微生物脱氮除硫（S～（2-））的研究

论文摘要

生物脱氮（NO3-→N2）除硫(S2-)是微污染水治理和水生态调控的重要技术,一般其需要反硝化细菌和硫细菌两种菌种参与完成。本研究采用选择性无机培养基从土壤中富集分离到45株细菌,经初筛选出5个菌株,通过脱氮除硫(S2-)试验做定量化学测定,从中选出一株既能脱氮又能除硫(S2-)且具有较高脱氮率和除硫(S2-)率的菌种（编号T39,下同）,并对该菌株的生物学特性进行了研究。结果表明:该菌株可以在以硫(S2-)作能源,以CO2作碳源,以硝酸盐作氮源的无机培养基中生长,在培养基中添加少量酵母浸出膏对其生长有促进作用;其菌落圆形、点状、浅黄;其细胞杆状,无芽孢,革兰氏染色阴性,可运动,兼厌气,非耐盐,中温性;其生长最适起始pH6.5～7.5,最适温度25～30℃。经对该菌株的16SrDNA序列进行测定和比对,结果显示该序列与多株施氏假单胞菌（Pseudomonas stutzeri）16SrDNA序列的同源性达到99%以上。此外,还以正交试验对该菌株脱氮除硫(S2-)最佳条件做了考察。结果表明:在厌氧,静止,温度35℃,起始pH8.0,C/N（HCO3-/NO3--N）4/1,S/N(S2-/NO3--N)4/1的条件下,在含NO3--N 10.35mg/L和S2-41.91mg/L的反应液中接种0.5%（W/V）的T39湿细胞做脱氮除硫(S2-)试验,18h脱氮率为98.5%,除硫(S2-)率为99.6%。经以平行的空白对照试验结果进行校正,18hT39的实际脱氮率为95.6%,除硫(S2-)率为55.8%。而以T39对微污染水做脱氮除硫(S2-)试验表明,以0.5%（W/V）湿细胞接

论文目录

• 前言
• 第一章 文献综述
• 1.1 生物脱氮的研究
• 1.1.1 氮素循环
• 1.1.2 氮素形态转化研究及其进展
• 1.1.3 生物脱氮的应用研究
• 1.2 生物脱硫的研究
• 1.2.1 硫素循环
• 1.2.2 生物脱硫的研究现状
• 1.3 生物脱氮除硫
• 第二章 材料与方法
• 2.1 材料
• 2.1.1 菌种来源
• 2.1.2 培养基
• 2-)菌株富集培养基'>2.1.2.1 脱氮除硫(S^2-)菌株富集培养基
• 2.1.2.2 分离培养基、穿刺培养基
• 2-)试验培养基'>2.1.2.3 脱氮除硫(S^2-)试验培养基
• 2.1.3 仪器与试剂
• 2.1.3.1 主要仪器设备
• 2.1.3.2 试剂
• 2.2 方法
• 2.2.1 试验中的测定项目
• 3-N浓度的测定'>2.2.1.1 NO₃-N浓度的测定
• 2-)浓度的测定'>2.2.1.2 硫化物(S^2-)浓度的测定
• 2-N浓度的测定'>2.2.1.3 NO₂-N浓度的测定
• 2.2.1.4 硫酸盐浓度的测定
• 2.2.1.5 pH的测定
• 2-)菌株的分离筛选'>2.2.2 脱氮除硫(S^2-)菌株的分离筛选
• 2-)菌株的富集培养'>2.2.2.1 脱氮除硫(S^2-)菌株的富集培养
• 2-)菌株的分离'>2.2.2.2 脱氮除硫(S^2-)菌株的分离
• 2-)菌株的初筛'>2.2.2.3 脱氮除硫(S^2-)菌株的初筛
• 2-)菌株的复筛'>2.2.2.4 脱氮除硫(S^2-)菌株的复筛
• 2.2.3 筛选菌株的形态特征
• 2.2.4 筛选菌株的生理特征试验
• 2.2.4.1 筛选株与分子氧的关系
• 2.2.4.2 生长素对筛选株生长的影响
• 2.2.4.3 温度对筛选株生长的影响
• 2.2.4.4 pH对筛选株生长的影响
• 2.2.4.5 筛选株嗜盐性实验
• 2.2.4.6 接种量对筛选株生长的影响
• 2.2.4.7 在最适培养条件下筛选株的生长
• 2.2.5 筛选菌株的分子生物学鉴定
• 2.2.5.1 提取筛选株总DNA
• 2.2.5.2 PCR
• 2.2.5.3 测序
• 2.2.5.4 16SrDNA序列分析
• 2-)最适条件的选择'>2.2.6 筛选株脱氮除硫(S^2-)最适条件的选择
• 2-)条件下的脱氮除硫(S^2-)试验'>2.2.7 在最适脱氮除硫(S^2-)条件下的脱氮除硫(S^2-)试验
• 2-)试验'>2.2.8 微污染水脱氮除硫(S^2-)试验
• 第三章 结果与分析
• 2-)菌株的富集分离和初步筛选'>3.1 脱氮除硫(S^2-)菌株的富集分离和初步筛选
• 3.2 初筛菌株的复筛
• 3.3 筛选株T39的形态特征
• 3.4 筛选株T39生理特征
• 3.4.1 筛选株T39与分子氧的关系
• 3.4.2 添加酵母膏对筛选株T39生长的影响
• 3.4.3 起始pH对筛选株T39生长的影响
• 3.4.4 湿度对筛选株T39生长的影响
• 3.4.5 NaCl浓度对筛选菌株T39生长的影响
• 3.4.6 接种量对筛选菌株T39生长的影响
• 3.4.7 在所选最适条件下筛选菌株T39的生长
• 3.5 筛选株T39的分子生物学鉴定
• 3.5.1 筛选株T39总DNA的提取
• 3.5.2 PCR验证
• 3.5.3 T3916SrDNA序列分析
• 2-)条件的选择'>3.6 T39最适脱氮除硫(S^2-)条件的选择
• 3.6.1 对脱氮的影响
• 2-)的影响'>3.6.2 对除硫(S^2-)的影响
• 2-条件的选择'>3.6.3 脱氮除硫(S^2-条件的选择
• 2-)条件下的脱氮除硫(S^2-)试验'>3.7 T39在所选最适脱氮除硫(S^2-)条件下的脱氮除硫(S^2-)试验
• 2-)应用试验'>3.8 微污染水脱氮除硫(S^2-)应用试验
• 第四章 结论和讨论
• 2-)的菌株的富集分离和筛选'>4.1 脱氮除硫(S^2-)的菌株的富集分离和筛选
• 4.2 筛选菌株的生物学特性
• 4.3 分子生物学鉴定
• 2-)作用条件'>4.4 筛选菌株最适脱氮除硫(S^2-)作用条件
• 2-)应用前景'>4.5 生物脱氮除硫(S^2-)应用前景
• 4.6 对于本研究的下一步设想
• 参考文献
• 致谢