论文摘要
目的1.观察RhoA, Rho激酶1(Rock1)mRNA在压力负荷性大鼠心肌中的表达情况,探讨小G蛋白Rho/Rock信号转导通路与压力负荷性大鼠左心室重构的关系。2 .观察Rho激酶抑制剂法舒地尔(fasudil)对心肌组织RhoA, Rock1mRNA表达、转化生长因子-β2及III型胶原含量的干预作用,探讨法舒地尔对压力负荷性大鼠左心室重构的影响及其可能机制。方法1.32只SD大鼠随机选取8只,作为假手术组,将其余的24只大鼠进行腹主动脉缩窄手术,造模1周后将造模大鼠随机分为2组,模型组和法舒地尔药物干预组,每组各12只。法舒地尔组法舒地尔5mg/kg,腹腔注射,每天两次,假手术组、模型组以等量生理盐水腹腔注射。自腹主动脉缩窄术后1周起各组给药,共4周。2.观察期间,法舒地尔组死亡1只。观察期满后,将动物处死后,准确秤取体重、全心湿重(HWW)、左心室游离壁湿重(LVFWW),根据LVFWW、左室肥厚指数(LVHI)、HWW作为判断是否存在心肌肥厚的指标。光镜HE染色和免疫组化方法检测Ⅲ型胶原观察心肌细胞和间质的变化,作为心肌重构的形态学检测指标。处死前测量大鼠尾动脉压,左室舒张末压(LVDEP),左室收缩压(LVSP),评价左室功能。逆转录多聚酶链反应(RT-PCR)方法检测RhoA, Rock1mRNA的表达,计算RhoA, Rock1mRNA与β-actin mRNA的灰度比值。免疫组化方法检测心肌转化生长因子-β2(TGF-β2),计算平均光密度(IOD)。结果1.大鼠一般情况:假手术组大鼠毛色有光泽,双目灵活有神,行动敏捷,对周围变化反应灵敏;模型组大鼠后期毛色逐渐失去光泽,精神萎靡,行动迟缓,倦卧;法舒地尔组大鼠一般状态较模型组好。2.心肌重构的形态学与组织学指标:模型组和法舒地尔药物干预组的HW、LVFWW、LVHI均高于假手术组(p<0.01)。模型组心肌细胞变性,出现局灶性、片状坏死,心肌纤维粗大断裂,心肌细胞核固缩,间质明显水肿;法舒地尔药物干预组心肌细胞肥大,轻度变性,心肌纤维无断裂,心肌细胞核形状略不整,心肌间质轻度水肿。模型组大鼠心肌Ⅲ型胶原IOD(127.10±2.70)明显增高,与假手术组(74.12±0.74)比较有极显著的差异;法舒地尔干预后Ⅲ型胶原IOD(91.37±1.58),较模型组比较有明显的下降(P<0.01)。3.血流动力学指标检测:观察期满后,模型组LVSP(149.80±8.40 VS 102.72±7.40)、LVEDP(4.48±0.83 VS 1.85±0.92)明显增加,与假手术组相比,两者间存在显著差异(P<0.01),法舒地尔组治疗4周后,LVSP(121.20±7.60mmHg)、LVEDP(3.70±0.72mmHg)较模型组明显降低(P<0.01),模型组大鼠尾动脉压较假手术组亦有所升高,法舒地尔组尾动脉较模型组低,但两组间差异不明显。4.心肌组织TGF-β2检测:转化生长因子-β2的含量在模型组亦明显升高(IOD为20.46±1.79),与假手术组(5.02±0.14)比较,两者间存在显著差异(P<0.01);法舒地尔治疗后可以明显抑制转化生长因子-β2的表达(12.17±0.82),与模型组比较,两者存在明显差异(P<0.01)。5.心肌组织RhoA, Rock1mRNA的表达:以β-actin为内参对照,结果以RhoA mRNA、Rock1mRNA与β-actin mRNA灰度值的比值表示。模型组灰度值较假手术组(RhoA mRNA1.42±0.08 VS 0.69±0.05,Rock1mRNA1.29±0.04 VS 0.58±0.02)明显升高,二者之间存在著差异性(P<0.01)。法舒地尔组经药物干预4周后,其RhoA mRNA灰度值(0.85±0.03)、Rock1mRNA灰度值(0.83±0.03)与模型组比较明显降低,两者之间差异亦十分显著(P <0.01)。且RhoA, Rock1mRNA的表达与左室重量、左室肥厚指数呈正相关。结论1. Rho/Rock信号转导通路与压力超负荷大鼠心肌重构的发生发展密切相关。2. Rho激酶抑制剂fasudil能抑制Rho/Rock信号转导通路的活性,抑制心室重构;抑制TGF—β2表达,减轻心肌纤维化是其抗心室重构的重要机制。
论文目录
相关论文文献
- [1].Rho/ROCK信号通路与子痫前期发病的关系[J]. 中国现代医生 2016(09)
- [2].Rho/Rock信号通路与肺纤维化相关性的研究进展[J]. 上海交通大学学报(医学版) 2016(10)
- [3].Rho/Rock转导通路与子痫前期发病关系的研究进展[J]. 现代妇产科进展 2008(12)
- [4].姜黄素对口腔鳞癌细胞中细胞骨架及Rho/ROCK信号通路的影响[J]. 口腔颌面外科杂志 2013(03)
- [5].运动预适应与力竭运动大鼠心肌损伤:Rho/ROCK信号通路的作用[J]. 中国组织工程研究 2020(11)
- [6].过度激活的Rho/ROCK通路介导的心肌缺血再灌注损伤及贝那普利的改善作用[J]. 中外医疗 2016(09)
- [7].基于Rho/ROCK信号通路的麦粒灸对自发性高血压大鼠主动脉血管内皮功能保护作用机制探讨[J]. 南京中医药大学学报 2016(06)
- [8].非对称性二甲基精氨酸通过Rho/ROCK信号通路介导大鼠血管平滑肌细胞迁移[J]. 中国分子心脏病学杂志 2012(01)
- [9].Rho/ROCK信号转导通路与支气管哮喘气道重塑[J]. 中华哮喘杂志(电子版) 2010(03)
- [10].Rho/ROCK信号通路与糖尿病肾病[J]. 生命的化学 2014(02)
- [11].Rho/ROCK在血管平滑肌细胞迁移中的作用[J]. 生理科学进展 2013(04)
- [12].Rho/ROCK信号通路研究进展[J]. 药学学报 2016(06)
- [13].阻断Rho/ROCK信号传导通路治疗大鼠脊髓损伤的实验研究[J]. 中国骨与关节外科 2008(Z1)
- [14].基于络病学探讨内毒素“二次打击”急性肺损伤大鼠的Rho/ROCK机制及川芎嗪的保护作用[J]. 世界中医药 2016(01)
- [15].Rho/Rock信号通路在大鼠呼吸机相关性肺损伤中的作用[J]. 临床麻醉学杂志 2016(12)
- [16].阻断Rho/ROCK信号传导通路对大鼠脊髓损伤的治疗效果[J]. 当代医学 2016(29)
- [17].Rho/ROCK信号通路参与晚期糖基化终产物诱导的人皮肤微血管内皮细胞骨架结构改变[J]. 生理学报 2009(02)
- [18].大黄素对脂多糖诱导的内皮细胞损伤Rho/ROCK信号通路的影响[J]. 山东中医杂志 2016(02)
- [19].卡维地洛对异丙肾上腺素诱导大鼠心肌重塑中Rho/Rock信号通路的影响[J]. 当代医学 2013(27)
- [20].辛伐他汀对野百合碱诱导肺动脉高压大鼠Rho/Rock的影响[J]. 中国分子心脏病学杂志 2009(04)
- [21].Rho/ROCK信号通路与青光眼[J]. 大连医科大学学报 2012(01)
- [22].三甲散含药血清对大鼠HSC-T6细胞Rho/ROCK信号通路的影响[J]. 中药材 2015(03)
- [23].Rho/ROCK信号通路在牙周膜细胞中作用的研究进展[J]. 继续医学教育 2019(03)
- [24].法舒地尔通过抑制兔尿道成纤维细胞Rho/ROCK通路激活减少尿道损伤后狭窄的发生[J]. 中国病理生理杂志 2016(12)
- [25].阿魏酸钠干预对Rho/Rock信号通路的影响及其对肝脏的保护作用[J]. 吉林大学学报(医学版) 2012(05)
- [26].红景天甙对HSC-T6细胞株Rho/ROCK信号通路影响的研究[J]. 重庆医科大学学报 2009(03)
- [27].姜黄素抑制喉癌Hep2细胞系增殖的Rho/ROCK机制研究[J]. 临床和实验医学杂志 2015(14)
- [28].Rho/ROCK通路与NADPH氧化酶在糖尿病肾病中的作用[J]. 中国药科大学学报 2012(02)
- [29].Rho/ROCK信号通路对在异位子宫内膜间质细胞NF-κB、MMP-9和TIMP-1表达的影响[J]. 广东医学 2015(05)
- [30].糖肾宁对高糖诱导的足细胞损伤模型Rho/ROCK通路的影响[J]. 世界中医药 2019(12)