PRRS蜂胶佐剂灭活疫苗的免疫效力研究

PRRS蜂胶佐剂灭活疫苗的免疫效力研究

论文摘要

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合征病毒引起的一种以感染猪发热、厌食,妊娠母猪繁殖障碍,仔猪呼吸障碍为特征的高度传染性疾病。此病常为地方流行性,给养猪业造成巨大的危害。我国因为养猪产业化程度低,综合防制技术水平不高,PRRS的控制依赖于免疫接种,成为我国相当长一段时间内防制PRRS所不得不面对的事实。蜂胶具有抗菌、抗病毒及增强机体免疫功能等作用;蜂胶颗粒能与抗原相互交联成具有抗原“仓库”和类免疫刺激作用的复合物结构,可以起到免疫增强剂的作用。为了研究PRRS疫苗的免疫效力,找到能够控制该病的有效途径,本次实验以蜂胶作为免疫佐剂,按专有技术与PRRSV融合得到PRRS蜂胶佐剂灭活疫苗,与油乳佐剂灭活苗对比进行了研究。1. PRRS蜂胶佐剂灭活疫苗对体液免疫水平的影响选用50日龄仔猪15头,随机分为3组。分别注射1倍剂量的PRRS蜂胶佐剂灭活疫苗;PRRS油乳剂灭活疫苗;等量生理盐水。分别于注射后7 d、14 d、21 d、28 d、42 d、60 d采血检测ELISA抗体和中和抗体。结果显示,两组具有相似的ELISA抗体消长规律,但蜂胶组所诱导的ELISA抗体水平一直高于油苗组;蜂胶组所诱导的中和抗体产生更迅速,水平更高。2.PRRS蜂胶佐剂灭活疫苗对细胞免疫水平的影响分组同上。并于免疫前、免疫后7 d、14 d、28 d、42 d采集颈静脉血,进行外周血淋巴细胞表面CD3+、CD4+、CD8+的流式细胞术检测。结果显示,对照组CD3+、CD4+、CD8+细胞亚群比例值在整个试验期基本保持不变。蜂胶组与油苗组比较,可以促使CD3+细胞亚群比例值上升迅速且高峰期的数值更高。蜂胶组和油苗组的CD4+细胞亚群比例值上升速度相似,在高峰期时蜂胶组的比例值明显高于油苗组。免疫后0~7 d试验组CD8+细胞亚群比例均呈下降趋势,但7 d后的试验期内又均呈缓慢上升趋势,其中蜂胶组CD8+细胞亚群比例值上升速度较快,且其数值远高于油苗组。3.竞争性RT-PCR方法的建立及其对猪IFN-γmRNA的定量检测无菌分离猪外周血单个核细胞,体外刺激培养15 h后提取细胞总RNA。采用RT-PCR技术扩增得到435 bp的IFN-γ基因片段。将其与pMD18-T载体连接,构建pMD-IFN435重组质粒。然后对其进行基因缺失,得到含有367 bp目的片段的重组质粒pMD-IFN367,即内标准DNA模板。以定量后的pMD-IFN367与2倍梯度稀释的pMD-IFN435进行竞争PCR扩增,建立了能够准确、定量检测猪IFN-γmRNA的标准竞争曲线的线性回归方程(y=0.414x-1.864)。取待测样品按照以上步骤获得反转录产物,与定量后的pMD-IFN367质粒进行竞争PCR扩增。记录pMD-IFN435与pMD-IFN367的光密度比值,结合标准竞争曲线,得到待测样品中IFN-γmRNA的含量。在免疫后至第14 d,油苗组和蜂胶组的IFN-γmRNA量比较相似,但第14 d后油苗组的上升较为缓慢;蜂胶组以较快的速度迅速上升,第42 d时可达2.5632×108/μL。综上所述,蜂胶佐剂疫苗与油佐剂疫苗比较,免疫后不仅能够得到更高水平的ELISA抗体,更能够有效地诱导机体产生特异性中和抗体,对机体起中和保护作用。同时,蜂胶佐剂可以更有效地刺激机体产生T淋巴细胞,提高细胞免疫水平。免疫后IFN-γ含量明显增多进一步证明了其对机体非特异性免疫能力的增强作用。蜂胶佐剂灭活疫苗是一种值得普及推广的新型疫苗,这为PRRS疫苗的研究提供了新的思路。由此证明,蜂胶佐剂作为一种新型免疫增强剂具有广阔的应用前景,蜂胶佐剂灭活疫苗的研制及其效力研究也为PRRS的防制提供了科学依据。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 猪繁殖与呼吸综合征的免疫学研究
  • 1.1 抗体依赖性增强作用
  • 1.2 T 淋巴细胞与免疫相关细胞
  • 1.3 细胞因子
  • 1.4 体液免疫
  • 1.5 细胞免疫
  • 1.6 免疫抑制
  • 1.7 免疫调节
  • 1.8 免疫病理学
  • 1.9 小结
  • 第二章 蜂胶的免疫增强作用及其在兽医学中的应用
  • 2.1 蜂胶的一般特性
  • 2.2 蜂胶的免疫增强作用
  • 2.2.1 蜂胶免疫增强作用的研究简史
  • 2.2.2 蜂胶免疫增强作用的研究现状
  • 2.3 蜂胶作为疫苗佐剂的研究
  • 2.3.1 蜂胶疫苗的开发和应用
  • 2.3.2 蜂胶疫苗的免疫机制和免疫学特性
  • 2.4 小结
  • 2.5 试验的目的与意义
  • 第三章 PRRS 蜂胶佐剂灭活疫苗对猪体液免疫水平的影响
  • 3.1 试验材料
  • 3.1.1 病毒细胞及血清
  • 3.1.2 常用培养用试剂及配制方法
  • 3.1.3 实验动物
  • 3.1.4 ELISA 抗体检测试剂盒及主要试剂的配制
  • 3.1.5 中和抗体试验主要试剂及其配制
  • 3.1.6 疫苗
  • 3.1.7 仪器设备
  • 3.2 试验方法
  • 3.2.1 实验动物的分组及免疫
  • 3.2.2 ELISA 抗体的检测
  • 3.2.3 中和抗体的检测
  • 3.3 试验结果
  • 3.3.1 I-ELISA 检测抗体结果
  • 3.3.2 中和抗体的检测结果
  • 3.4 分析与讨论
  • 3.4.1 两种佐剂疫苗诱导的体液免疫应答
  • 3.4.2 两种佐剂对 ELISA 抗体产生的影响
  • 3.4.3 两种佐剂对中和抗体产生的影响
  • 3.5 小结
  • 第四章 PRRS 蜂胶佐剂灭活疫苗对猪细胞免疫水平的影响
  • 4.1 试验材料
  • 4.1.1 疫苗
  • 4.1.2 主要试剂及其配制
  • 4.1.3 主要仪器
  • 4.1.4 实验动物
  • 4.2 试验方法
  • 4.2.1 实验动物的分组及免疫
  • 4.2.2 T 淋巴细胞亚类的检测
  • 4.3 试验结果
  • +细胞亚群的变化'>4.3.1 CD3+细胞亚群的变化
  • +细胞亚群的变化'>4.3.2 CD4+细胞亚群的变化
  • +细胞亚群的变化'>4.3.3 CD8+细胞亚群的变化
  • 4.4 分析与讨论
  • 4.4.1 试验动物的 T 淋巴细胞亚群特征
  • + T 淋巴细胞'>4.4.2 两种佐剂疫苗免疫后的外周血 CD3+ T 淋巴细胞
  • + T 淋巴细胞'>4.4.3 两种佐剂疫苗免疫后的外周血 CD4+ T 淋巴细胞
  • + T 淋巴细胞'>4.4.4 两种佐剂疫苗免疫后的外周血 CD8+ T 淋巴细胞
  • + T 淋巴细胞介导的细胞免疫方面的免疫优势'>4.4.5 蜂胶佐剂疫苗在 CD8+ T 淋巴细胞介导的细胞免疫方面的免疫优势
  • 4.5 小结
  • 第五章 竞争性 RT-PCR 方法对免疫猪 IFN-γmRNA 的定量检测
  • 5.1 试验材料
  • 5.1.1 菌株和克隆载体
  • 5.1.2 工具酶与试剂
  • 5.1.3 合成引物
  • 5.1.4 试剂与溶液配制
  • 5.1.5 主要仪器
  • 5.2 试验方法
  • 5.2.1 猪外周血单个核细胞(PBMC)的分离培养
  • 5.2.2 总RNA 的提取
  • 5.2.3 RT-PCR 扩增
  • 5.2.4 扩增产物的回收转化
  • 5.2.5 IFN-γmRNA 标准竞争模板的构建
  • 5.2.6 IFN-γ定量检测标准竞争曲线的建立
  • 5.2.7 动物免疫后体内IFN-γ的定量检测
  • 5.3 试验结果
  • 5.3.1 IFN-γ的 RT—PCR 扩增
  • 5.3.2 IFN-γ基因的克隆及酶切与测序鉴定
  • 5.3.3 IFN-γ标准竞争模板的构建与鉴定
  • 5.3.4 pMD-IFN435 标准竞争曲线的建立
  • 5.3.5 动物免疫后体内IFN-γ的定量检测结果
  • 5.4 分析与讨论
  • 5.4.1 猪 IFN-γmRNA 的定量检测竞争 RT-PCR 方法的建立
  • 5.4.2 不同疫苗免疫后机体 IFN-γmRNA 的变化
  • 5.5 小结
  • 结论
  • 参考文献
  • 英文缩略词及中英文对照
  • 致谢
  • 个人简介
  • 相关论文文献

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