普伐他汀对BMSCs复合FS移植治疗兔早期激素性股骨头坏死的干预研究

普伐他汀对BMSCs复合FS移植治疗兔早期激素性股骨头坏死的干预研究

论文摘要

目的:双次注射内毒素加三次注射激素建立兔早期激素性股骨头坏死模型,探讨其可能的发病机制;构建可注射型FS包埋Brdu标记的BMSCs的工程化组织,验证其生物相容性以及体外成骨诱导分化的效果;观察普伐他汀在体外对BMSCs/FS成骨诱导分化及分泌VEGF, BMP-2的影响;观察普伐他汀对BMSCs/FS经髓芯减压移植治疗兔早期激素性股骨头坏死的干预效果,并探讨其作用机理。方法:第一部分:兔早期激素性股骨头坏死模型建立:取健康成年新西兰大白兔80只,雌雄不限,随机分成4组,每组各20只。A组:(对照组)与D组相同时间点注射等量生理盐水。B组:马血清加三次注射激素组;C组:单次注射内毒素加三次注射激素组;D组:双次注射内毒素加三次注射激素组。注射后观察动物一般情况。各组于用药后第4、6、8、10、12周行血清胆固醇、甘油三酯,血液流变学、凝血功能,血栓调节蛋白含量等检测,并应用SPSS17.0版统计软件,两组数据间比较采用t检验,多组数据间比较则采用单因素方差分析,进行q检验,以P<0.01作为统计学具有显著性差异的标准对数据进行分析处理。于第6、8、10、12周处死兔子取双侧股骨头行大体标本、常规组织病理学切片及血管内皮生长因子免疫组化染色、股骨头微血管内血栓染色,于注射前及末次注射后4、8及12周,行X线片、MRI检查,观察股骨头影像学改变。第二部分:构建可注射型FS包埋Brdu标记的BMSCs的工程化组织:取健康新西兰大白兔8只,雌雄不限,采用全骨髓培养法,经过换液及传代,贴壁生长细胞通过流式细胞仪检测CD34、CD44等表面标记物,证实为高纯度的BMSCs后;取P3代BMSCs,分为四组:A组(对照组):BMSCs+成骨培养基培养;B组(BrdU组)BMSCs +BrdU+成骨培养基培养;C组(生物蛋白胶组):BMSCs+生物蛋白胶+成骨培养基培养;D组(生物蛋白胶+BrdU组):BMSCs+生物蛋白胶+BrdU+成骨培养基避光培养。成骨诱导1、2、4、7、14、21天后,分别行光镜下大体观察,生长动力学检测、台盼蓝染色、碱性磷酸酶Gomori钙钴法和Von-Kossa改良法染色鉴定向成骨方向分化的能力,检测碱性磷酸酶定量和游离钙定量检测(甲基百里香酚蓝比色法),采用SPSS17.0统计软件对数据进行统计分析。第三部分:观察普伐他汀在体外对BMSCs/FS成骨诱导分化及分泌VEGF,BMP-2的影响:BrdU标记的P3代BMSCs/FS加入成骨培养基避光培养,设对照组(A组):加入等量溶剂,实验组(B组):加入普伐他汀(100umol/L)。细胞培养1、4、7、14天在倒置显微镜下观察细胞形态,进行生长动力学检测,14天碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)活性测定,21天Von-Kossa改良法染色鉴定向成骨方向分化的能力,第21天提取纯化mRNA,逆转录合成cDNA,荧光标记后与全基因组寡核苷酸芯片杂交,扫描后筛选出差异表达基因。第14天采用Elisa法检测VEGF和BMP-2表达量。采用SPSS17.0统计软件对数据进行统计分析。第四部分:观察普伐他汀对BMSCs/FS经髓芯减压移植治疗兔早期激素性股骨头坏死的干预效果:取造模4周后存活的成年新西兰白兔60只,雌雄不限,随机分为四组每组15只:A组:(对照组)不做任何处理;B组:(髓芯减压组)C臂X光透视下用骨穿针行股骨头髓芯减压;C组:(干细胞移植组)股骨头髓芯减压同时局部移植Brdu标记的BMSCs/FS, D组:(干细胞移植联合普伐他汀治疗组)在C组基础上次日起以普伐他汀灌胃。造模后4周、8周、12周及16周,抽取耳缘静脉血检测血脂。造模后8周、12周、16周分批处死兔子,截取双侧股骨头,分别进行大体观察、常规组织病理学切片光镜和电镜观察。8周、12周及16周行血管内皮生长因子、核心结合因子免疫组化染色,8周、12周及16周实时荧光定量检测VEGF和Cbfa1mRNA的表达。造模后8周C、D两组行Brdu标记干细胞示踪检测。造模后8周、12周及16周,行双侧股骨头1.5T核磁共振(MRI)检测观察坏死信号的改变。采用SPSS17.0统计软件对数据进行统计分析。结果:第一部分:A组正常,B、C、D组动物于末次注射后3周体重减轻,精神萎靡,活动及饮食减少,反应淡漠,分别有4、5、7只动物死亡,各期血清胆固醇、甘油三酯、低切变率下全血黏度、血浆黏度、红细胞聚集指数均明显升高(P<0.05),以D组更为明显。自造模后10周始,两组间各指标比较均有统计学差异((P<0.05)。注射前及注射后2周各组MRI显示正常,C、D组4周股骨头信号轻度减低,A、B组未见异常。C、D组8周股骨头有小部分坏死区域,B组信号轻度减低,12周后D组股骨头坏死区域进一步扩大。B、C、D组空骨陷窝率分别为10.4%±4.4%,19.7%±4.7,33.2%±5.6%。骨小梁面积百分比分别为64.4%±8.4%,53.2%±±5.7%,41.3%±5.1%;D组指标与B,C组比较,差异有显著统计学意义(P<0.01)。影像学及病理学研究表明,与同期A、B、C组比较,D组股骨头内骨坏死面积明显增多,骨小梁稀疏变细、断裂更明显,股骨头髓腔内脂肪细胞数量明显增多,空骨陷窝数目增多。第二部分:48h后可见少数细胞贴壁,为成纤维细胞样细胞。4d后少量细胞呈长梭形,P3代贴壁细胞通过流式细胞仪检测,阳性表达CD44。贴壁细胞经BrdU标记后包埋于FS能存活,4天后细胞呈典型的梭形细胞形态,7天后生物蛋白胶边缘部分开始降解,细胞脱落致培养板;体外培养14天,细胞生长良好,大部分FS降解,脱落的细胞增多,贴壁生长的细胞形态正常;三周后生物蛋白胶完全降解,四组相比,细胞形态未受影响。P3代BMSCs经BrdU标记后在倒置显微镜下发现,细胞核内呈现棕红色,极少部分未着色,标记率达90%以上。孵育12h各组细胞活性均在90%以上,P>0.05,差异无统计学意义,孵育24、48、72h、各组细胞活性与12h相似。在MTT法检测生长动力学OD值、碱性磷酸酶及钙定量检测显示,B,C,D与A组(对照组)相比及B,C,D三组间相比,进行重复测量方差分析,P>0.05,无统计学意义。第三部分:B组(普伐他汀组)24h后光镜下BMSCs存活,4天后细胞呈典型的梭形细胞形态,7天后生物蛋白胶边缘部分开始降解,细胞脱落致培养板;体外培养14天,细胞生长良好,大部分生物蛋白胶降解,脱落的细胞增多,贴壁生长的细胞形态正常;ALP比活性及细胞外基质矿化能力明显强于A组(对照组),(P<0.05);Elisa法检测VEGF和BMP-2表达量高于A组,(P<0.05);基因组寡肽核苷酸芯片杂交,扫描分析2723个基因,共检测出326个差异基因表达,其中包括ALP1,BMP-2,OCN,DLX5, Cbfa1MMP13等与成骨分化有关的基因。第四部分:血清胆固醇(CHOL)、甘油三脂(TG)、高密度脂蛋白(HDL)造模后4周4组组间比较无统计学差异(P>0.05)。血清胆固醇(CHOL)、甘油三脂(TG)造模后8周D组与A、B、C三组比较含量较低,组间比较均有统计学差异(P<0.05)。A、B、C三组之间比较无统计学差异;造模后12周D组含量降低,其他三组也相对降低,B、C两组之间比较均无统计学差异(P>0.05)。第16周D组含量明显比其他三组降低,与其他三组分别比较均有显著统计学差异(P<0.01)。第8周高密度脂蛋白(HDL)的含量A、B、C三组随时间推移逐渐降低D组与之相反,第12、16周B、C两组组内比较均无统计学差异(P>0.05),D组与其他三组比较均有统计学差异(P<0.05)。病理学研究表明,D与同期A、B、C三组比较组股骨头内骨坏死面积明显减少,股骨头髓腔内脂肪细胞数量明显减少,空骨陷窝比率降低,骨小梁密度相对增高,骨组织内VEGF、Cbfa1的表达明显增强。实时荧光定量检测8周A、B、C、D四组VEGF、Cbfa1 mRNA的表达量无明显差异,但造模后12周及16周D组VEGF、Cbfa1 mRNA的表达量B、C、D三组都不同程度的增加其中D组改变的著明显,16周D组与B、C三组比较有统计学差异(P<0.05),与A组比较有显著统计学差异(P<0.01)。8周时MRI坏死区信号改变A组坏死区扩大,B组无扩大,C组范围缩小,D组明显缩小。12、16周A组MRI间明显的坏死信号改变,B、C两组坏死信号区域有所减小,D组坏死信号基木接近正常。结论:第一部分:1.在相同的实验条件下,双次注射内毒素加三次注射激素造模出现时间最早、坏死效果最明显,骨陷窝空虚率随时间的延长而增加,为研究股骨头坏死提供较理想的实验平台。2.造模后股骨头内微血管内皮细胞受损,骨内小动脉断裂迂曲、栓塞;血脂代谢紊乱,形成高脂血症;凝血功能异常,血液呈高凝状态,可能是导致早期激素性股骨头坏死的发生机制。第二部分:1.FS具有良好的组织相容性,可塑性和生物可降解性,并具有三维立体结构,是一种适用于微创操作的可注射型组织工程细胞培养和移植的支架材料。2. BrdU标记简单,快速,安全,检测敏感性好,是反映细胞增殖及示踪监测移植细胞的理想指标。3.经BrdU标记的BMSCs包埋于可注射型FS后构建的支架材料是一种具有良好生物相容性的工程化组织。第三部分:1.普伐他汀可促进体外诱导培养的BMSCs/FS向成骨细胞分化,其作用机制可能与调控多种成骨相关基因表达有关。2.普伐他汀对体外诱导培养的BMSCs/FS分泌VEGF和BMP-2具有促进作用。第四部分:1、Brdu标记的BMSCs/FS经髓芯减压通道能有效的移植到股骨头,在骨内微环境中可以向成骨细胞、骨细胞分化,对股骨头坏死的再生修复起着促进作用。2、普伐他汀可以改善体内脂质代谢紊乱,减轻激素性坏死股骨头内脂肪细胞对骨细胞的损害;上调坏死股骨头内VEGF的表达,改善局部血供;上调坏死股骨头内Cbfal的表达,诱发新骨形成。3.普伐他汀全身应用与BMSCs局部移植相结合,对治疗兔早期激素性股骨头坏死具有可行性,有望成为临床上治疗早期激素性股骨头坏死的新方法。

论文目录

  • 英文缩略词表
  • 中文摘要
  • Abstract
  • 引言
  • 第一部分:兔早期激素性股骨头坏死相关因素的实验研究
  • 材料与方法
  • 结果
  • 讨论
  • 结论
  • 第二部分:Brdu标记的BMSCs复合FS构建可注射型工程化组织的生物相容性检测及体外成骨诱导的实验研究
  • 材料与方法
  • 结果
  • 讨论
  • 结论
  • 第三部分:普伐他汀对BMSCs/FS成骨分化及分泌功能的影响
  • 材料与方法
  • 结果
  • 讨论
  • 结论
  • 第四部分:普伐他汀对BMSCs复合FS经髓芯减压移植治疗兔早期激素性股骨头坏死的干预研究
  • 材料与方法
  • 结果
  • 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 综述(一)
  • 参考文献
  • 综述(二)
  • 参考文献
  • 攻读博士学位期间所发表文章情况
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].豆制何首乌中异黄酮成分的检测及对BMSCs增殖的影响[J]. 中华中医药学刊 2020(07)
    • [2].组织界面刚度变化对大鼠BMSCs成骨分化的影响[J]. 中国修复重建外科杂志 2016(12)
    • [3].与软骨细胞共培养促进BMSCs分化为软骨细胞[J]. 江苏大学学报(医学版) 2017(05)
    • [4].低强度脉冲超声促进BMSCs定向分化对兔软骨缺损影响研究[J]. 社区医学杂志 2020(12)
    • [5].黄芪多糖对低氧环境中BMSCs成骨分化的影响[J]. 中国细胞生物学学报 2017(06)
    • [6].崂山奶山羊胎儿骨髓间充质干细胞(BMSCs)的分离培养及成神经诱导分化[J]. 畜牧与饲料科学 2016(09)
    • [7].BMSCs对大鼠放射性皮肤损伤的治疗研究[J]. 实验动物科学 2014(02)
    • [8].持续及周期流体静压力对大鼠BMSCs增殖及凋亡的影响[J]. 中国美容医学 2014(13)
    • [9].BMSCs对猪胰岛缺氧再给氧损伤的保护作用[J]. 中国修复重建外科杂志 2013(08)
    • [10].金匮肾气丸含药血清对体外兔BMSCs增殖细胞周期及凋亡的影响[J]. 辽宁中医杂志 2011(08)
    • [11].虎潜丸对骨髓基质干细胞BMSCs增长分化的影响[J]. 世界最新医学信息文摘 2016(83)
    • [12].基因修饰人BMSCs构建组织工程骨的实验研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2016(12)
    • [13].补肾活血方对激素性股骨头坏死大鼠BMSCs分化影响的研究[J]. 中西医结合研究 2012(06)
    • [14].兔激素性股骨头缺血性坏死模型BMSCs超微结构观察[J]. 山东医药 2011(19)
    • [15].以BMSCs为基础构建组织工程骨修复种植区骨量不足的实验研究[J]. 武警医学 2015(09)
    • [16].BMSCs作用于肝纤维化的分子机制研究[J]. 中国医药导报 2013(04)
    • [17].不同补肾法对BMSCs向神经元样细胞分化的影响[J]. 中国中医眼科杂志 2013(04)
    • [18].非接触性共培养BMSCs和髓核细胞时间差异性的实验研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2012(11)
    • [19].自体BMSCs诱导胰岛素分泌细胞治疗糖尿病大鼠疗效研究[J]. 内蒙古医学杂志 2020(10)
    • [20].长时间不同强度负压对兔BMSCs成骨分化及增殖的影响研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2017(05)
    • [21].经血管周围移植BMSCs抑制腹主动脉瘤生长[J]. 东南大学学报(医学版) 2016(03)
    • [22].泮托拉唑通过一氧化氮通路促进BMSCs增殖及向成骨细胞定向分化[J]. 中国骨质疏松杂志 2014(04)
    • [23].慢病毒介导人肝细胞生长因子基因感染BMSCs的实验研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2010(08)
    • [24].地黄饮子孵育BMSCs移植对大鼠脑梗塞HSP70和VEGF表达的影响[J]. 时珍国医国药 2010(11)
    • [25].补阳还五汤联合BMSCs对心肌缺血再灌注损伤模型大鼠心肌的防护作用[J]. 北京中医药大学学报 2020(02)
    • [26].BMSCs移植治疗非急性期深静脉血栓的实验研究[J]. 中国现代普通外科进展 2020(02)
    • [27].低氧与低氧模拟剂对BMSCs成骨分化影响的对比研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2016(07)
    • [28].健脾补肾方促进BMSCs增殖治疗溃疡性结肠炎的实验研究[J]. 南京中医药大学学报 2015(06)
    • [29].不同状态软骨细胞在共培养系统下对BMSCs向软骨细胞诱导分化作用的研究[J]. 中国矫形外科杂志 2011(03)
    • [30].间歇性负压培养对人BMSCs骨保护素和骨保护素配体mRNA表达水平的影响[J]. 中国修复重建外科杂志 2008(11)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  

    普伐他汀对BMSCs复合FS移植治疗兔早期激素性股骨头坏死的干预研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢