DHBV侵染规律和preS蛋白原核表达及在评价抗人类乙肝新药的应用

DHBV侵染规律和preS蛋白原核表达及在评价抗人类乙肝新药的应用

论文摘要

鸭乙型肝炎病毒(Duck Hepatitis B Virus,DHBV)与乙型肝炎病毒(Hepatitis BVirus,HBV)同属嗜肝DNA病毒科,这类病毒的特征是有强的嗜肝细胞特性,在病毒形态、基因组结构、复制过程等生物学特性相似。DHBV感染鸭模型是研究HBV的生物学特性、致病机制和抗HBV药物的实验动物模型。本文通过调查四川地区麻鸭自然携带DHBV的情况,分离DHBV毒株,以此毒株为模板,扩增主要抗原基因preS。通过构建DHBV-preS原核表达质粒并诱导表达,从而对表达蛋白免疫原性、表达蛋白抗体介导的免疫组化检测人工感染DHBV后在体内的蛋白定位分析与侵染规律,以期系统地了解的入侵方式和复制机理,为阐明DHBV的发病机制提供关键的实验数据。同时建立基于定量检测DHBV的FQ-PCR方法,用于DHBV疾病模型研究,并结合体外模型HepG2.2.15细胞研究抗乙型肝炎新药,结果如下:DHBV毒株的分离及分子特征解析结果表明:四川麻鸭自然携带DHBV 4%,证实四川麻鸭是研究实验性DHBV感染动物模型的良好鸭种;对分离到的其中3株DHBV阳性血清全基因克隆、测序并进行生物信息学分析,发现全基因组均含3006个核苷酸(GenBank登录号EU429324,EU429325,EU429326),具有X-like开放阅读框特征;进一步研究ORF-S还表明该基因编码33个氨基酸,有四个疏水区,无N-糖基化位点,也无豆蔻酰化位点,在1~30aa内有一个明显的信号肽,在19~20aa处有断点,跨膜螺旋预测为外膜蛋白,抗原位点主要分布于preS区氨基酸序列中。根据DHBV-preS序列,设计一对特异性引物,以分离的DHBV毒株为模板扩增目标基因并将其克隆至pMD18-T载体,经PCR、酶切和DNA测序鉴定后,将DHBV-preS基因正向插入原核表达载体pET-32a(+)的ApaI和NcoI位点间,成功构建了重组表达质粒pET32a(+)/DHBV-preS。重组表达质粒pET32a(+)/DHBV-preS转化表达宿主菌BL21(DE3),用IPTG诱导,能表达出了大小约为37kD的preS重组蛋白,与预期表达蛋白分子量大小相符;经对不同诱导时间及诱导剂IPTG浓度等条件进行优化,确定重组质粒pET32a(+)/DHBV-preS的最佳诱导条件为0.8mmol/LIPTG、37℃条件下诱导4h。表达产物用镍柱亲和层析纯化后,将得到的preS重组蛋白做梯度稀释,初步建立ELISA检测DHBsAb的方法(间接法);同时将纯化的重组蛋白与等量弗氏佐剂混合制备preS重组蛋白免疫原,四次免疫家兔,获得的兔抗DHBV-preS高免血清经辛酸-硫酸铵粗提后,阴离子交换柱层析纯化抗体IgG。建立DHBV-preS基因表达蛋白抗体介导的免疫组化方法;针对DHBV的保守序列设计并合成引物及荧光标记探针,建立实时荧光定量聚合酶链反应(fluorsescencequantitative polymerase chain reaction,FQ-PCR)检测方法。建立的标准曲线循环阈值(cycle threshold,Ct值)与模板浓度具有良好的线性关系,相关系数为0.993,将其检测极限的Ct值通过标准曲线换算成拷贝数约为5copies/L,未检测到鸭病毒性肝炎、鸭瘟病毒、鸭源致病性大肠埃希氏菌、鸭源致病性沙门氏菌、鸭疫里默氏杆菌,表明FQ-PCR检测DHBV方法灵敏、特异性强。采用鸭乙型肝炎病毒人工方法感染1日龄四川麻鸭,攻毒后于不同时间采血分离血清,采集肝脏、胰腺、肾脏、脾脏等组织或器官,经建立的DHBV-preS基因表达蛋白抗体免疫组化方法和FQ-PCR方法检测DHBV在感染鸭体内侵染过程与定位分布,并结合组织学和血液生化指标对DHBV在感染鸭体模型侵染规律进行系统观察。结果显示:感染后2d可在血清和肝组织中检测出DHBV DNA,血清中DHBV DNA从感染后第10d~30d DHBV DNA的拷贝数保持在1.00E+09以上,肝组织中DHBVDNA的含量从感染后第5d~52d保持在5.00E+09以上;肝脏DHBV DNA第14d达到最高水平,而血清中DHBV DNA第22d达到最高水平。肝脏、胰腺、肾脏、脾脏的损伤程度与DHBV DNA水平成正相关;在感染后3~52d内的不同时间点从肝脏、胰腺、肾脏、脾脏及大脑六种组织器官中检测出DHBsAg,DHBsAg主要分布在细胞浆,少部分分布于细胞核,未能从食道、腺胃、肺、心脏、生殖器和肌肉中检测到DHBsAg,表明DHBV嗜肝的同时具有泛嗜性,且在靶器官的侵染与分布具有一定选择性;在感染后1~3d、52d以后各组织相继不能检出DHBsAg,感染后12~31d病毒在机体内各组织的分布最为广泛,感染后4d肝脏开始出现DHBsAg阳性细胞,感染后6d肾脏、胰腺、脾脏相继开始出现DHBsAg阳性细胞,而脑组织在感染后10d出现阳性细胞;肝脏的检出率最高,持续至52d,大脑的检出率最低,分析表明该蛋白可能是膜蛋白,具有运输核浆与引导病毒组分进入核内参与病毒复制的功能。DHBV感染后第4d,总蛋白和白蛋白含量开始降低,谷丙、谷草转氨酶活性升高(P<0.01),乳酸脱氢酶活性升高(P<0.01),肌酐和尿素有变化但无规律,表现为升高趋势,感染后44d开始,各项血液生化指标逐渐趋于正常值,表明DHBV引起肝脏损伤的同时累及肾脏。在建立的抗人类乙型肝炎新药体内药效评价的技术平台和体外模型HepG2.2.15上评价抗乙型肝炎新研制药物-核苷类似物(代号PNA)的作用。在HepG2.2.15细胞系中,PNA有明确的抑制HBV DNA复制作用,抑制HBsAg和HBeAg,在7.8~62.5μg/mL剂量范围内有剂量—时间依赖关系,未见到明显细胞学毒性;在鸭乙肝动物模型中,PNA对DHBV DNA抑制率达50%的最低用药剂量为口服20mg/kg,口服40mg/kg、80mg/kg PNA对DHBV的抑制率与拉米夫定口服组(50mg/kg)基本一致,可以减轻鸭脏炎症,抑制DHBsAg在肝脏中的表达。

论文目录

  • 本研究的创新点
  • 中文摘要
  • ABSTRACT
  • 缩略词
  • 第一部分 文献综述
  • 第一章 鸭乙型肝炎病毒的研究进展
  • 1 DHBV生物学特性
  • 1.1 包膜蛋白
  • 1.2 核蛋白
  • 1.3 P蛋白
  • 1.4 X抗原
  • 2 DHBV感染鸭原代肝细胞模型
  • 2.1 DHBV感染鸭原代肝细胞模型的建立
  • 2.2 DHBV感染鸭原代肝细胞模型的应用
  • 3 DHBV感染鸭动物模型
  • 3.1 DHBV感染动物模型的建立
  • 3.2 DHBV感染动物模型的影响因素
  • 4 DHBV感染动物模型的相关研究及应用
  • 4.1 DHBV感染鸭的各种动物模型
  • 4.2 DHBV突变株的生物学意义
  • 4.3 抗HBV药物筛选模型
  • 4.4 液制品消毒学领域的应用
  • 5 小结
  • 5.1 存在的问题
  • 5.2 展望
  • 第二章 病毒功能性蛋白的原核表达及其应用的研究进展
  • 1 概述
  • 2 病毒功能性蛋白表达采用的原核表达系统
  • 2.1 原核表达系统
  • 2.2 外源基因在大肠杆菌细胞中的表达
  • 2.3 影响克隆基因在大肠杆菌细胞中表达效率的因素
  • 3 病毒功能性基因的原核表达
  • 3.1 嗜肝DNA病毒的原核表达
  • 3.2 鸭乙型肝炎病毒preS蛋白的功能及其原核表达
  • 4 应用前景
  • 4.1 preS蛋白的功能研究
  • 4.2 preS抗原的诊断及预后作用
  • 4.3 preS抗原与疫苗
  • 第二部分 实验研究
  • 第三章 DHBV阳性血清的分离、全基因组的克隆及序列分析
  • 1 材料
  • 1.1 实验动物
  • 1.2 主要试剂
  • 1.3 菌株及质粒
  • 1.4 主要试剂配制
  • 1.5 主要仪器
  • 2 方法
  • 2.1 阳性血清的分离
  • 2.2 DHBV全基因组的克隆
  • 3 试验结果
  • 3.1 血清DHBV-DNA的分离
  • 3.2 DHBV全基因序列扩增和克隆
  • 3.3 四川麻鸭DHBV全基因测序结果
  • 3.4 四川麻鸭DHBV全基因序列分析
  • 4 讨论
  • 5 小结
  • 第四章 DHBV PRES基因表达质粒的构建与表达
  • 1 材料
  • 1.1 菌株及表达载体
  • 1.2 试验动物
  • 1.3 常用材料与试剂
  • 1.4 主要试剂配制
  • 1.5 仪器与设备
  • 2 方法
  • 2.1 扩增目的基因的引物设计
  • 2.2 PCR扩增目的基因
  • 2.3 PCR产物的鉴定
  • 2.4 原核表达质粒的构建
  • 2.5 转化表达菌株BL21
  • 2.6 诱导表达
  • 2.7 表达产物的SDS-PAGE分析
  • 2.8 Western blotting检测
  • 2.9 表达蛋白的可溶性和不可溶性分析
  • 2.10 表达条件的优化
  • 2.11 重组蛋白的大量诱导表达
  • 2.12 Ni—NTA亲和层析纯化重组蛋白的纯化
  • 2.13 纯化蛋白的应用
  • 3 结果
  • 3.1 PCR产物的琼脂糖凝胶电泳
  • 3.2 T载体克隆及测序鉴定
  • 3.3 原核表达质粒的构建及鉴定
  • 3.4 诱导表达
  • 3.5 可溶性分析
  • 3.6 免疫印迹
  • 3.7 表达条件的优化
  • 3.8 重组蛋白的纯化
  • 3.9 SDS-PAGE分析纯化蛋白
  • 3.10 纯化蛋白的应用
  • 4 讨论
  • 5 小结
  • 第五章 基于鸭乙型肝炎病毒PRES蛋白免疫组化方法建立及其病毒感染鸭的抗原定位
  • 1 材料
  • 1.1 试验毒株
  • 1.2 试验动物
  • 1.3 主要仪器
  • 1.4 主要试剂
  • 1.5 主要试剂配制
  • 2 方法
  • 2.1 雏鸭人工感染DHBV疾病模型的复制
  • 2.2 雏鸭人工感染DHBV标本采集
  • 2.3 免疫组化检测DHBV方法的建立
  • 3 结果
  • 3.1 免疫组化方法的建立
  • 3.2 免疫组化检测各组织器官的定位研究
  • 4 讨论
  • 4.1 免疫组化方法检测DHBsAg的建立
  • 4.2 免疫组化方法检测DHBsAg建立的意义
  • 4.3 免疫组化方法对DHBsAg的定位研究
  • 5 小结
  • 第六章 实时荧光定量PCR检测鸭乙型肝炎病毒方法的建立
  • 1 材料
  • 1.1 试验毒株
  • 1.2 主要仪器
  • 1.3 主要试剂
  • 2 方法
  • 2.1 标准品的制备
  • 2.2 待检标本的来源
  • 2.3 FQ-PCR条件的建立和优化
  • 2.4 FQ-PCR的敏感性检测
  • 2.5 FQ-PCR的特异性检测
  • 2.6 FQ-PCR的可重复性检测
  • 3 结果
  • 3.1 反应体系的优化
  • 3.2 荧光定量PCR标准曲线的建立
  • 3.3 荧光定量PCR稳定性和重复性试验
  • 3.4 荧光定量PCR特异性试验
  • 3.5 荧光定量PCR敏感性试验
  • 4 讨论
  • 5 结论
  • 第七章 鸭乙型肝炎病毒在感染鸭体内侵染规律
  • 1 材料
  • 1.1 试验毒株
  • 1.2 试验动物
  • 1.3 主要仪器
  • 1.4 主要试剂
  • 2 方法
  • 2.1 雏鸭人工感染DHBV疾病模型的复制
  • 2.2 雏鸭人工感染DHBV疾病模型的病理组织学研究
  • 2.3 DHBV在感染鸭体内的侵染和分布规律
  • 2.4 雏鸭人工感染DHBV疾病模型的血液生化指标的研究
  • 3 结果
  • 3.1 病理组织学变化
  • 3.2 免疫组化检测各组织器官的变化规律
  • 3.3 DHBV-DNA在血清和肝组织中的变化规律
  • 3.4 血液病理学变化
  • 4 讨论
  • 4.1 雏鸭人工感染DHBV后在体内的侵染规律及其意义
  • 4.2 DHBV感染发病机理探讨
  • 4.3 病理组织学和血液生化指标变化规律
  • 5 小结
  • 第八章 免疫组化、FQ-PCR和鸭乙型肝炎病毒感染模型联合评价抗人类乙肝新药的实验研究
  • 1 材料
  • 1.1 供试药物
  • 1.2 常用材料与试剂
  • 1.3 仪器与设备
  • 1.4 试剂配制
  • 2 体外实验方法
  • 2.1 细胞株
  • 2.2 HepG2 2.2.15细胞的传代与培养
  • 2.3 细胞毒性试验
  • 2.4 对细胞分泌(上清)的HBsAg、HBeAg的抑制试验
  • 2.5 上清病毒基因组DNA的分离及定量检测
  • 2.6 细胞总DNA的提取及定量检测
  • 3 体内实验方法
  • 3.1 毒株
  • 3.2 主要试剂
  • 3.3 实验动物及分组
  • 3.4 鸭肝组织标本形态学观察
  • 4 结果
  • 4.1 受试药物对HepG 2.2.15细胞毒性作用结果
  • 4.2 受试化合物细胞水平药效学研究结果
  • 4.3 FQ-PCR检测血清和肝组织中DHBV-DNA的结果
  • 4.4 病理学检查结果
  • 5 讨论
  • 6 小结
  • 参考文献
  • 致谢
  • 攻博期间发表的论文
  • 相关论文文献

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