压力对谷胱甘肽生物合成的影响及其分离提取工艺研究

压力对谷胱甘肽生物合成的影响及其分离提取工艺研究

论文摘要

温和压力(0.1-5.0MPa)条件下,酵母菌受到刺激后发生应激性反应。谷胱甘肽(GSH)是很多生物体受环境胁迫产生的应激性代谢产物之一。GSH作为一种重要的药物,在临床上的用途极广,GSH的抗氧化性又能使得它在食品加工中倍受青睐。本文研究的主要内容为压力条件下面包酵母CICC1447积累GSH最佳条件的确定;加压、常压下酵母生物合成GSH代谢流的变化;温和压力对细胞膜通透性的影响;GSH分离提取工艺研究。主要结果如下:1.面包酵母CICC1447生物合成GSH加压条件的确定以高纯空气为加压介质,通过单因素实验对面包酵母CICC1447生物合成GSH加压条件进行优化,确定了最佳条件:加压时间6h、压力0.5MPa、升降压速率0.05-0.10MPa、加压前培养20h为最优加压条件,GSH含量较常压提高了17.21%。2.面包酵母CICC1447生物合成GSH代谢通量分析利用代谢通量分析手段研究比较了加压、常压条件下的面包酵母CICC1447生物合成GSH代谢流变化,并通过对代谢通量分布情况的分析,有效地解释了加压提高GSH合成能力的原因。3.温和压力对面包酵母CICC1447、CICC1339细胞膜通透性的影响以CO2和N2为加压介质,考察了温和压力(0.1-1.0MPa)及加压时间对面包酵母CICC1447、CICC1339细胞膜通透性的影响。结果表明,在压力条件下面包酵母CICC1447细胞悬浮液的电导率、OD260和OD280显著增加,虽然上升后有些波动,但仍高于常压对照组;压力作用下面包酵母CICC1339细胞悬浮液电导率、OD260和OD280随着压力的增加显著升高。以N2为加压介质,通过对加压(1.0MPa)、常压下PI与DNA结合产生的荧光强度的测定,更有效的说明了温和压力可以显著增强细胞膜的通透性,促进物质的传递。4.GSH分离提取工艺研究(1)利用沸水浴抽提法、微波辅助提取法、超声波破碎法和高压均质破碎法对胞内GSH进行抽提,其中高压均质破碎法效果最好,在最佳操作条件下GSH抽提量为3.975mg/g,抽提率达到99.87%。(2)利用超滤技术去除GSH提取液中的蛋白质,考察了操作压力、温度、提取液pH及料液浓度对超滤的影响。确定了适宜的操作条件:压力为0.04MPa,pH为3,温度为20-25℃,料液不稀释。在此操作条件下GSH损失率相对较小,为25.4%,蛋白质截留率达到46.6%。通过稀释过滤方法有效的提高了GSH回收率,通过稀释1次,使得GSH回收率提高到89.6%。并且通过超滤和稀释过滤方法有效地减少了GSH提取液中细胞色素的含量。(3)利用离子交换装置对GSH进行分离操作,确定了最佳的上柱pH为3,上柱流速为4mL/min,共上柱1.00L,GSH吸附率达到86.19%,蛋白质吸附率为49.73%,以盐酸为洗脱剂,洗脱浓度为lmol/L,洗脱流速为4mL/min,GSH解吸率为85.23%,共洗脱了464.52mg,蛋白质洗脱率为66.85%,共洗脱了1.936g。GSH浓缩倍数为2.09,峰点浓缩倍数为3.41,纯化倍数为3.48。通过吸附上柱及洗脱操作色素含量明显减少。(4)GSH提取液经逐步分离提取所得白色粉末状GSH复合产品,其中GSH含量为15.4%。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 1 前言
  • 1.1 高压生物技术概论
  • 1.2 高压对微生物的影响
  • 1.2.1 压力环境中微生物的分类及特性
  • 1.2.2 压力环境中微生物的生存及应用
  • 1.2.3 微生物的耐压机理及前景
  • 1.2.4 压力对微生物细胞的影响
  • 1.2.5 加压条件下微生物的应激性反应
  • 1.3 谷胱甘肽(GSH)介绍
  • 1.3.1 GSH的结构与性质
  • 1.3.2 GSH的分布
  • 1.3.3 GSH的作用机理
  • 1.3.4 GSH的生理功能
  • 1.3.5 GSH的应用前景
  • 1.3.6 GSH的生产方法及研究现状
  • 1.3.7 GSH分离提取工艺研究
  • 1.4 本论文的选题依据和主要研究内容
  • 1.4.1 本论文的选题依据
  • 1.4.2 本论文的主要研究内容
  • 2 材料与方法
  • 2.1 材料
  • 2.1.1 菌种
  • 2.1.2 GSH提取液
  • 2.1.3 主要试剂
  • 2.1.4 主要仪器
  • 2.1.5 培养基
  • 2.2 分析与检测方法
  • 2.2.1 GSH含量测定
  • 2.2.2 蛋白质含量测定
  • 2.2.3 菌体量的测定
  • 2.2.4 溶液pH值的测定
  • 2.2.5 葡萄糖含量的测定
  • 2.2.6 细胞存活率及活细胞数的计算方法
  • 2.2.7 电导率的测定
  • 2.2.8 胞外蛋白质、核酸的测定
  • 2.2.9 细胞色素的测定
  • 2.2.10 染色剂与胞内DNA结合产生荧光的强度测定
  • 2.3 实验方法
  • 2.3.1 加压发酵实验
  • 2.3.2 GSH胞内抽提研究
  • 2.3.3 应用超滤技术去除GSH提取液中蛋白质的研究
  • 2.3.4 离子交换法分离GSH的研究
  • 2.3.5 真空浓缩干燥
  • 3 结果与讨论
  • 3.1 压力作用下面包酵母CICC1447合成GSH最佳条件的确定及代谢通量分析
  • 3.1.1 面包酵母CICC1447GSH常压发酵曲线
  • 3.1.2 加压时间对面包酵母CICC1447GSH合成量的影响
  • 3.1.3 压力对面包酵母CICC1447GSH合成量的影响
  • 3.1.4 升降压速率对面包酵母CICC1447GSH合成量的影响
  • 3.1.5 加压前培养时间对面包酵母CICC1447GSH合成量的影响
  • 3.1.6 面包酵母CICC1447生物合成GSH代谢通量分析
  • 3.1.7 小结
  • 3.2 温和压力对面包酵母CICC1447、CICC1339细胞膜通透性的影响
  • 3.2.1 温和压力对面包酵母CICC1447细胞膜通透性的影响
  • 3.2.2 温和压力对面包酵母CICC1339细胞膜通透性的影响
  • 3.2.3 温和压力下PI与酵母胞内DNA结合产生的荧光强度的变化
  • 3.2.4 小结
  • 3.3 GSH分离提取工艺研究
  • 3.3.1 GSH分离提取工艺流程
  • 3.3.2 四种胞内抽提方法的研究及比较
  • 3.3.3 应用超滤技术去除GSH提取液中蛋白质的研究
  • 3.3.4 离子交换法分离GSH的研究
  • 3.3.5 真空浓缩干燥
  • 3.3.6 小结
  • 4 结论
  • 5 展望
  • 6 参考文献
  • 7 论文发表情况
  • 8 致谢
  • 9 附录
  • 相关论文文献

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