论文摘要
α-葡萄糖苷酶(α-glucosidase, EC 3.2.1.20)又称麦芽糖酶(maltase)和α-转移葡萄糖苷酶(α-transglucosidase, EC 2.4.1.24),可以从低聚糖类底物的非还原性末端切开α-1,4糖苷键,释放出葡萄糖,或将游离出的葡萄糖残基以α-1,6糖苷键转移到另一个底物上,从而得到非发酵性的低聚异麦芽糖(IMO)、糖脂或糖肽等。α-葡萄糖苷酶在淀粉加工工业中可以用作糖化酶制剂,与α-淀粉酶一起生产高葡萄糖浆。另外,α-葡萄糖苷酶作为工业化生产IMO的关键酶制剂备受国内外食品工业界的重视。目前,工业生产中使用的α-葡萄糖苷酶主要来源于黑曲霉(Aspergillus niger)。对一株分离自深海热液口的超嗜热古菌(Thermococcus siculi HJ21)菌株进行了产α-葡萄糖苷酶条件的优化和酶学性质的初步研究。胞内发酵时间为6 h,胞外发酵时间为21 h时,较适合产α-葡萄糖苷酶;其最适产酶温度为85℃,pH为6.5,NaCl浓度为2.5 %;可溶性淀粉、酵母粉和蛋白胨促进产酶。该α-葡萄糖苷酶的最适作用温度为100℃,90℃半衰期为2 h;最适酶作用pH值为7.0,在pH为5.0~8.0之间酶活力相对稳定;该酶热稳定性不依赖Ca2+,且Ca2+对该酶有抑制作用,金属离子Cu2+、Al3+、Ni2+对该酶有较明显抑制作用,Hg2+强烈抑制该酶的活性,而EDTA、Fe3+和K+对该酶有激活作用。以T. siculi HJ21染色体DNA为模板,采用PCR技术,成功克隆了T. siculi HJ21的α-葡萄糖苷酶基因。基因序列结果显示,该基因开放阅读框大小为729 bp,编码的蛋白质分子含有242个氨基酸残基,分子量约27.2kDa。同Genbank数据库中已公开的α-葡萄糖苷酶基因序列进行同源性比对分析结果表明,T. siculi HJ21的α-葡萄糖苷酶的基因序列与Thermococcus hydrothermalis的α-葡萄糖苷酶亲缘关系最近,同源性达到81%,氨基酸同源性达90%。
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摘要Abstract第一章 绪论1.1 古菌1.2 嗜热酶1.3 α-葡萄糖苷酶的研究现状及进展1.3.1 α-葡萄糖苷酶的理化性质1.3.2 α-葡萄糖苷酶的化学构成与结构1.3.3 α-葡萄糖苷酶检测方法1.3.4 α-葡萄糖苷酶在细胞中的分布1.4 α-葡萄糖苷酶的应用1.4.1 生产低聚异麦芽糖1.4.2 在啤酒酿造中的应用1.4.3 其它方面的应用1.5 立题背景及研究内容1.5.1 立题背景与意义1.5.2 主要研究内容第二章 α-葡萄糖苷酶产酶条件的研究2.1 引言2.2 材料与方法2.2.1 菌株2.2.2 主要试剂2.2.3 主要仪器及来源2.2.4 培养基2.2.5 培养方法2.2.6 粗酶液的制备2.2.7 α-葡萄糖苷酶活力测定方法2.3 结果与讨论2.3.1 发酵时间对产酶的影响2.3.2 温度对产酶的影响2.3.3 培养基初始pH 对产酶的影响2.3.4 培养基NaCl 浓度对产酶的影响2.3.5 碳源对产酶的影响2.3.6 氮源对产酶的影响2.3.7 发酵条件的正交优化2.4 本章小结第三章 α-葡萄糖苷酶粗酶酶学性质研究3.1 引言3.2 材料与方法3.2.1 实验材料3.2.2 实验仪器3.2.3 培养基3.2.4 培养方法3.2.5 粗酶液的制备3.2.6 酶活力的测定3.2.7 酶学性质的研究3.3 结果与讨论3.3.1 温度对酶活力的影响3.3.2 酶的热稳定性3.3.3 酶的pH 稳定性3.3.4 pH 值对酶稳定性的影响3.3.5 金属离子和化学试剂对酶活力的影响3.4 本章小结第四章 α-葡萄糖苷酶基因的克隆4.1 引言4.2 材料与方法4.2.1 菌株与质粒4.2.2 培养基4.2.3 主要化学试剂4.2.4 实验仪器设备4.2.5 T. siculi HJ21 总DNA 的提取4.2.6 引物的设计与合成4.2.7 PCR 扩增及电泳检测4.2.8 PCR 反应产物的纯化4.2.9 E. coli 感受态制备4.2.10 质粒DNA 的提取4.3 结果与讨论4.3.1 T. siculi HJ21 总DNA 的提取4.3.2 基因组DNA 的纯度4.3.3 α-葡萄糖苷酶基因片段的PCR 扩增4.3.4 α-葡萄糖苷酶基因序列拼接4.3.5 α-葡萄糖苷酶基因序列分析4.3.6 α-葡萄糖苷酶基因在E. coli 中的表达4.4 本章小结主要结论致谢参考文献作者在攻读硕士学位期间发表的论文
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超嗜热古菌Thermococcus siculi HJ21产高温α-葡萄糖苷酶的研究
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