染料的实时定量PCR扩增产物进行基因分型来验证SNP的多态性。荧光值差异曲线显示：在有荧光信号的自交系中,9对引物的PCR产物都被HRM分型,表现出多态性,P5和P6出现两种基因型,其余引物都显示出3种基因型,SNP检测率为100%。熔解峰显示：对于有信号的自交系,9对引物的PCR产物熔解峰都为单一峰,无非特异性扩增及引物二聚体产生,且峰值相近,说明这些引物的特异性高较好。由于在SNP标记开发过程中,引物是基于模式自交系“B73”的BAC文库设计及筛选的,扩增信号的有无可能跟B73与其他自交系在引物结合区域的核苷酸差异有关。每对引物都有少数自交系目的条带没有被扩增出来,HRM熔解无荧光信号,其中,P4只有“丹340”无信号,P1最多,有14个自交系没有信号。综上所述,本研究开发SNP分子标记共计12388个,其中6008个标记只含单一的SNP位点,这些标记具有较高的多态性,在基因精细定位、关联分析及分子标记辅助育种上具有一定的应用价值。

论文目录

• 摘要
• Abstract
• 1 文献综述
• 前言
• 1.1 分子标记概述
• 1.1.1 DNA分子标记的概念
• 1.1.2 分子标记的主要类型
• 1.2 SNP在玉米遗传育种中的应用及研究进展
• 1.2.1 构建高密度遗传连锁图谱
• 1.2.2 遗传图谱和物理图谱的整合
• 1.2.3 基因型与表现型关联分析
• 1.2.4 种质资源遗传多样性研究和保存
• 1.2.5 物种进化和生物多样性研究
• 1.3 SNP位点的生物信息学发掘
• 1.3.1 基于EST序列的SNP发掘
• 1.4 SNP的实验室检测方法
• 1.4.1 直接测序
• 1.4.2 变性梯度凝胶电泳（DGGE）
• 1.4.3 变性高效液相色谱法（DHPLC）
• 1.4.4 等位基因特异寡核苷酸片段分析（ASO）
• 1.4.5 TaqMan技术
• 1.4.6 基因芯片技术
• 1.4.7 高分辨率溶解（HRM）
• 1.5 现有的SNP数据库
• 1.6 研究目的及方法
• 2 材料和方法
• 2.1 本地化数据分析系统的构建
• 2.1.1 实用数据提取系统的构建
• 2.1.2 本地化序列比对系统的构建
• 2.1.3 SNP分子标记开发系统的构建
• 2.2 SNP分子标记的开发
• 2.2.1 原始数据来源
• 2.2.2 EST序列前期处理
• 2.2.3 与CDS同源的EST序列聚类
• 2.2.4 EST序列拼接与SNP位点发掘
• 2.2.5 保守序列的获取及引物设计
• 2.2.6 电子PCR及引物筛选
• 2.2.7 多态性信息含量计算
• 2.2.8 SNP分子标记数据库建立
• 2.2.9 供验证SNP分子标记挑选
• 2.3 SNP分子标记的验证
• 2.3.1 玉米材料
• 2.3.2 实验仪器
• 2.3.3 玉米基因组DNA的提取及检测
• 2.3.4 SNP分子标记验证—HRM技术
• 3 结果与分析
• 3.1 SNP分子标记开发
• 3.1.1 SNP标记及其数据结构
• 3.1.2 SNP标记在染色体上的分布
• 3.1.3 SNP位点的多态性信息含量
• 3.2 SNP分子标记验证
• 3.2.1 高分辨率熔解曲线
• 3.2.2 自交系间SNP分型
• 4 讨论
• 4.1 SNP的高多态性及适应性
• 4.2 本地化数据分析系统构建的必要性
• 4.3 EST序列质量控制
• 4.4 EST-SNP位点发掘
• 4.5 SNP位点的多态信息含量
• 4.6 高分辨率熔解技术用于SNP检测的优势
• 4.7 PCR引物质量与特异性
• 4.8 SNP分型
• 参考文献
• 致谢