论文摘要
本研究采用同源克隆和染色体步移的策略首次分离、克隆了5396 bp的花鲈MSTN基因组序列。花鲈MSTN基因具有3个外显子,2个内含子,整个开放阅读框编码着374个氨基酸,具有9个保守的半胱氨基酸及一个RVRR的蛋白酶解加工位点。通过RT-PCR分析表明MSTN基因在花鲈肌肉、脑、眼睛中表达量最高,其次是小肠,鳃、脾脏、肝脏和心脏中只有极少量表达;在早期的胚胎发育中,直到孵化后15天的仔鱼才检测到MSTN的表达;在不同细胞系中,MSTN在花鲈胚胎干细胞(LJES1)中表达,但在其它几个花鲈体细胞系(上皮、成纤维、淋巴样细胞)中都没有检测到表达。此外,我们用1125 bp MSTN的5’启动子区域与GFP基因连接,构建了pMSTN-GFP质粒。将pMSTN-GFP转化LJES1细胞,获得了表达;通过显微注射,将pMSTN-GFP质粒转入斑马鱼1细胞期的胚胎,在孵化后10天左右的仔鱼躯干部检测到了绿色荧光的表达。为了提高外源基因转化胚胎干细胞的效率,通过三种脂质体分别介导花鲈胚胎干细胞(LJES1)转化效率的比较,建立了一种简单而有效的基因转移方法。优化了影响外源基因转化效率的因素,如细胞接种时间、初始接种密度、DNA和脂质体用量以及它们之间的比例等。以GFP为报告基因,用Genejammer介导LJES1细胞的基因转移,转化效率最高可达27.3%。经过药物筛选,建立了表达GFP基因的阳性克隆细胞株,经PCR检测证实了GFP基因已经整合到LJES1细胞的基因组中,并获得了正常表达。通过体外诱导,GFP阳性细胞能够分化为肌肉细胞、成纤维细胞、神经细胞等。进一步通过悬滴法培养,GFP阳性细胞形成了拟胚体,证实了经过长期的药物筛选后,LJES1细胞仍然保持着发育的多能性。根据克隆的MSTN基因序列,用长PCR方法扩增了3.2kb和1.5kb同源片段。3.2kb的长同源臂包括MSTN基因的5’区域、外显子1、内含子1、外显子2、内含子2和部分的外显子3;1.5kb的短同源臂包括MSTN基因的部分外显子3和3’区域。质粒骨架为细菌克隆载体pBluescript II KS,neo基因为正选择基因,tk基因为负选择基因。neo基因被插入到长、短同源臂之间,tk基因插入到长同源臂外侧。通过正
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摘 要ABSTRACT第一章、 综述1. 鱼类 MSTN 基因的研究进展1.1 鱼类 MSTN 基因的分子结构1.2 鱼类 MSTN 的不同基因型1.3 鱼类 MSTN 基因的表达1.3.1 不同组织的表达1.3.2 不同发育时期的表达1.4 鱼类 MSTN 基因的功能分析1.5 鱼类 MSTN 基因与其他基因的互作关系1.6 鱼类 MSTN 基因的微卫星标记及多态性1.7 MSTN 基因研究的意义及前景展望2. 鱼类胚胎干细胞及其介导的遗传操作研究进展2.1 斑马鱼胚胎干细胞2.2 青鳉胚胎干细胞2.3 金鲷胚胎干细胞2.4 花鲈和真鲷胚胎干细胞2.5 大菱鲆胚胎干细胞3. 基因打靶技术的发展及操作方法3.1 基因打靶技术的原理3.1.1 Holliday 双链侵入模型3.1.2 单链侵入模型3.1.3 双链断裂修复模型3.2 基因打靶技术的操作方法3.2.1 同源重组载体构建3.2.1.1 基因打靶载体的类型3.2.1.2 基因打靶载体构建的策略3.2.2 打靶载体转化受体细胞的方法3.2.2.1 磷酸钙共沉淀法3.2.2.2 脂质体法3.2.2.3 电穿孔法3.2.3 同源重组阳性细胞的筛选3.2.3.1 正向选择法(positive selection)3.2.3.2 正负选择法(positive and negative selection)3.2.4 同源重组的胚胎干细胞克隆的鉴定方法3.2.4.1 PCR 初步鉴定重组阳性细胞3.2.4.2 SOURTHERN BLOT 鉴定重组阳性细胞3.2.5 同源重组阳性细胞向受体细胞的移植4. 鱼类基因打靶潜在的应用价值4.1 鱼类基因功能分析的平台4.2 提高鱼类的抗病力或生长4.3 鱼类 MSTN 打靶研究的应用前景第二章、花鲈肌肉生长抑素(MSTN)基因的克隆和进化分析1. 材料和试剂1.1 实验材料1.2 实验试剂2 实验方法2.1 花鲈基因组 DNA 的提取2.2 花鲈肌肉生长抑制基因(MSTN)编码区序列的扩增2.3 染色体步移克隆花鲈MSTN基因5’和3’侧翼序列2.3.1 染色体步移扩增引物2.3.2 花鲈基因组 DNA 的内切酶的完全消化2.3.3 接头(Cassette)的连接反应TM Universal Kit 扩增MSTN 5’-UTR 区域'>2.3.4 BD GenomeWalkerTM Universal Kit 扩增MSTN 5’-UTR 区域2.3.5 LA PCR in vitro Cloning kit 扩增MSTN 3’-UTR 区域TM Universal Kit 再次扩增MSTN 3’-UTR 区域'>2.3.6 BD GenomeWalkerTM Universal Kit 再次扩增MSTN 3’-UTR 区域2.4 PCR 产物的分离、纯化及回收2.5 花鲈肌肉生长抑制基因(MSTN)剪接连接点分析2.6 序列分析和比对3 实验结果3.1 花鲈MSTN基因的克隆及序列测定3.2 花鲈MSTN基因的结构和序列分析3.3 花鲈MSTN基因的氨基酸序列比对及同源性分析3.4 花鲈肌肉生长抑素(MSTN)的进化分析4 讨论第三章、花鲈肌肉生长抑素基因(MSTN)的表达分析1、材料和方法1.1 实验材料1.1.1 实验试剂及质粒1.1.2 花鲈组织及胚胎的收集1.2 花鲈DNA及总RNA的提取1.3 表达引物的设计1.4 反转录第一链cDNA的合成1.5 PCR扩增1.6 GFP表达载体的构建1.7 细胞的培养及脂质体介导的细胞转化1.8 显微注射2、实验结果2.1 MSTN 基因在花鲈不同组织中的表达2.2 MSTN 基因在花鲈早期胚胎发育中的表达2.3 MSTN 基因在不同的细胞系中的表达2.4 表达 GFP 载体的构建2.5 pMSTN-GFP 转化LJE51 细胞后的荧光观察2.6 pMSTN-GFP 在斑马鱼胚胎中的表达3. 讨论第四章、花鲈MSTN 同源重组载体的构建第一节、花鲈MSTN 基因1.5kb 及3.2kb 同源片段的扩增1 实验方法1.1 花鲈MSTN 基因同源重组载体部分片段的引物设计1.2 花鲈MSTN 基因同源长、短片段的PCR 扩增1.2.1 1.5 Kb 同源短片段的扩增1.2.2 3.2 Kb 同源长片段的扩增1.3 PCR 产物检测及回收2 实验结果第二节 花鲈 MSTN 基因同源重组载体的构建1 实验材料2 实验方法和结果2.1 重组质粒P+M1.5的构建2.1.1 乙醇纯化回收PCR 产物2.1.2 酶切 PCR 产物及PBSKII+质粒2.1.3 试剂盒纯化回收酶切产物2.1.4 酶切产物的连接2.1.5 连接产物的转化及筛选2.1.6 P+M1.5 连接质粒的鉴定2.2 重组质粒 P+M1.5+M3.2 的构建2.3 重组质粒P+M1.5+M3.2+neo 的构建(正选择基因的插入)2.3.1 neo 片段的连接2.3.2 重组质粒 P+M1.5+M3.2+neo 的转化、筛选和酶切鉴定2.3.3 重组质粒 P+M1.5+M3.2+neo 的测序鉴定2.4 重组质粒P+M1.5+M3.2+neo+TK 的构建(负选择基因tk 的插入)3. 讨论第五章、三种脂质体介导的花鲈胚胎干细胞转化效率的比较研究1 材料和方法1.1 质粒的制备1.2 细胞培养1.3 脂质体介导的细胞转化1.4 表达检测及表达效率的统计2 实验结果2.1 DNA 与脂质体的比例对转化效率的影响2.2 DNA与脂质体的剂量对转化效率的影响2.3 细胞接种时间对转化效率的影响2.4 细胞接种初始密度对转染效率的影响3. 讨论第六章、表达绿色荧光蛋白基因的花鲈胚胎干细胞株的建立及其体外分化1. 材料和方法1.1 质粒DNA的制备及细胞培养1.2 脂质体介导的细胞转化1.3 药物筛选1.4 基因整合和表达的检测1.5 GFP阳性花鲈胚胎干细胞体外分化能力的测定1.6 GFP阳性花鲈胚胎干细胞形成拟胚体的能力2. 实验结果2.1 表达GFP的LJE51细胞观察、筛选及单克隆阳性细胞株的建立2.2 GFP+ LJE51细胞的鉴定2.3 GFP+ LJE51细胞的体外分化能力2.4 GFP+ LJE51细胞形成拟胚体的能力3. 讨论第七章、MSTN 同源重组载体的筛选1 材料和方法1.1 实验试剂配制1.2 细胞培养1.3 MSTN 同源重组载体 DNA 的制备及酶切1.4 MSTN 同源重组载体 DNA 转化花鲈 ES 细胞1.5 正-负选择效果的检测2. 实验结果3. 讨 论结论参考文献致谢附录:主要成果和发表相关论文
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标签:花鲈论文; 肌肉生长抑素论文; 基因克隆论文; 表达分析论文; 胚胎干细胞论文; 绿色荧光蛋白论文; 基因转移论文; 同源重组论文;
花鲈肌肉生长抑素基因(MSTN)克隆、表达及其基因打靶载体的构建
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