志贺氏菌多克隆抗体制备及ELISA检测方法的建立

志贺氏菌多克隆抗体制备及ELISA检测方法的建立

论文摘要

志贺氏菌属细菌属于肠道致病菌,可引起临床上严重的腹泻。目前志贺氏菌的检测方法有:常规检测方法、分子生物学检测方法、毒素检测以及免疫学检测方法等。常规检测方法虽然准确性好,但所需时间长;分子生物学方法快速、灵敏、特异性强,且适用于不常见或新的病原微生物的检测,但成本较高,且要求较高的技术水平;VITEK(全自动细菌生化分析仪)、VIDAS(全自动免疫分析仪)等虽然快速准确、检测量大,但仪器费用颇高;免疫学中ELISA方法,具有操作简便、快速、灵敏的优点而广泛应用于致病菌的检测。本文通过对热灭活的抗原免疫新西兰大白兔,制备的抗血清,通过间接ELISA方法测得抗体效价,发现免疫家兔50d后抗体逐渐上升,最终抗体效价为1:51200,采用辛酸-硫酸铵方法纯化抗体得到纯度较高的IgG。通过对间接ELISA反应条件的系列摸索,确定了各组分的最适工作条件。试验结果表明,Costar公司生产的酶标板的变异系数为9.3%,达到ELISA的要求;最适封闭条件为5%脱脂牛乳,37℃,1h;抗体最适浓度为1.25μg/mL;抗体和HRP羊抗兔IgG的反应时间均为37℃,1h;间接ELISA方法底物在室温显色5min,志贺氏菌检测灵敏度为105~106cfu/mL。通过对Dot-ELISA系列反应条件的摸索,确定了各组分的最适工作条件。试验结果表明:最适封闭条件为5%脱脂牛乳,37℃,1h;抗体最适浓度为2.5μg/mL;抗体和HRP羊抗兔IgG的反应时间均为37℃,1h;底物在室温显色15min,Dot-ELISA检测志贺氏菌检测灵敏度为106cfu/mL。阻断试验和交叉试验表明抗体不与沙门氏菌、变形杆菌、单增李斯特菌、金黄葡萄球菌、大肠杆菌、芽孢杆菌反应,具有良好的特异性。本研究建立的检测方法,为志贺氏菌的检测提供了行之有效的技术手段。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 缩略语表
  • 第一章 文献综述
  • 1.1 志贺氏菌概况
  • 1.1.1 志贺氏菌的发现
  • 1.1.2 志贺氏菌生物学特性
  • 1.2 志贺氏菌的检测方法
  • 1.2.1 常规检测技术
  • 1.2.2 分子生物学方法
  • 1.2.3 以免疫学方法建立的志贺氏菌快速检测技术
  • 1.2.4 毒素检测
  • 1.2.5 快速生化检测仪器法
  • 1.2.6 化学鉴定法
  • 1.3 本研究的意义
  • 第二章 抗体的制备与纯化
  • 2.1 材料
  • 2.1.1 菌株来源
  • 2.1.2 实验动物
  • 2.1.3 培养基
  • 2.1.4 主要试剂
  • 2.1.5 主要仪器
  • 2.1.6 ELISA溶液的配制
  • 2.1.7 蛋白反应液
  • 2.1.8 SDS-PAGE缓冲液的配制
  • 2.1.9 动物饲养与处理
  • 2.2 方法
  • 2.2.1 抗体的制备
  • 2.2.2 抗体纯化
  • 2.3 结果与讨论
  • 2.3.1 抗体产生进程
  • 2.3.2 间接ELISA测抗体效价
  • 2.3.3 抗体纯度鉴定
  • 2.3.4 抗体浓度测定
  • 2.3.5 抗体纯化后效价
  • 2.4 小结
  • 第三章 间接ELISA条件的优化
  • 3.1 材料
  • 3.1.1 抗体
  • 3.1.2 主要试剂
  • 3.1.3 主要仪器
  • 3.1.4 ELISA试剂和溶液
  • 3.2 方法
  • 3.2.1 间接—ELISA最佳工作条件确定
  • 3.2.2 特异性实验
  • 3.2.3 志贺氏菌的检测限
  • 3.3 结果与讨论
  • 3.3.1 间接—ELISA最佳工作条件确定
  • 3.3.2 特异性试验
  • 3.3.3 志贺氏菌检测限
  • 3.4 小节
  • 第四章 间接Dot-ELISA方法的建立
  • 4.1 材料
  • 4.1.1 抗体
  • 4.1.2 主要试剂
  • 4.1.3 主要仪器
  • 4.1.4 ELISA试剂和溶液
  • 4.2 间接Dot-ELISA方法的建立
  • 4.2.1 间接Dot-ELISA方法的操作程序
  • 4.2.2 结果判定
  • 4.2.3 特异性试验
  • 4.2.4 志贺氏菌的检测限
  • 4.3 结果与分析
  • 4.3.1 间接Dot-ELISA条件确定
  • 4.3.2 抗体特异性
  • 4.3.3 Dot-ELISA检测志贺氏菌的检测限
  • 4.4 小结
  • 参考文献
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].抗体制备与使用实验指南(生命科学实验指南系列)[J]. 遗传 2010(10)
    • [2].妊娠相关血浆蛋白A重组抗原表位分析及抗体制备[J]. 山东医药 2013(13)
    • [3].多克隆抗体制备方法的研究进展[J]. 中国草食动物科学 2012(S1)
    • [4].犬降钙素原蛋白多克隆抗体制备及应用分析[J]. 中国畜牧兽医 2020(03)
    • [5].单克隆抗体制备过程中的筛选问题[J]. 中学生物教学 2011(10)
    • [6].卵黄抗体制备影响因素及其在动物生产中的应用[J]. 中国饲料 2013(04)
    • [7].塞尼卡谷病毒3ABC蛋白的表达、纯化及多克隆抗体制备[J]. 河南农业科学 2020(01)
    • [8].抗苗勒管激素的单克隆抗体制备与鉴定[J]. 分子诊断与治疗杂志 2020(02)
    • [9].多胺调节因子-1原核表达与多克隆抗体制备[J]. 生物技术 2016(06)
    • [10].噬菌体展示技术及其在抗体制备中应用的研究进展[J]. 南昌大学学报(医学版) 2014(02)
    • [11].黄曲霉毒素新型抗体制备研究进展[J]. 食品安全质量检测学报 2014(08)
    • [12].铜绿假单胞菌黏附素蛋白的表达、纯化及多克隆抗体制备[J]. 生物技术 2020(02)
    • [13].中华鳖白细胞介素17原核表达及多克隆抗体制备[J]. 浙江农业科学 2020(02)
    • [14].副溶血性弧菌多克隆抗体制备及应用[J]. 食品与发酵工业 2020(08)
    • [15].草鱼TAB1蛋白的原核重组表达及其抗体制备[J]. 安徽农业大学学报 2020(02)
    • [16].蓖麻肌动蛋白基因的克隆、抗体制备和表达分析[J]. 华北农学报 2020(03)
    • [17].人源类溶菌酶蛋白4的多克隆抗体制备及其表达分析[J]. 中华男科学杂志 2017(01)
    • [18].“TSO思维课堂”模式下的生物教学环节—以《单克隆抗体制备》为例[J]. 中国教师 2016(02)
    • [19].CD14蛋白表达、纯化及单克隆抗体制备[J]. 现代生物医学进展 2020(19)
    • [20].草鱼Ⅲ型呼肠孤病毒NS66抗体制备及应用[J]. 微生物学通报 2020(01)
    • [21].RIK蛋白的重组表达、多克隆抗体制备及其功能的初步研究[J]. 免疫学杂志 2016(05)
    • [22].治疗性抗体制备的研究进展[J]. 海南医学 2013(22)
    • [23].抗PⅠNP单克隆抗体制备及应用[J]. 云南大学学报(自然科学版) 2020(S2)
    • [24].人源性EGFL6的重组表达及多克隆抗体制备研究[J]. 免疫学杂志 2013(06)
    • [25].水稻未知功能结构域基因OsDUF6的抗体制备[J]. 福建农业学报 2020(02)
    • [26].单克隆抗体制备的筛选过程及意义[J]. 吉林农业 2014(17)
    • [27].小鼠抗人ABHD16A多克隆抗体制备[J]. 河南农业大学学报 2020(02)
    • [28].水痘-带状疱疹病毒糖蛋白N的单克隆抗体制备及初步研究[J]. 病毒学报 2017(03)
    • [29].抗人胱抑素C单克隆抗体制备及免疫检测体系建立[J]. 卫生研究 2017(04)
    • [30].类泛素化蛋白NEDD8单克隆抗体制备[J]. 中国动物传染病学报 2019(06)

    标签:;  ;  

    志贺氏菌多克隆抗体制备及ELISA检测方法的建立
    下载Doc文档

    猜你喜欢