论文摘要
鳗弧菌是危害我国水产养殖业的主要病原菌.本文采用分子生物学,免疫学和膜片钳等技术,研究养殖鱼类-大菱鲆(Scophthalmus maximus),在受到病原菌感染后,SNARE蛋白和钾离子通道参与免疫应答防御机制的调控作用。通过腹腔注射半致死剂量的鳗弧菌,研究受感染的大菱鲆在感染初期所诱发的一系列应激反应。通过鉴定外周血液白细胞的吞噬和杀灭鳗弧菌的活性,以及外周血、脾脏和头肾白细胞所发生的呼吸爆发的活性,血清中细胞因子-白介素1β的含量的变化,研究抗鳗弧菌的先天性免疫应答防御机制。结果发现在感染24hr后,白细胞吞噬鳗弧菌的百分数从47.25%增加到61.18%,吞噬鳗弧菌的指数从4.68增加到5.62;杀菌活性从1.26增加到1.73;呼吸爆发活性OD600值从0.07增加到0.2;比较外周血、脾脏和头肾白细胞三种组织所发生的呼吸爆发的活性发现,脾脏白细胞的呼吸爆发活性最高,头肾略高于血液,感染8hr后呼吸爆发活性平均大于1.7;血清中细胞因子-白介素1β的OD490值从正常鱼对照的0.0523±0.014增长到感染24hr的最大值0.47±0.033,感染24 hr后的表达量大约是未感染对照的9倍,感染后增加量显著(p<0.05)。进一步证明感染初期先天性免疫应答防御在保护鱼体中的重要作用。SNARE蛋白是一种参与调控所有真核生物细胞分泌和胞吐的膜蛋白。为了测定SNARE蛋白是否也参与大菱鲆白细胞的分泌和胞吐,首先通过RT-PCR方法鉴定大菱鲆体内存在的SNARE蛋白,设计两种SNARE蛋白(v-SNARE,VAMP-2和t-SNARE,SNAP-25)基因的引物,从外周血白细胞和脑组织中都克隆出SNAREs蛋白中的VAMP-2的cDNA,而SNAP-25的cDNA仅从脑组织中克隆出。经过序列分析发现,大菱鲆的VAMP-2基因与多数哺乳动物的VAMP-2基因同源性在80%以上,而氨基酸序列的同源性在90.6%以上;大菱鲆SNAP-25基因与多数哺乳动物的SNAP-25基因也在83%以上,氨基酸序列的同源性在89%以上。结果表明这两种SNARE蛋白在大菱鲆体内也是非常保守。为了证明SNARE蛋白是否参与调控大菱鲆白细胞细胞因子白介素-1β的分泌,研究分泌调控蛋白-SNAREs在大菱鲆先天性免疫应答过程中的作用。通过RT-PCR,免疫印迹,免疫组化技术克隆了大菱鲆VAMP-2基因,并研究了其在细胞因子白细胞介素-1β分泌中的调控作用。
论文目录
摘要ABSTRACT1前言1.1 鱼类免疫机制研究进展1.1.1 鱼类免疫系统概述1.1.2 鱼类细胞因子-白介素-1β1.1.3 鱼类免疫机制研究进展1.2 SNAREs 蛋白在免疫应答中作用的研究进展1.2.1 SNAREs 蛋白在胞吐和分泌过程中的功能1.2.2 SNARE 蛋白参与调控免疫细胞的胞吐1.3 T淋巴细胞中钾离子通道的研究进展1.3.1 T 淋巴细胞中钾离子通道的结构和种类1.3.2 T 淋巴细胞中钾离子通道的表达变化1.3.3 T 淋巴细胞中钾离子通道的生理作用1.4 本研究的目的意义2 大菱鲆(Scophthalmus maximus)抗鳗弧菌(Vibrio anguillarum)感染的免疫应答反应的研究2.1 材料与仪器2.1.1 仪器与设备2.1.2 材料与试剂2.2 实验方法2.2.1 大菱鲆血清和脾、头肾及血液白细胞的制备2.2.2 大菱鲆白细胞吞噬鳗弧菌活性的测定2.2.3 大菱鲆白细胞杀菌活性的测定2.2.4 大菱鲆白细胞呼吸爆发活性的测定2.2.5 大菱鲆血清中促炎症细胞因子IL-1β含量的测定2.2.6 大菱鲆淋巴细胞增殖测定2.3 结果2.3.1 大菱鲆白细胞吞噬鳗弧菌活性2.3.2 大菱鲆白细胞杀菌活性2.3.3 大菱鲆呼吸爆发活性2.3.4 大菱鲆细胞因子IL-1β分泌2.3.5 大菱鲆淋巴细胞增殖2.4 讨论2.5 结论3 大菱鲆 SNARE 蛋白基因的克隆和序列分析3.1 材料与仪器3.1.1 仪器与设备3.1.2 材料与试剂3.2 实验方法3.2.1 大菱鲆SNARE 基因扩增引物设计3.2.2 RNA 的提取3.2.3 cDNA 合成3.2.4 PCR 扩增3.2.5 PCR 产物克隆3.2.6 测序结果验证3.2.7 序列分析3.3 结果3.3.1 RNA 的提取3.3.2 PCR 扩增结果3.3.3 测序结果3.3.4 同源性分析3.3.5 一级结构分析3.3.6 二级结构预测3.3.7 三维结构预测展示3.3.8 疏水性分析3.4 讨论3.5 结论4大菱鲆 VAMP-2蛋白参与细胞因子 IL-1β分泌的调控4.1 材料与仪器4.1.1 仪器与设备4.1.2 材料与试剂4.2 实验方法4.2.1 鳗弧菌免疫鱼体4.2.2 血清和白细胞的制备4.2.3 血清中IL-1β含量的测定4.2.4 IL-1β和 VAMP-2 的 RT-PCR4.2.5 VAMP-2 的免疫印迹4.2.6 VAMP-2 的激光共聚焦显微镜扫描4.3 结果4.3.1 受感染鱼白细胞IL-1β分泌4.3.2 VAMP-2 基因在大菱鲆白细胞中表达4.3.3 受鳗弧菌刺激的鱼体白细胞中 VAMP-2 蛋白的表达量增加4.3.4 VAMP-2 定位于大菱鲆白细胞的分泌小泡上4.4 讨论4.5 结论5 大菱鲆钾离子通道参与调控淋巴细胞增殖的研究5.1 材料与仪器5.1.1 仪器与设备5.1.2 材料与试剂5.2 实验方法5.2.1 MTT 法检测钾离子通道阻断剂 TEA 和4-AP 对鳗弧菌感染72 小时后大菱鲆外周血淋巴细胞增殖的影响5.2.2 鳗弧菌感染前后大菱鲆外周血淋巴细胞钾离子通道变化的检测5.3 结果5.3.1 淋巴细胞的贴壁5.3.2 通道阻断剂 TEA 和 4-AP 对淋巴细胞增殖的影响5.3.3 受鳗弧菌感染前后大菱鲆淋巴细胞钾离子通道特性5.3.4 通道阻断剂 TEA 和 4-AP 对淋巴细胞钾离子通道的影响5.4 讨论5.5 结论本论文创新点发表文章参考文献致谢
相关论文文献
- [1].驱动细胞膜融合的发动机——SNAREs蛋白[J]. 生物学通报 2012(01)
- [2].植物可溶性N-乙基马来酰亚胺敏感因子连接物复合体(SNAREs)及其生物学功能研究进展[J]. 遗传 2009(05)
- [3].SNAREs蛋白复合物与囊泡融合分子调节机制的研究进展[J]. 检验医学与临床 2015(10)
- [4].Synaptobrevin-2促进心房肌SK2通道转运的机制研究[J]. 中国科学:生命科学 2018(01)
- [5].Ykt6结构与膜融合功能研究进展[J]. 现代医学 2015(08)
标签:大菱鲆论文; 免疫应答论文; 蛋白论文; 钾离子通道论文;
SNAREs蛋白和钾离子通道蛋白参与调节大菱鲆免疫应答
下载Doc文档