吸水链霉菌谷氨酰胺转胺酶的活化机制和生理功能

吸水链霉菌谷氨酰胺转胺酶的活化机制和生理功能

论文摘要

谷氨酰胺转胺酶(Transglutaminase EC 2.3.2.13简称TGase)是一种能够催化蛋白质或肽分子间形成共价交联的酶,是食品领域极为重要的酶制剂之一,同时在医药和纺织等工业领域具有广阔的应用潜力。链霉菌谷氨酰胺转胺酶是目前唯一商业化的能够交联蛋白的酶制剂。已有研究表明,茂源链霉菌(Streptomyces mobaraensis)中TGase以酶原(Pro-TGase)形式分泌,并受蛋白酶活化。然而有关链霉菌TGase活化过程的机制还不清楚,链霉菌TGase的生理功能也未见报道。本研究室近来从土壤中筛选到一株高产谷氨酰胺转胺酶的菌株——吸水链霉菌(Streptomyces hygroscopicus)。为进一步推动S. hygroscopicus产TGase的发酵水平,同时也为揭示更多链霉菌TGase的微生物学机制,本论文对S. hygroscopicus产TGase的活化过程及TGase的生理功能进行了研究。主要研究结果如下:1. S. hygroscopicus液体培养过程中存在从Pro-TGase到TGase的转化过程。TGase和Pro-TGase存在于S. hygroscopicus液体培养中,可通过乙醇沉淀和阳离子交换色谱(Fractogel EMD SO3-柱)分离等步骤进行纯化。TGase和Pro-TGase的分子量分别为40 kDa和44 kDa。Pro-TGase的N-端氨基酸序列为:ASGDDEEREG。S. hygroscopicus液体培养中TGase以酶原形式分泌并存在从酶原到成熟酶的转化过程。S. hygroscopicus液体培养中Pro-TGase出现在24h,在36h达到最高,之后Pro-TGase蛋白浓度逐渐下降。随着Pro-TGase蛋白浓度的降低,TGase蛋白浓度逐渐增加。与TGase蛋白浓度的增加相对应,TGase酶活力也开始增加。TGase酶活力在60h达到最高(2.4 U/mL),此时对应Pro-TGase的蛋白已全部转化为成熟酶TGase的蛋白。2. S. hygroscopicus液体培养中,TGase活化蛋白酶分泌到胞外环境中并受抑制因子抑制。TGase活化过程在无细胞上清液中发生沉默。在无细胞上清液培养过程中,从0至24h,Pro-TGase和TGase蛋白的浓度保持恒定,没有发生从Pro-TGase蛋白向TGase蛋白的转化;同时TGase活力保持恒定。10 mg/mL CTAB能够唤醒无细胞上清液沉默的TGase活化过程。添加CTAB的无细胞上清液中Pro-TGase蛋白明显的向TGase蛋白发生转化,同时对应着TGase活性的显著增加(从1.2 U/mL增加到2.3 U/mL)。3. S. hygroscopicus液体培养中,TGase活化过程受多种蛋白酶催化调控。通过DEAE-Sepharose F. F.柱纯化获得到了TAP样品。纯化的TAP样品(0.03 mg/mL)10μL加入到100μL Pro-TGase (0.26 mg/mL)中,30°C培养30min,TAP能够切割Pro-TGase获得TGase蛋白,同时可以检测到酶活从0提高到0.92 U/ml。纯化的TAP为丝氨酸蛋白酶。无细胞上清液中TGase活化过程是多种蛋白酶参与的:包括丝氨酸蛋白酶和金属蛋白酶。10 mmol/L的EDTA抑制下,无细胞上清液中TGase的酶活没有增加,Pro-TGase和TGase的电泳条带浓度也保持稳定;1 mmol/L的PMSF抑制下,TGase的酶活的增加以及Pro-TGase蛋白条带向TGase蛋白条带的转化过程明显滞后。4. TAPI的纯化和鉴定及性质研究。通过Fractogel EMD SO3-柱和Phenyl Sepharose 6 F. F.柱对TAPI进行纯化,TAPI的蛋白收率为6.36 mg/L。TAPI(0.4μg)能够抑制TAP(0.2μg)对Pro-TGase(2μg)的活化。TAPI的N-端氨基酸序列为:GLYAATTALV,属于SSI蛋白家族。TAPI具有表面活性,在液体培养中主要分布在气液界面。5分钟内,TAPI (0.1 mg/mL)使水的界面张力从72降到60 mJ/m2。在此基础上,提出了基于TAPI界面分布的TGase活化过程调控模型。5.在S. hygroscopicus固体培养中,TGase在菌体发生分化、形成气生菌丝时开始分泌和活化,并在形成孢子后停止活化,它可能参与了分化过程。TGase在S. hygroscopicus营养菌丝的的生长阶段并不分泌,而是在开始生分化形成气生菌丝时才开分泌和活化,并在形成孢子后停止活化。48 h固体平板上开始出现白色的气生菌丝的同时,检测到胞外蛋白浸提液中TGase活性显著提高(0.51 U/plate);144 h固体平板上开始出现黑色孢子,此后已检测不到TGase活性。Pro-TGase当量活性在48 h开始出现(0.03 U/plate),之后逐渐升高并在菌体形成孢子后保持稳定(0.65 U/plate左右)。胱胺能够抑制S. hygroscopicus液体培养种纯化到TGase的活性,25 mmol/L的胱胺可以抑制活性为0.17 U/mL的TGase 75 %的活性。25 mmol/L的胱胺能够显著延迟S. hygroscopicus的分化过程。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 绪论
  • 1.1 谷氨酰胺转胺酶简介
  • 1.1.1 谷氨酰胺转胺酶的功能和应用
  • 1.1.2 谷氨酰胺转胺酶的来源和性质
  • 1.1.3 谷氨酰胺转胺酶的生产
  • 1.2 链霉菌简介
  • 1.2.1 链霉菌概述
  • 1.2.2 链霉菌的生长和分化
  • 1.2.3 链霉菌分化中的细胞凋亡
  • 1.2.4 胞外蛋白质对链霉菌分化过程的调控
  • 1.3 链霉菌中谷氨酰胺转胺酶的活化
  • 1.3.1 链霉菌中谷氨酰胺转胺酶的活化过程
  • 1.3.2 链霉菌中TGase 活化蛋白酶的寻找
  • 1.3.3 链霉菌中的SSI 蛋白
  • 1.4 我国链霉菌谷氨酰胺转胺酶的研究现状及存在的问题
  • 1.5 本论文的主要研究内容
  • 第二章 Streptomyces hygroscopicus 液体培养中谷氨酰胺转胺酶以酶原形式分泌
  • 2.1 引言
  • 2.2 材料与方法
  • 2.2.1 菌株
  • 2.2.2 试剂和仪器
  • 2.2.3 培养方法
  • 2.2.4 分析方法
  • 2.2.5 谷氨酰胺转胺酶的纯化
  • 2.3 结果与讨论
  • 2.3.1 TGase 和Pro-TGase 的分离、纯化
  • 2.3.2 Pro-TGase 的鉴定
  • 2.3.3 吸水链霉菌液体培养中TGase 以酶原形式分泌
  • 2.4 本章小结
  • 第三章 Streptomyces hygroscopicus 液体培养中谷氨酰胺转胺酶活化过程的定位
  • 3.1 引言
  • 3.2 材料与方法
  • 3.2.1 试剂和仪器
  • 3.2.2 菌株
  • 3.2.3 培养方法
  • 3.2.4 无细胞上清液培养体系
  • 3.2.5 细胞破碎
  • 3.2.6 分析方法
  • 3.3 结果与讨论
  • 3.3.1 无细胞上清液中TGase 活化的沉默
  • 3.3.2 细胞壁和细胞膜碎片对无细胞上清液中TGase 活化的影响
  • 3.3.3 无细胞上清液中TGase 活化过程的唤醒
  • 3.3.4 CTAB 唤醒无细胞上清液中TGase 活化过程的机制
  • 3.4 本章小结
  • 第四章 Streptomyces hygroscopicus 液体培养中谷氨酰胺转胺酶活化蛋白酶的分离纯化和种类鉴定
  • 4.1 引言
  • 4.2 材料与方法
  • 4.2.1 试剂和仪器
  • 4.2.2 菌株
  • 4.2.3 培养方法
  • 4.2.4 TGase 活化蛋白酶的纯化
  • 4.2.5 样品中TGase 活化蛋白酶的种类分析
  • 4.2.6 分析方法
  • 4.3 结果与讨论
  • 4.3.1 TGase 活化蛋白酶的纯化
  • 4.3.2 部分纯化的TAP 酶样品中蛋白酶种类的确定
  • 4.3.3 无细胞上清液中TGase 活化蛋白酶种类的确定
  • 4.3.4 TGase 活化过程是多种蛋白酶参与的过程
  • 4.4 本章小结
  • 第五章 Streptomyces hygroscopicus 液体培养中谷氨酰胺转胺酶活化蛋白酶抑制因子的纯化、鉴定及其表面活性的发现
  • 5.1 引言
  • 5.2 材料与方法
  • 5.2.1 试剂和仪器
  • 5.2.2 菌株
  • 5.2.3 培养方法
  • 12)的纯化'>5.2.4 TGase 活化蛋白酶抑制因子(P12)的纯化
  • 5.2.5 分析方法
  • 5.3 结果与讨论
  • 5.3.1 TGase 活化蛋白酶抑制因子的纯化
  • 5.3.2 TAPI 的鉴定
  • 5.3.3 TAPI 是一种表面活性蛋白
  • 5.3.4 TAPI 调控的TGase 活化过程的模型
  • 5.3.5 TAPI 表面活性的生理意义
  • 5.4 本章小结
  • 第六章 Streptomyces hygroscopicus 固体培养中谷氨酰胺转胺酶的活化过程及谷氨酰胺转胺酶抑制剂对菌体分化的抑制
  • 6.1 引言
  • 6.2 材料与方法
  • 6.2.1 试剂和仪器
  • 6.2.2 菌株
  • 6.2.3 培养方法
  • 6.2.4 固体培养胞外蛋白的浸出
  • 6.2.5 胱胺对菌体分化的抑制
  • 6.2.6 分析方法
  • 6.3 结果与讨论
  • 6.3.1 吸水链霉菌固体培养中TGase 的活化
  • 6.3.2 CTAB 促进固体培养浸出液中TGase 的活化
  • 6.3.3 胱胺对分化的抑制
  • 6.3.4 TGase 的生理功能
  • 6.4 本章小结
  • 结论
  • 论文创新点
  • 致谢
  • 参考文献
  • 附录:作者在攻读博士学位期间发表的论文
  • 相关论文文献

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