血浆Exosomes小体对Treg细胞功能的影响及B细胞体外扩增Treg细胞的初步研究

血浆Exosomes小体对Treg细胞功能的影响及B细胞体外扩增Treg细胞的初步研究

论文摘要

1.通过将人血浆Exosomes小体、重组Wnt分子分别与人外周血CD4+CD25+CD1271ow调节性T细胞(Regulatory T Cells, Treg)作用,观察Treg细胞在体外的存活情况及其Wnt信号通路的变化。2.通过将同种异基因人外周血B淋巴细胞体外扩增Treg细胞,观察Treg细胞扩增前后在数量上的变化及表型和功能是否改变,建立体外扩增Treg细胞的有效方法,并与树突细胞(dendritic cell, DC)扩增Treg细胞的方法相比较。1.应用免疫磁珠分离方法分离纯化人外周血CD4+CD25+CD1271owTreg细胞,将Wnt分子和从多个健康供者血浆中分离得到的Exosomes小体分别加入到Treg细胞中,加入人白介素2(IL-2,50U/ml)。利用RT-PCR检测共培养12h后Wnt信号通路涉及的凋亡相关基因的改变,同时采用流式技术检测Wnt信号通路中磷酸化β-catenin水平的改变,并在共培养14天后采用流式技术检测各组细胞的凋亡情况。设立未经处理的Treg细胞组为对照组。2.将异体健康供者外周血分离得到的B淋巴细胞与磁珠分选得到的Treg细胞共孵育,用IL-2(IOOU/ml)和CD28单抗(500ng/ml)共同刺激,在培养14天的过程中通过流式检测Treg细胞表型的变化,同时与树突状细胞扩增Treg细胞的方法相比较(培养条件相同)。14天培养结束后,将细胞与CFSE处理过的经强刺激(加入CD3单抗500ng/ml,IL-2300U/ml)的CD4+效应性T细胞共培养,在第五天通过流式检测Treg细胞对CD4+T细胞的增殖抑制,设立只经强刺激的CFSE处理过的CD4+T细胞为对照组。1.通过RT-PCR分析纯化的Treg细胞上的Frizzled(FRZ)受体及低密度脂蛋白相关蛋白5(LRP5)和LRP6的基因表达,结果显示Treg细胞表达FRZ2、3、4,LRP6基因,通过Western Blotting技术检测血浆中Exosomes小体上Wnt3a和Wnt5a的蛋白表达,均有条带出现。共培养12h后,RT-PCR检测凋亡相关基因Bcl-xL、Bcl-2、c-Myc的表达,结果显示Treg细胞与血浆exosomes样小体或Wnt分子共培养时,抗凋亡基因Bcl-2相对于对照组均有明显的上调,另一抗凋亡基因Bcl-xL和诱导凋亡的基因c-Myc无明显变化。培养14天后,通过流式检测凋亡,加入Exosomes样小体或Wnt分子的Treg细胞生存率均比对照组高。2.经B细胞联合IL-2和CD28单抗刺激的Treg细胞在培养14天后流式检测Foxp3和CD4/CD25,阳性率均很高,此时计数Treg细胞为最初数量的20倍。利用CFSE检测技术,将扩增14天的Treg细胞与CD3单抗和IL-2强刺激的CD4+T细胞共培养,5天后流式检测,扩增后的Treg细胞能够有效地抑制CD4+T细胞的增殖功能。1.初步判断Wnt信号通路能够影响Treg细胞的生存状态,血浆Exosomes小体能够延长Treg细胞的生存时间,其中Exosomes小体携带Wnt分子与Treg细胞上的Frizzled受体作用可以活化Treg细胞的Wnt信号通路,在提高Treg细胞的生存率方面起了一定的作用,即血浆Exosomes小体可能通过Wnt信号通路途径影响Treg细胞的存活。2.同种异基因B淋巴细胞能够在体外有效的扩增人外周血Treg细胞,扩增效率可达20倍以上,并且能显著抑制CD4+T细胞的增殖。

论文目录

  • 中文摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章:人血浆中Exosomes小体通过Wnt信号通路对CD4+CD25+CD127low调节性T细胞生物特性的影响
  • 前言
  • 材料和方法
  • 结果与分析
  • 讨论
  • 参考文献
  • 第二章:人外周血B淋巴细胞体外扩增CD4+CD25+CD127low调节性T细胞的初步研究
  • 前言
  • 材料和方法
  • 结果与分析
  • 讨论
  • 参考文献
  • 结论
  • 综述
  • 参考文献
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].外质体(Exosomes)与肾脏疾病[J]. 肾脏病与透析肾移植杂志 2012(04)
    • [2].胃癌患者腹水中exosomes的分离与鉴定[J]. 免疫学杂志 2008(06)
    • [3].exosomes在胃癌中作用机制的研究进展[J]. 临床肿瘤学杂志 2016(01)
    • [4].癌源exosomes的制备及其对胃癌细胞生长的作用[J]. 内蒙古医学杂志 2013(03)
    • [5].结肠癌源性exosomes的分离及其相关免疫学性质[J]. 中国生物制品学杂志 2012(12)
    • [6].非小细胞肺癌患者尿中Exosomes蛋白质组的差异表达分析[J]. 分析化学 2010(03)
    • [7].Exosomes联合卡介苗的体内抗肿瘤效应[J]. 中国肿瘤生物治疗杂志 2009(03)
    • [8].急性冠状动脉综合征患者外周血树突状细胞来源Exosomes表型与冠状动脉病变严重程度的相关性分析[J]. 疑难病杂志 2017(06)
    • [9].乳腺癌细胞源Exosomes在促肿瘤血管生成中的作用及机制[J]. 基础医学与临床 2015(08)
    • [10].Exosomes的生物学特征及其在细胞间信号转导中的作用[J]. 生物物理学报 2013(12)
    • [11].不同雄性淋巴细胞及其Exosomes过继转输改善妊娠丢失孕鼠胚胎发育的比较分析[J]. 中国免疫学杂志 2014(12)
    • [12].肝癌细胞裂解物负载的树突状细胞来源的exosomes制备及其抗肝癌免疫活性的研究[J]. 现代肿瘤医学 2013(08)
    • [13].人外周血单核细胞释放PrP~C与其分泌Exosomes相关性研究[J]. 细胞生物学杂志 2009(06)
    • [14].AKT基因转染人脐带间质干细胞来源exosomes的分离及鉴定[J]. 中国细胞生物学学报 2014(10)
    • [15].exosomes在肺癌细胞对顺铂敏感性降低过程中的作用研究[J]. 实用老年医学 2014(05)
    • [16].Exosomes——the enigmatic regulators of bone homeostasis[J]. Bone Research 2018(04)
    • [17].肾细胞癌源性exosomes体外诱导单核细胞分化为PD-L1髓源性抑制细胞[J]. 第三军医大学学报 2012(02)
    • [18].结肠癌细胞源exosomes的分离鉴定及其表面蛋白CD44v6的表达[J]. 中国老年学杂志 2010(16)
    • [19].Exosomes在肿瘤免疫中的作用[J]. 青海医药杂志 2020(01)
    • [20].舌癌Tca8113细胞来源exosomes的制备及鉴定[J]. 国际口腔医学杂志 2014(01)
    • [21].THP-1分化的巨噬细胞来源Exosomes的生物学特征鉴定[J]. 生命科学研究 2014(04)
    • [22].卵巢癌腹水来源exosomes的免疫分子检测[J]. 临床肿瘤学杂志 2010(01)
    • [23].人脐带间充质干细胞来源的exosomes对脂多糖诱导的肝星状细胞活化的抑制研究[J]. 临床检验杂志 2014(04)
    • [24].骨肉瘤细胞来源的exosomes制备和鉴定[J]. 中国老年学杂志 2014(11)
    • [25].Exosomes在肿瘤免疫方面的研究进展[J]. 中国生物制品学杂志 2010(04)
    • [26].Tca8113细胞exosomes的制备、鉴定及体外抗瘤作用观察[J]. 口腔颌面外科杂志 2009(06)
    • [27].Exosomes致敏的树突状细胞在中晚期大肠癌的临床应用研究[J]. 中国临床新医学 2009(03)
    • [28].膀胱癌MB49细胞exosomes对MDSCs增殖及活性的影响[J]. 免疫学杂志 2015(02)
    • [29].外体(exosomes)对肿瘤微环境作用的研究进展[J]. 临床检验杂志 2014(10)
    • [30].热休克小鼠肝癌细胞(H_(22))源Exosomes的体内抗肝癌作用研究[J]. 重庆医科大学学报 2010(02)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  

    血浆Exosomes小体对Treg细胞功能的影响及B细胞体外扩增Treg细胞的初步研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢