毛白杨花发育遗传调控研究

毛白杨花发育遗传调控研究

论文摘要

本文对毛白杨种质资源库进行长期观测,系统调查了毛白杨花器官的表型性状,收集覆盖其发育全部过程的9个时间点的花芽用于后续实验。对杨树花发育过程响应温度胁迫的生理生化指标进行了测定。选取特定时期的雌雄花芽进行温度胁迫实验,验证雌雄花器官响应温度胁迫的差异性。同时,由种质资源库中发现了3株雄全同株个体。利用雄全同株个体为实验材料,通过Affymetrix杨树全基因组基因表达芯片对其两性花的雌雄花器官之间差异表达基因进行了筛选与功能注释,通过Cytoscape软件从分子功能,生物途径与细胞组件等3个水平进行基因富集分析。依据富集分析结果挑选候选基因,利用荧光定量PCR对重要候选基因在花发育过程中的表达模式进行了分析。同时利用高通量测序技术对两性花的雌雄花器官之间差异表达的microRNA进行了筛选,并对其靶基因进行了预测与验证。通过荧光定量PCR技术分析显示microRNA及其靶基因间具有负调控关系。差异表达基因和microRNA分析暗示了DNA甲基化修饰在花发育过程中具有重要意义。因此,通过MSAP的方法对两性花的雌雄花器官之间差异的DNA甲基化修饰位点进行了筛选。通过片段回收,克隆得到了一系列与开花发育相关的候选基因。通过荧光定量PCR验证DNA甲基化修饰与基因表达的关系。从差异表达基因中筛选得到SUPERMAN基因在花序形态发育过程具有重要作用。对该基因在杨树中的单核甘酸多态性以及基因表达模式进行了检测。得到如下主要结果:1、毛白杨3个花器官表型性状、雄株9个物候性状及雌株6个物候性状在群体间与群体内无性系个体之间都存在极显著差异。雄性花器官表型变异系数平均值为11.62%,变异系数最大的是物候性状中的开花始期(19.25%),花序凋落末期为最小(5.86%)。雌性花器官表型变异系数平均值为13.3%,最大值是授粉始期(37.24%),最小值是花序开放末期(5.21%)。毛白杨雄性花器官3个表型性状分化系数变化幅度为8.36%-20.07%,雌性花器官分化系数变化幅度为2.52%-26.43%。2、基因表达谱芯片结果显示共有10,096探针在雌雄花器官中差异表达,5760个基因在雄花中上调表达,4336个基因在雌花中上调表达。基因功能富集分析显示两条涉及转录因子活性的通路上的GO注释都被显著富集,证明了杨树雌雄花器官发育过程中存在显著差异的转录调控机制。其中光周期途径中的PIL、GIGANTEA (GI)以及CONSTA-LIKE(COL)在雄花中显著上调。而花发育的负调节基因TERMINAL FLOWER1(TFL1)则在雄花中显著下调,证明雌花发育过程中的光周期途径相对雄花受到了抑制作用。在赤霉素途径中,共检测到16个与赤霉素生物合成相关的基因,其中7个基因在雌雄花器官中呈现特异的表达模式。检测到92个生长素相关基因,其中29个基因具有雌雄花器官特异的表达模式,此外,还检测到4个细胞分裂素相关基因以及3个DNA甲基化相关基因在雌雄花器官之间差异表达,表明激素代谢与DNA甲基化调控也参与了雌雄花器官特异的发育过程。差异表达基因在基因组中的物理位置分析显示在杨树性别决定区段内存在一个差异表达富集区,其中包括两个重要的DNA甲基化转移酶基因MET1和DDM1。利用Realtime-PCR检测了重要候选基因在杨树花发育过程中的表达模式。3、利用高通量测序技术检测了雄全同株花器官之间差异表达的microRNA,结果共检测到134个保守microRNA,其中microRNA397和microRNA6462在雄花中特异表达,而microRNA6459在雌花中特异表达,其余131个在花器官之间差异表达显著。在检测到的78个新microRNA,有11个在雄花中特异表达,61个在雌花中特异表达,6个microRNA在雌雄花器官之间差异表达.新的nicroRNA的靶基因预测结果显示平均每个microRNA作用于1-15个靶基因位点。靶基因Gene ontology分析显示在分子功能水平上响应激素刺激,负调节基因表达,调节花发育以及器官形成等注释被显著富集。差异表达microRNA及其靶基因在基因组物理位置分析,发现有一新的microRNAPto-F70与其他新microRNA的4个靶基因位于杨树性别决定区段内。利用Realtime PCR验证了microRNA与靶基因的负调控关系,构建了microRNA与靶基因相互作用网络,证明microRNA在杨树花器官发育过程中具有广泛的调节作用。4、利用110对MSAP引物组合对雄全同株两性花器官的DNA甲基化差异位点进行了分析。共检测到212个DNA甲基化差异位点,其中有53个为性别特异的谱带。在检测到的19个雄花特异的DNA甲基化位点中,有14个半甲基化位点与5个全甲基化位点。在检测到的33个雌花特异的DNA甲基化修饰位点中,包括24个半甲基化修饰与9个全甲基化修饰。而仅有一个位点在雌花中属于全甲基化修饰,而在雄花中是半甲基化修饰。对其中的35个差异条带进行了切胶回收与测序,最终得到27条序列。其中MF26,MF29,以及MF35分别与PtGT2,PtPAL3,以及PtCER4基因同源。利用qPCR检测了三个候选基因时空特异的表达模式。同时,通过MS-PCR检测候选基因DNA甲基化模式。整合两部分结果显示,基因转录区上的DNA甲基化修饰对候选基因具有上调表达调控。5、对毛白杨在自然环境下花器官发育过程中以及温度胁迫处理下的生理生化指标进行了测定。分析显示,雌雄花器官在温度胁迫下抗氧化酶活性增加。但在发育过程中,雌花中抗氧化酶活性高于雄花。与抗氧化酶系统密切相关的基因PtoSOD2、 PtoPOD21以及PtoCAT1在雌花中的表达量显著高于雄花。这一结果显示在温度胁迫处理下,雌花相对雄花不仅具有更高的抗氧化系统活性,同时也具有更多的抗氧化酶蛋白。雌花还具有相对较高的钙离子浓度以及钙离子运输相关基因的表达丰度。而在雄花中MDA含量高于雌花表明雄花膜系统经历了相对多的过氧化反应,暗示了雌花器官的膜系统具有较强的抗逆境胁迫能力。6、PtoSUP基因家族成员在除未成熟木质部外的其他组织中都能检测到表达。其中,在幼叶中,PtoSUP1与PtoSUP2均为中等丰度表达。而在雌花中PtoSUP1基因表达量是PtoSUP2的6.54倍。相反,在雄花中PtoSUP2基因表达量相对PtoSUP1高7.01倍。外源激素处理实验表明PtoSUP基因家族成员表达受赤霉素信号诱导。PtoSUP1在雌全同株花器官中等丰度的表达可能导致了其两性花器官的产生。PtoSUP1基因的核苷酸多样性系数为πT=0.00248,显示出较低的多态性。在PtoSUP1基因的编码区域,非同义突变明显低于同义突变,非同义突变与同义突变之比小于1,结果建议,PtoSUP1在毛白杨进化过程中受到了纯化选择作用。PtoSUP1基因在不同群体间的GST以及FST指数变化范围为-0.00129至0.06836,表明PtoSUP1核苷酸序列在毛白杨不同群体间的遗传分化不显著。本文对毛白杨雄全同株个体产生的两性花器官之间的差异表达基因、miRNA、DNA甲基化修饰位点进行了系统的分析,初步阐明了杨树雌雄花器官发育遗传调控的分子机制,为毛白杨花器官发育研究提供了大量的候选基因,且为研究杨树性别决定机制奠定了理论基础。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 引言
  • 1 文献综述
  • 1.1 植物开花发育基因表达调控研究概况
  • 1.1.1 杨树成花诱导过程研究进展
  • 1.1.2 植物花的发端
  • 1.1.3 花器官发育与性别决定
  • 1.2 microRNA与植物开花调控
  • 1.2.1 microRNA与开花相关基因表达调控
  • 1.2.2 microRNA响应环境因子对花器官发育的调控
  • 1.3 DNA甲基化调控花发育
  • 1.3.1 DNA甲基化修饰与与开花相关基因表达调控
  • 1.3.2 环境胁迫通过表观遗传修饰影响花器官发育
  • 1.4 立题依据与技术路线
  • 2 毛白杨花器官表型变异多态性研究
  • 2.1 材料与方法
  • 2.1.1 试验材料
  • 2.1.2 表型性状测定
  • 2.1.3 统计分析方法
  • 2.2 结果与分析
  • 2.2.1 毛白杨花器官种源间表型性状的形态变异特征
  • 2.2.2 毛白杨花器官种源内表型性状的形态变异
  • 2.2.3 花器官表型性状的重复力
  • 2.2.4 毛白杨种源间的表型分化
  • 2.2.5 主成分分析
  • 2.2.6 毛白杨花序形态变异类型
  • 2.3 讨论
  • 3 毛白杨花器官性别特异的基因表达,激素以及DNA甲基化水平分析
  • 3.1 材料与方法
  • 3.1.1 试验材料
  • 3.1.2 基因组DNA的提取
  • 3.1.3 总RNA提取
  • 3.1.4 第一链cDNA合成
  • 3.1.5 基因芯片杂交与数据分析
  • 3.1.6 差异表达基因注释
  • 3.1.7 Gene ontology富集分析
  • 3.1.8 差异表达基因的荧光定量分析
  • 3.1.9 启动子分析
  • 3.1.10 激素含量测定
  • 3.1.11 DNA甲基化水平分析
  • 3.1.12 统计分析
  • 3.2 结果与分析
  • 3.2.1 基因芯片差异表达分析
  • 3.2.2 性别差异表达基因筛选
  • 3.2.3 荧光定量验证基因芯片数据
  • 3.2.4 开花途径相关基因性别差异表达模式
  • 3.2.5 生殖发育相关基因的性别差异表达模式
  • 3.2.6 形态发育相关基因性别差异表达模式
  • 3.2.7 植物激素代谢相关基因的性别异表达模式
  • 3.2.8 花发育过程中植物激素性别差异的变化趋势
  • 3.2.9 激素含量变化与候选基因表达模式的相关性分析
  • 3.2.10 杨树性别决定区域基因差异表达
  • 3.2.11 DNA甲基化水平及其相关基因的差异表达模式
  • 3.3 讨论
  • 3.3.1 杨树雌雄花器官性别特异的花发育进程
  • 3.3.2 花序分生组织基因以及生殖相关基因的差异表达
  • 3.3.3 植物激素及相关合成基因调控花器官发育进程
  • 3.3.4 植物激索信号调节基因表达
  • 3.3.5 DNA甲基化修饰调控花发育进程
  • 4 毛白杨雌雄花器官差异表达microRNA分析
  • 4.1 试验方法
  • 4.1.1 植物材料
  • 4.1.2 总RNA提取
  • 4.1.3 microRNA测序数据的生物信息学分析
  • 4.1.4 保守microRNA鉴定
  • 4.1.5 microRNA的靶基因预测方法
  • 4.1.6 qRT-PCR
  • 4.2 结果与分析
  • 4.2.1 microRNA序列分析
  • 4.2.2 雄全同株个体保守microRNA类型
  • 4.2.3 毛白杨雄全同株个体novel microRNA鉴定
  • 4.2.4 杨树性别决定区段microRNA及靶基因定位
  • 4.2.5 microRNAs靶基因预测
  • 4.2.6 microRNAs与其靶基因在花器官中的表达模式
  • 4.2.7 花器官特异表达microRNA与其靶基因的调控网络
  • 4.3 讨论
  • 4.3.1 保守microRNA表达分析
  • 4.3.2 Novel microRNA在花器官中的表达分析
  • 4.3.3 性别决定区段Novel microRNA表达分析
  • 4.3.4 microRNA调控网络分析
  • 5 毛白杨雌雄花器官DNA甲基化分析
  • 5.1 试验方法
  • 5.1.1 植物材料
  • 5.1.2 总RNA提取
  • 5.1.3 第一链cDNA合成
  • 5.1.4 显微观察
  • 5.1.5 MSAP分析
  • 5.1.6 Methylation-specific PCR(MSP)扩增
  • 5.1.7 荧光定量PCR
  • 5.2 结果与分析
  • 5.2.1 雄全同株花器官形态学观察以及显微观察
  • 5.2.2 雌雄花器官MSAP分析
  • 5.2.3 雌雄花器官特异的DNA甲基化模式
  • 5.2.4 MSAP多态性片段序列分析
  • 5.2.5 PtGT2,PtPAL3和PtCER4基因表达分析
  • 5.2.6 花器官时空特异的DNA甲基化模式
  • 5.3 讨论
  • 5.3.1 雌雄花器官差异的DNA甲基化模式
  • 5.3.2 基因转录区的DNA甲基化修饰与基因表达的关系
  • 5.3.3 重要候选基因筛选
  • 6 毛白杨雌雄花器官发育过程中生理生化研究
  • 6.1 材料方法
  • 6.1.1 植物材料
  • 6.1.2 气象数据
  • 6.1.3 温度胁迫处理实验
  • 6.1.4 生理生化指标测定
  • 6.1.5 总RNA提取
  • 6.1.6 第一链cDNA合成
  • 6.1.7 差异表达基因的荧光定量分析
  • 6.2 结果与分析
  • 6.2.1 杨树雌雄花器官生长过程
  • 6.2.2 雌雄花器官抗氧化酶系统季节性变化趋势
  • 6.2.3 雌雄花器官生化指标季节性变化趋势
  • 6.2.4 雌雄花器官钙离子含量季节性变化趋势
  • 6.2.5 抗氧化系统和钙离子运输相关基因表达模式
  • 6.3 讨论
  • 6.3.1 雌雄花器官特异的抗氧化还原酶活性及相关基因表达
  • 6.3.2 雌雄花器官特异的MDA、可溶性糖以及可溶性蛋白含量
  • 6.3.3 雌雄花器官特异的钙离子浓度及相关基因表达
  • 7 SUPERMAN基因核苷酸多样性以及表达分析
  • 7.1 材料与方法
  • 7.1.1 植物材料
  • 7.1.2 总RNA提取与cDNA合成
  • 7.1.3 SUP基因克隆测序
  • 7.1.4 差异表达基因的荧光定量分析
  • 7.1.5 PtoSUP基因模型鉴定
  • 7.1.6 进化分析
  • 7.1.7 核苷酸多样性分析
  • 7.1.8 启动子分析
  • 7.2 结果与分析
  • 7.2.1 毛白杨SUPERMAN基因家族鉴定
  • 7.2.2 杨树SUP基因进化发育以及密码子偏好性分析
  • 7.2.3 PtoSUP基因表达的时空特异性
  • 7.2.4 PtoSUP家族基因受激素诱导表达
  • 7.2.5 PtoSUP基因抑制B类功能基因表达
  • 7.2.6 PtoSUP基因在不同类型花器官中的表达模式
  • 7.2.7 PtoSUP1基因单核苷酸多态性
  • 7.3 讨论
  • 7.3.1 杨属SUP基因家族的结构趋异以及表达模式
  • 7.3.2 SUP基因调控杨树花器官发育
  • 7.3.3 SUP1基因经历纯化选择作用
  • 8 结论与展望
  • 8.1 结论
  • 8.2 研究展望
  • 参考文献
  • 个人简介
  • 导师简介1
  • 导师简介2
  • 硕博期间发表的论文与登录的基因
  • 致谢
  • 相关论文文献

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