MnSOD和Catalase在锰氧化过程中作用的初步研究

MnSOD和Catalase在锰氧化过程中作用的初步研究

论文摘要

锰氧化微生物广泛存在于水相和土壤环境中,可高效地将Mn(Ⅱ)氧化成Mn(Ⅳ),在锰的生物地球化学循环中具有重要的作用。研究发现锰氧化是一个复杂的过程,它包括非生物氧化和生物氧化,其中生物氧化起着主要作用。但是,目前细菌参与的锰生物氧化机理并不十分明确。鉴于此,本研究通过筛选高效锰氧化细菌并对其氧化机理进行探索。从全国各地不同的土样中分离纯化出54株锰氧化细菌,从其中25株高活性菌株中选取5株进行16S rDNA分析,经鉴定3株为蜡样芽胞杆菌,1株为短小芽胞杆菌,1株为巨大芽胞杆菌。另外选取实验室保藏的18株苏云金芽胞杆菌进行锰氧化率的测定,发现有7株菌锰氧化活力比筛选的菌株还要高,因此选取一株高锰氧化菌株Bacillus thuringiensis subsp. entomocidus HD-9进行机理研究。将HD-9发酵液上清经0.22μm无菌微孔滤膜过滤后进行Native-PAGE胶活性分析,将目的条带进行质谱分析,结果与数据库中B. thuringiensis serovar konkukianstr.97-27中过氧化氢酶(CAT)匹配,另外根据文献报道推测锰超氧化物歧化酶(MnSOD)与锰氧化相关,因此扩增B. thuringiensis 97-27中MnSOD和CAT对应的基因sodA和katB,构建原核表达载体分别在大肠杆菌BL21(DE3)中表达纯化,同时分别构建芽胞杆菌表达载体在B. thuringiensis BMB171中表达。通过在体外测定MnSOD和CAT的锰氧化活性,发现CAT能直接氧化锰,但锰氧化效率并不高;而MnSOD不能直接氧化锰,但是使用两种酶共同作用时,锰氧化率比单独用CAT作用低;而且表达重组菌株锰氧化率较BMB171有一定的降低。HD-9的发酵液上清经0.22μm无菌微孔滤膜过滤经高温处理后,再分别用MnSOD或CAT处理,锰氧化率增加,但同时用MnSOD和CAT处理时,其锰氧化率反而相对降低,说明这两种酶均在锰氧化过程起一定作用。本研究首次利用微量热仪研究MnSOD表达与Mn(Ⅱ)氧化之间的作用,研究发现sodA在E. coli BL21(DE3)中表达的情况下,加入2.0 mmol/L Mn2+前后其微量热参数有明显的变化,也说明MnSOD酶在锰氧化中发挥一定作用,为细菌锰氧化机理的研究提供一定的依据,对揭示锰氧化相关酶的作用机理方面有着重要的意义。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 缩略语表
  • 1 前言
  • 1.1 细菌锰氧化机制的研究
  • 1.1.1 锰氧化细菌及模式菌株
  • 1.1.2 细菌锰氧化机理
  • 1.1.3 细菌锰氧化相关的酶及氧化因子
  • 1.2 利用微量热技术研究锰氧化机理
  • 1.3 本课题研究的目的及意义
  • 2 材料与方法
  • 2.1 培养基和试剂的配制
  • 2.2 试剂
  • 2.3 实验器材
  • 2.4 筛选及鉴定锰氧化细菌的方法
  • 2.4.1 锰氧化细菌的初筛
  • 2.4.2 具有锰氧化活性菌株的摇瓶复筛
  • 2+的氧化的检测方法'>2.4.3 锰氧化菌对Mn2+的氧化的检测方法
  • 2.4.4 分离菌株的16S rDNA的扩增与序列测定及结果分析
  • 2.5 分子克隆方法
  • 2.5.1 质粒抽提
  • 2.5.2 总DNA抽提
  • 2.5.3 目的片段的PCR扩增
  • 2.5.4 PCR纯化以及切胶回收
  • 2.5.5 酶切
  • 2.5.6 连接反应
  • 2.5.7 转化感受态细胞
  • 2.5.8 转化子验证
  • 2.5.9 序列测定与比对
  • 2.5.10 实验菌株及质粒
  • 2.6 菌种培养与蛋白纯化
  • 2.6.1 菌种培养
  • 2.6.2 Ni-NTA亲和纯化
  • 2.6.3 蛋白含量测定
  • 2.6.4 常规SDS-PAGE分析
  • 2.6.5 酶活测定方法
  • 2.7 HD-9发酵液上清液的收集步骤及上清液锰氧化
  • 2.8 Native-PAGE胶锰染和LBB染色处理
  • 2.9 纯化酶体外锰氧化活性的测定方法
  • 2+的氧化'>2.10 无锰培养发酵液过滤上清液经各种处理后对Mn2+的氧化
  • 2.11 微量热仪测定方法
  • 3 结果与分析
  • 3.1 锰氧化细菌的分离与筛选结果
  • 3.2 分离菌株的16S rDNA的鉴定
  • 3.3. HD-9发酵液上清中锰氧化酶的分析
  • 3.3.1 HD-9发酵液上清中锰氧化率分析
  • 3.3.2 HD-9发酵液上清Native-PAGE胶活性分析
  • 3.4 sodA和katB基因的扩增、表达和纯化及酶活的测定
  • 3.4.1 sodA和katB基因的扩增
  • 3.4.2 sodA和katB基因在大肠杆菌表达载体的构建
  • 3.4.3 重组MnSOD和CAT的表达及纯化及酶活的测定
  • 3.5 sodA和katB在苏云金芽胞杆菌中过表达重组菌株的构建
  • 3.5.1 sodA基因过表达重组菌的构建
  • 3.5.2 katB基因表达重组菌的构建
  • 3.6 sodA和katB在苏云金芽胞杆菌表达重组菌株的锰氧化率测定
  • 3.7 纯化的MnSOD和CAT体外锰氧化率的测定
  • 2+的氧化率的测定'>3.8 HD-9过滤上清液经各种处理后对Mn2+的氧化率的测定
  • 2+的微量热分析'>3.9 MnSOD重组菌氧化Mn2+的微量热分析
  • 2+的微量热分析'>3.9.1 HD-9菌株在不同浓度Mn2+的微量热分析
  • 3.9.2 大肠杆菌BL21(DE3)的微量热分析
  • 3.9.3 在Mn(Ⅱ)条件下MnSOD表达对重组菌生长代谢作用微量热分析
  • 4 讨论
  • 4.1 锰氧化细菌中的芽胞杆菌
  • 4.2 锰氧化蛋白的分离鉴定、表达纯化及活性分析
  • 4.3 微量热方法分析MnSOD对锰的氧化作用
  • 5 总结与展望
  • 5.1 总结
  • 5.2 展望
  • 参考文献
  • 致谢
  • 相关论文文献

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