论文摘要
第一部分pLEGFP-N1-tPA逆转录病毒载体构建、鉴定及包装细胞PT67/pLEGFP-N1-tPA纯系培育目的构建含人组织型纤溶酶原激活剂(tissue-type plasminogen activator, tPA)基因增强型绿色荧光蛋白(enhanced green fluorescent protein, EGFP)基因逆转录病毒载体及产高滴度病毒的纯包装细胞系。方法用PCR方法扩增目的基因tPA,定向克隆入逆转录病毒载体(pLEGFP-N1)中,酶切反应、PCR及DNA测序鉴定重组逆转录病毒载体pLEGFP-N1-tPA;在基因转染试剂SofastTM介导下将pLEGFP-N1-tPA转入包装细胞PT67,经相应的抗生素筛选、标记、显微移出,培育出全EGFP纯包装细胞系。用NIH3T3细胞测定病毒滴度。结果经限制性酶切分析、DNA序列分析、EGFP的表达证实pLEGFP-N1-tPA中含有tPA基因。转染有pLEGFP-N1-tPA的纯PT67细胞产病毒滴度为1×107CFU/ml。结论成功构建了pLEGFP-N1-tPA载体和产高滴度病毒纯包装细胞系,为tPA局部靶向治疗的理想人工心瓣的研究和应用奠定了实验基础。第二部分pLEGFP-N1-tPA感染ECUV304和心肌细胞,ECUV304/ pLEGFP-N1-tPA建纯系目的观察pLEGFP-N1-tPA感染ECUV304和心肌细胞后,ECUV304/pLEGFP-N1-tPA纯系上清和感染后心肌细胞上清在体外血栓模型中溶栓情况及tPA表达情况。方法pLEGFP-N1-tPA感染ECUV304细胞,单个强表达EGFP的ECUV304细胞→成簇→显微移出→培育→成纯系。建体外血浆平板血栓模型(用人全血),纯系ECUV304/pLEGFP-N1-tPA培养上清加入模型中,设对照组,观察溶解血栓情况,同时椐蚓激酶活性算出tPA活性。ELISA测出tPA含量。Western blot检测tPA。原代1-4d乳鼠心肌细胞培养,感染pLEGFP-N1-tPA,培养上清加入血浆平板血栓模型,设对照组,观察溶解血栓情况,算出tPA活性,测出tPA含量。Western blot检测tPA。结果转导有pLEGFP-N1-tPA的内皮细胞和心肌细胞培养细胞上清在体外血栓模型中有大的溶解圈。ECUV304/pLEGFP-N1-tPA纯系上清tPA活性是502.16u/106cells/24h,tPA含量是716.27ng/106 cells/24h,Western blot检出外源tPA条带。心肌细胞/pLEGFP-N1-tPA上清tPA活性是464.27u/106cells/24h,tPA含量是607.34ng/106 cells/24h,Western blot亦检出外源tPA条带。结论成功建立ECUV304/pLEGFP-N1-tPA纯系,纯系上清有明显溶栓作用,tPA活性及含量均高,有外源tPA条带。心肌细胞/pLEGFP-N1-tPA上清有明显溶栓作用,tPA活性及含量均高,有外源tPA条带。第三部分在体研究特氟隆(Dacron)片移植入兔下腔静脉,Dacron片周围局部转导pLEGFP-N1-tPA目的探讨组织型纤溶酶原激活剂(tPA)基因局部转导对特氟隆(Dacron)片(与机械瓣瓣环同质)的溶血栓作用。方法70只兔建立下腔静脉内Dacron片植入血栓模型,随机分为pLEGFP-N1-tPA治疗组(n=30)、pLEGFP-N1空载体对照组(n=20)、空白对照组(n=20),局部基因转导,于术后2d、75d各组一半动物取材(6个亚组A1、B1、C1、A2、B2、C2),聚光共聚焦(confocal)观察所取静脉增强型绿色荧光蛋白(EGFP)表达,体视镜和电镜观察Dacron片表面血栓情况,免疫印迹(Western blot)、血浆平板和酶联免疫吸附实验(enzyme linked immunosorbent assay, ELISA)分别检测所取静脉tPA表达、溶栓、活性及含量变化。结果术后2d和75d取材,治疗组所取静脉,confocal均观察到多而强的EGFP表达,pLEGFP-N1对照组也有EGFP表达,但空白对照组无EGFP表达。70个Dacron片加未植入组10个Dacron片共80个,在体视镜(×160倍)和电镜(×500倍)下观察,未植入组和治疗组Dacron片表面均无血栓,对照组表面均有血栓。治疗组所取静脉Western blot检测均有外源tPA表达,对照组未检测到。血浆平板显示:治疗组均有大的溶解圈,有明显溶栓作用,对照组没有;根据蚓激酶计算出的纤溶活性显示:治疗组术后2d和75d所取静脉tPA活性分别为529.62±9.05u/g、537.50±12.45u/g,两时间点比较,差异显著性(P>0.05)。术后2d和75d治疗组、两对照组中6个亚组所取静脉tPA含量分别为(A1737.64±13.19)、(B129.88±5.61)、(C128.71±5.49)、(A2742.87±10.56)、(B232.03±6.26)、(C231.34±5.63)ng/g,治疗组明显高于对照组(P<0.01);治疗组中两时间点比较,tPA含量无显著差异(P>0.05)。结论pLEGFP-N1-tPA局部基因转导能有效阻止外源移植物表面血栓形成,为研究和应用tPA基因瓣膜奠定了基础。
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- [2].逆转录病毒载体的研究进展[J]. 黑龙江畜牧兽医 2010(17)
- [3].重组大鼠ΔNΔC/VEGF-C/Cys152Ser逆转录病毒载体的构建及表达[J]. 细胞与分子免疫学杂志 2012(07)
- [4].逆转录病毒载体携带报告基因在色素上皮细胞的转染与表达[J]. 眼科新进展 2008(02)
- [5].新基因hSSB1逆转录病毒载体的构建、鉴定和稳定株的筛选[J]. 中山大学学报(自然科学版) 2012(02)
- [6].EGFP-N1/hNGFβ逆转录病毒载体的构建及其表达[J]. 中国现代医学杂志 2011(13)
- [7].人CD46 RNAi逆转录病毒载体系统的构建与鉴定(英文)[J]. 现代生物医学进展 2012(08)
- [8].小鼠白细胞介素2基因克隆及其逆转录病毒载体的构建[J]. 江苏农业科学 2008(01)
- [9].miR-16逆转录病毒载体的构建与表达检测[J]. 黑龙江动物繁殖 2015(03)
- [10].逆转录病毒载体的应用现状及前景展望[J]. 生物技术 2010(04)
- [11].携带同源盒基因HOXA9的逆转录病毒载体的构建和鉴定[J]. 中国输血杂志 2010(07)
- [12].人胰岛素样生长因子-1逆转录病毒载体的构建及其在骨髓基质干细胞中的表达[J]. 苏州大学学报(医学版) 2009(02)
- [13].构建表达Livin的逆转录病毒载体及其在大鼠心肌细胞中的表达[J]. 中国预防医学杂志 2009(09)
- [14].小鼠T-bet逆转录病毒载体的构建与功能验证[J]. 生物工程学报 2014(10)
- [15].小鼠γ干扰素(mIFN-γ)基因克隆及其逆转录病毒载体的构建和转基因细胞系的建立[J]. 四川动物 2008(01)
- [16].逆转录病毒载体及其在动物病毒病的研究进展[J]. 动物医学进展 2011(02)
- [17].假型逆转录病毒载体高效介导兔平滑肌细胞基因转染[J]. 西安交通大学学报(医学版) 2009(06)
- [18].14-3-3σ逆转录病毒载体的构建及稳定转染HaCat细胞系的建立[J]. 实用医学杂志 2010(11)
- [19].携带LMO3基因逆转录病毒载体的构建及其在NIH/3T3细胞中的表达[J]. 解放军医药杂志 2014(05)
- [20].携带HSV-1TK基因的逆转录病毒载体构建及在HeLa细胞中的表达[J]. 现代生物医学进展 2010(02)
- [21].荧光蛋白融合人核糖核酸酶抑制因子基因在人肝癌细胞中的表达[J]. 山东医药 2014(17)
- [22].不同逆转录载体系统应用于水牛胎儿成纤维细胞转基因的探索[J]. 华南农业大学学报 2013(04)
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- [24].逆转录病毒载体pOZ-KLF5的构建及鉴定[J]. 生命科学研究 2015(02)
- [25].14-3-3σ干扰逆转录病毒载体的构建及其稳定转染HaCat细胞系的建立[J]. 现代生物医学进展 2011(09)
- [26].逆转录病毒载体组织型纤溶酶原激活剂基因的局部表达及溶栓效果[J]. 中国医药导刊 2010(11)
- [27].慢病毒载体介导的针对端粒酶的RNA干扰技术对HepG2细胞的体外效应[J]. 江苏医药 2009(04)
- [28].HBV变异株逆转录病毒载体的构建及意义[J]. 中国老年学杂志 2008(03)
- [29].TRPV1基因过表达逆转录病毒载体的构建和鉴定[J]. 现代医院 2016(06)
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