RNA干扰HIF-1α对食管鳞癌细胞Eca-109糖酵解相关基因表达的影响

RNA干扰HIF-1α对食管鳞癌细胞Eca-109糖酵解相关基因表达的影响

论文摘要

背景:食管鳞癌是我国常见的恶性肿瘤,其发病率和死亡率均居世界前列。肿瘤细胞依赖糖酵解获得能量的特点是其缺氧耐受的代谢基础,也是对放化疗抵抗的重要原因。缺氧诱导因子-1(hypoxia inducible factor-1,HIF-1)是广泛存在于哺乳动物体内的一种转录因子,是机体适应缺氧微环境的关键调节因子,在食管鳞癌中高表达,并与肿瘤的浸润深度、淋巴结转移、远处器官转移以及肿瘤的TNM分期密切相关。HIF-1α可能是调节肿瘤细胞糖酵解的重要蛋白,已经成为肿瘤发病机制和治疗研究方面的热点之一。目的:观察在人食管鳞癌细胞Eca-109中RNA干扰抑制HIF-1α的效果及常氧及缺氧培养下RNA干扰HIF-1α基因对糖酵解相关基因表达的影响,探讨HIF-1α基因与食管癌细胞糖酵解通路之间的关系。方法:1.食管鳞癌细胞Eca109予以常氧和缺氧培养,缺氧培养时间分别为6、12、24、48小时,采用Western印迹检测细胞中HIF-1α蛋白的表达变化,选择可以引起HIF-1α蛋白表达最高的时间点作为缺氧培养时间。2.选择3组细胞分别为食管鳞癌Eca-109细胞,稳定转染HIF-1αShRNA及空质粒的Eca-109细胞,分别常氧培养及缺氧培养,Western blot检测HIF-1α表达,鉴定稳转HIF-1αShRNA的Eca-109细胞株的干扰效果。3.三组细胞分别予以常氧和缺氧培养,半定量RT-PCR检测Glut-1、LDH-A、HK-II糖酵解相关基因mRNA的表达。4.三组细胞分别予以常氧和缺氧培养,Western blot检测Glut-1、LDH-A、HK-II糖酵解相关基因蛋白的表达。5.三组细胞分别予以常氧和缺氧培养,分光光度法测定胞液中乳酸脱氢酶、已糖激酶酶活性。6.三组细胞分别予以常氧和缺氧培养,分光光度法测定培养上清液中乳酸浓度。结果:1.常氧状态下,在Eca109细胞中存在HIF-1α蛋白的表达,物理缺氧培养12小时HIF-1α表达最强,选取12小时为后续实验的缺氧时间。2.干扰细胞常氧下HIF-1α几乎无表达,缺氧后亦无增强现象。3.干扰细胞Glut-1、LDH-A、HK-IImRNA表达较未干扰细胞明显减弱(P<0.05),未干扰细胞缺氧后表达稍增强,差异有统计学意义(P<0.05)。4.干扰细胞Glut-1、LDH-A、HK-II蛋白表达较未干扰细胞明显减弱(P<0.05),未干扰细胞缺氧后表达稍增强,差异有统计学意义(P<0.05)。5.干扰细胞胞液乳酸脱氢酶、已糖激酶酶活性较未干扰细胞减弱明显(P<0.05),未干扰细胞缺氧后表达稍增强,但差异无统计学意义(P>0.05)。6.干扰细胞上清液乳酸浓度较未干扰细胞减弱明显(P<0.05),未干扰细胞缺氧后表达稍增强,差异有统计学意义(P<0.05)。结论:1、HIF-1α蛋白表达与食管癌细胞缺氧时间密切相关,缺氧12小时HIF-1α蛋白表达高峰。2、本实验RNA干扰细胞常氧下HIF-1α蛋白几乎无表达,缺氧后亦无增强现象,表明我们利用RNA干扰技术成功抑制了食管鳞癌细胞Eca-109的HIF-1α表达。3、本研究中,食管癌细胞利用RNA干扰HIF-1α表达沉默后,Glut-1、LDH-A、HK-II的表达也明显下调,表明Glut-1、LDH-A、HK-II均是HIF-1的靶基因。4、本研究食管癌细胞HIF-1α表达被抑制后,糖酵解相关基因的表达及乳酸水平明显受抑制,表明无论在常氧还是缺氧条件下,HIF-1α基因与食管癌细胞糖酵解通路密切相关。

论文目录

  • 一、英文缩略词表
  • 二、中文摘要
  • 三、英文摘要
  • 四、论文正文
  • 引言
  • 材料与方法
  • 结果
  • 讨论
  • 小结
  • 五、参考文献
  • 六、综述与参考文献
  • 七、文章发表情况
  • 八、致谢
  • 相关论文文献

    • [1].茶多酚对食管癌Eca-109细胞生长的影响[J]. 现代肿瘤医学 2015(19)
    • [2].阿尔泰瑞香提取物对人食管癌Eca-109细胞增殖、周期及凋亡的影响[J]. 新疆医科大学学报 2017(03)
    • [3].吴茱萸碱增强Eca-109食管鳞癌细胞的放射敏感性[J]. 细胞与分子免疫学杂志 2016(07)
    • [4].内折香茶菜叶挥发油对人食管癌ECA-109细胞增殖抑制作用的初步研究[J]. 韩山师范学院学报 2010(06)
    • [5].山奈酚诱导人食管鳞癌Eca-109细胞凋亡及其机制[J]. 南方医科大学学报 2011(08)
    • [6].雷公藤内酯醇联合顺铂对食管鳞癌细胞ECA-109增殖的影响[J]. 新乡医学院学报 2016(10)
    • [7].苦参素对人食管癌Eca-109细胞增殖作用及机制研究[J]. 中国中医药现代远程教育 2008(02)
    • [8].姜黄素诱导食管癌Eca-109细胞凋亡机制的研究[J]. 时珍国医国药 2013(07)
    • [9].姜黄素对人食管癌细胞Eca-109增殖及细胞周期的影响[J]. 现代中西医结合杂志 2011(21)
    • [10].表没食子儿茶素没食子酸酯与西妥昔单抗联用体内外抗食管癌细胞Eca-109的作用研究[J]. 中国医药生物技术 2015(01)
    • [11].丹皮酚对食管鳞癌细胞株Eca-109的体外放射增敏作用和机制[J]. 安徽医科大学学报 2014(10)
    • [12].辐射对食管癌Eca-109细胞COX-2表达的影响及其放射增敏意义[J]. 现代肿瘤医学 2012(01)
    • [13].姜黄素诱导食管癌Eca-109细胞凋亡机制的研究[J]. 中国药理学与毒理学杂志 2012(03)
    • [14].苦参素对人食管癌Eca-109细胞增殖抑制及其机制研究[J]. 中国中医基础医学杂志 2008(10)
    • [15].夏枯草对食管癌Eca-109细胞体外侵袭和转移的影响[J]. 中国食物与营养 2014(08)
    • [16].熊果酸诱导人食管癌细胞Eca-109凋亡的作用及机制[J]. 中药新药与临床药理 2008(06)
    • [17].姜黄素抗食管癌Eca-109细胞增殖及诱导凋亡机制的研究[J]. 时珍国医国药 2013(08)
    • [18].新城疫病毒诱导人食管癌细胞ECA-109凋亡的体外研究[J]. 山东医药 2011(21)
    • [19].胰岛素联合5-氟尿嘧啶对Eca-109细胞的化疗增效作用[J]. 郑州大学学报(医学版) 2008(04)
    • [20].齐墩果酸对食管癌细胞Eca-109的增殖抑制作用[J]. 石河子大学学报(自然科学版) 2012(06)
    • [21].~(18)氟-氟代脱氧葡萄糖诱导食管癌Eca-109细胞凋亡的初步研究[J]. 安徽医科大学学报 2011(07)
    • [22].长链非编码RNA SNHG3在食管鳞状细胞癌中的表达及其对ECA-109细胞迁移和侵袭的影响[J]. 中国肿瘤临床 2020(12)
    • [23].ALA-PDT对食管癌Eca-109凋亡相关基因表达的影响[J]. 癌症进展 2017(01)
    • [24].藤黄酸抑制人食管癌ECA-109细胞增殖及MMP2分泌[J]. 中国继续医学教育 2016(21)
    • [25].丹皮酚诱导人食管癌Eca-109裸鼠移植瘤凋亡的机制探讨[J]. 中国药理学通报 2008(04)
    • [26].下调UHRF1表达对食管鳞癌Eca-109细胞放射敏感性的影响[J]. 西安交通大学学报(医学版) 2020(04)
    • [27].JNK信号通路对葡萄籽提取物抑制Eca-109细胞增殖的调控作用[J]. 兰州大学学报(医学版) 2014(01)
    • [28].RhoA对食管癌Eca-109细胞VEGF表达的调控作用[J]. 临床肿瘤学杂志 2014(06)
    • [29].曲古霉素A和枸杞多糖联合应用对人食管癌Eca-109细胞凋亡的影响[J]. 河南职工医学院学报 2011(04)
    • [30].NS-398联合顺铂对Eca-109细胞增殖及凋亡的影响[J]. 郑州大学学报(医学版) 2010(05)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  

    RNA干扰HIF-1α对食管鳞癌细胞Eca-109糖酵解相关基因表达的影响
    下载Doc文档

    猜你喜欢