苏云金芽胞杆菌资源多样性分析与杀虫基因发掘

苏云金芽胞杆菌资源多样性分析与杀虫基因发掘

论文摘要

苏云金芽胞杆菌(Bacillus thuringiensis, Bt),革兰氏阳性细菌,在芽胞形成期可产生具有杀虫活性的伴胞晶体。Bt晶体主要由cry基因编码的杀虫晶体蛋白组成,在害虫的防治中具有重要作用,有巨大的商业价值,因此发掘新基因并进行知识产权保护是Bt资源研究的重要内容。知识产权作为综合竞争力的重要体现,而目前我国在Bt杀虫基因资源的知识产权方面处于劣势,大部分Bt杀虫基因的专利权掌握在西方各大型农业生物技术企业手中,我国掌握的Bt新的基因发明专利不足60项。高通量测序技术的发展为发掘杀虫基因提供了新思路,成为国内外发掘Bt杀虫基因的主要手段。但是测序价格较高,Bt资源库中存在的冗余菌株会造成较大的资金浪费,目前尚没有便捷的方法去除重复菌株。因此,迫切需要建立可以快速分析比较大量样品的方法,来排除重复菌株,进一步提高杀虫基因发掘效率。本论文在分离1500株Bt菌株的基础上,进一步建立了菌株多样性分析方法,对菌株多样性进行研究,去除冗余菌株,对其中90株菌株进行了杀虫基因测序筛选,主要结果如下:Bt菌株分离与鉴定:杀虫活性评估结果显示多数菌株对鳞翅目害虫有较高活性,1500株测试菌株中,对棉铃虫有活性的菌株有1346株,对玉米螟有活性菌株有813株,而对叶甲类害虫大猿叶甲有活性的菌株较少,只有42株;镜检结果显示不同菌株产生的晶体形状、大小、种类有较大差异,晶体种类主要为菱形,部分为球形和不规则的晶体形状;杀虫晶体蛋白图谱显示大部分菌株表达了130kD蛋白,部分菌株还表达了100Kd、60kD蛋白,具有典型Bt杀虫晶体蛋白的特征;质粒图谱显示不同菌株质粒图谱条带数量和大小都有所不同,并且有部分菌株图谱相似,说明资源库中有冗余菌株。建立Bt菌株多样性分析方法:首先,设计了可以扩增多个基因家族的兼并引物,fastPCR软件分析结果显示该引物可以对超过30种的杀虫基因家族进行较好的扩增,PCR实验检测显示,该引物可以扩增出预期条带但是条带较弱。进一步通过增加侧翼特异序列的办法对兼并引物进行改良,改良后的引物显著提高了扩增效率。同时,还对引物浓度与退火温度进行了优化,利用72个不同血清型的标准菌对优化后的PCR体系进行了评估,结果显示95%以上的菌株都可以获得预期条带;利用含有多个基因的HD12菌株评估了优化后体系对多个基因同时扩增的能力,结果显示优化后的PCR可以从HD12获得9种不同的RFLP类型。这些结果说明优化后的PCR体系具备了cry基因指纹图谱的基本要求。此外,本论文还对Bt基因组提取方法进行了改良,改良后的方法可以提取并获得质量均一的基因组DNA。用改良的PCR体系对Bt基因组进行扩增,并用HinfI对PCR产物进行消化,利用LabChip GX电泳系统进行分析,获得了888个菌株的RFLP图谱。进一步对电泳图谱进行数字化、计算相似性、构建系统发生树分析。结果显示,该方法可以有效分析菌株多样性,去除冗余菌株,获得可用于进一步基因发掘的菌株。90株Bt菌株杀虫基因测序筛选:利用高通量测序技术分析了90株不同的Bt菌株的序列,进一步通过SOAPdenovo软件拼接、GeneMark基因预测、模式杀虫基因数据库及专利数据库blast比对,最终获得全新杀虫基因21个。总之,本论文建立菌株多样性研究方法,解决了冗余菌株会造成资金的浪费的问题,最终完成了“菌株分离去除冗余基因测序筛选”这一杀虫基因高通量发掘平台的构建,为提升我国在Bt资源发掘中的竞争力提供了重要保障。

论文目录

  • CONTENTS
  • 摘要
  • Abstract
  • 1 前言
  • 1.1 苏云金芽胞杆菌及其多样性
  • 1.1.1 苏云金芽胞杆菌
  • 1.1.2 抗原蛋白多样性
  • 1.1.3 质粒图谱多样性
  • 1.1.4 Bc-Rep-PCR 图谱多样性
  • 1.1.5 gyrB 基因序列分析
  • 1.2 Bt 主要杀虫活性物质
  • 1.2.1 Cry 蛋白及其命名与分类
  • 1.2.2 Cry 蛋白结构与功能的关系
  • 1.2.3 Cry 蛋白结构域交换与杀虫特异性进化
  • 1.2.4 Vip 蛋白
  • 1.2.5 其它活性物质
  • 1.3 新杀虫基因鉴定克隆技术
  • 1.4 苏云金芽胞杆菌的应用
  • 1.4.1 Bt 杀虫剂研究与应用
  • 1.4.2 转 Bt 基因植物的研究及应用
  • 1.5 立题依据与目的意义
  • 1.5.1 立题依据
  • 1.5.2 研究目的与意义
  • 2 实验材料、仪器与方法
  • 2.1 实验材料
  • 2.1.1 菌株和质粒
  • 2.1.2 培养基与抗生素
  • 2.1.3 酶类与生化试剂
  • 2.1.4 溶液与缓冲液
  • 2.2 实验仪器
  • 2.3 实验方法
  • 2.3.1 样品采集与菌株分离
  • 2.3.2 菌株晶体的形态观察
  • 2.3.3 分离菌株杀虫活性的初步测定
  • 2.3.4 SDS-PAGE 电泳
  • 2.3.5 分离菌株蛋白多样性分析
  • 2.3.6 Bt 菌株质粒多样性分析
  • 2.3.7 Bt 基因组提取方法 1
  • 2.3.8 Bt 基因组提取方法 2
  • 2.3.9 Bt 基因组提取方法 3
  • 2.3.10 多样性分析引物的设计
  • 2.3.11 PCR 扩增反应(多样性分析)
  • 2.3.12 酶切反应
  • 2.3.13 LabChip 电泳
  • 2.3.14 DNA 片段连接
  • 2.3.15 大肠杆菌感受态细胞的制备及转化
  • 2.3.16 高通量测序序列拼接与基因预测流程
  • 3 结果与分析
  • 3.1 样品采集与菌株分离
  • 3.1.1 菌株晶体形态多样性
  • 3.1.2 分离菌株杀虫活性初步测定
  • 3.1.3 分离菌株蛋白多样性
  • 3.1.4 Bt 质粒多样性
  • 3.2 Bt 基因组提取技术改良
  • 3.3 PCR-RFLP 体系优化
  • 3.3.1 引物设计与优化
  • 3.3.2 引物浓度与退火温度优化
  • 3.3.3 PCR 体系评估
  • 3.4 Bt 菌株进行多样性分析
  • 3.4.1 LabChip 电泳分析 PCR-RFLP 图谱
  • 3.4.2 PCR-RFLP 图谱数字化
  • 3.4.3 PCR-RFLP 图谱相似分析
  • 3.4.4 PCR-RFLP 图谱的的系统发生树
  • 3.4.5 菌株资源多样性统计
  • 3.5 杀虫基因发掘
  • 3.6 Bt 菌株多样性分析平台建立
  • 4 讨论
  • 5 结论
  • 致谢
  • 参考文献
  • 攻读学位期间发表的学术论文
  • 相关论文文献

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