绿豆中清热解毒成分的提取及稳定性的研究

绿豆中清热解毒成分的提取及稳定性的研究

论文摘要

以绿豆为原料,乙醇粗提,两相萃取。利用萃取物进行了抑菌、体内外清除内毒素实验、解热试验,并对萃取物的成分进行分离制备,对成分进行定性。采用乙醇冷凝回流萃取得到总提取物,通过显色基质鲎试验法证明绿豆提取液具有清除细菌内毒素的作用,并以内毒素清除率为指标确定最佳提取条件为70%乙醇,料液比1:20,温度60℃,提取时间2h;总提取物依次用石油醚、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃取,萃取物经鲎试验证明正丁醇萃取物为有效萃取物,内毒素清除率为78.90%。抑菌实验。总提取物和正丁醇萃取物对枯草芽孢杆菌、白色葡萄球菌、大肠杆菌、青霉有不同的抑制作用,其中正丁醇萃取物抑菌活性最强,并确定正丁醇萃取物的最小抑菌浓度:大肠杆菌0.85mg/ml、枯草芽孢杆菌0.79 mg/ml、白色葡萄球菌0.59mg/ml、青霉35.32mg/ml。且抑菌活性在温度30℃~70℃,pH值7.0~8.0的条件下都具有较好的抑菌稳定性,不受紫外线照射的影响。清热解毒作用研究。气相色谱外标法测定正丁醇萃取物的正丁醇残留量0.0236%;浓度为10mg/ml、100mg/ml正丁醇萃取物,能显著降低小鼠的死亡率,延长生存时间,与内毒素组相比有极显著性的差异(P<0.01);浓度为1mg/ml,与内毒素组比较有显著性差异(P<0.05);对存活小鼠血清、肝脏、脑中SOD活力和MDA的含量进行测定。结果表明浓度为10mg/ml、100mg/ml正丁醇萃取物能极显著提高小鼠体内SOD活力,降低MDA的水平,与内毒素组比较(P<0.05);浓度为1mg/ml时,能显著性降低MDA的水平(P<0.05);同时对内毒素致热小鼠发热进行解热试验,给药1h后测定肛温,浓度为1.0%和0.6%时,与模型组比较呈现显著性差异(P<0.05),给药2h后,0.2%的正丁醇萃取物较模型组也表现出显著性差异(P<0.05)。正丁醇萃取物的组分分离制备。薄层层析筛选出展开剂乙酸乙酯:正丁醇:水:醋酸=4:1:1:1时,分离5种组分;用乙酸乙酯:正丁醇=4:1、乙酸乙酯:正丁醇:醋酸=20:5:3进行硅胶柱梯度洗脱,分离出组分F01(产率20.12%)、F02(产率15.35%);残留液过聚酰胺层析柱,60%乙醇进行洗脱,得到组分F03(产率12.56%);残留液进一步用TLC制备得到F05(产率16.05%);各组分经薄层层析确定各组分为单一组分,熔点为:正丁醇247.3~261.5、F01,259.8~265.9、F02,281.6~287.5、F03,284.1~291.3、F05,196.0~201.6。通过薄层染色反应,确定F02为黄酮;F04、F05是皂苷。稳定性试验。正丁醇萃取物极易潮解;温度对F01、F02、F04组分含量影响较大,当温度超过70℃,含量急剧下降,只有在温度50℃以下时,含量基本保持不变,F03在温度超过100℃时,才对其成分造成破坏,性状无变化;各组分不受紫外线照射影响,在pH值5.0-9.0范围内比较稳定。其中F01耐酸性较强。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 1 绪论
  • 1.1 绿豆
  • 1.1.1 绿豆简介
  • 1.1.2 产地分布
  • 1.1.3 绿豆的成分
  • 1.1.4 绿豆的药理作用
  • 1.1.5 绿豆的应用
  • 1.2 清热解毒
  • 1.2.1 清热解毒定义
  • 1.2.2 清热解毒的研究方法
  • 1.3 本课题来源及研究意义
  • 1.4 论文研究内容
  • 1.4.1 绿豆提取液的制备
  • 1.4.2 绿豆正丁醇提取物抑菌作用研究
  • 1.4.3 绿豆正丁醇提取物清热解毒作用研究
  • 1.4.4 绿豆正丁醇萃取物化学成分分离纯化
  • 1.4.5 清热解毒有效成分稳定性的研究
  • 1.5 本章小结
  • 2 绿豆提取液的制备
  • 2.1 引言
  • 2.2 实验仪器与材料
  • 2.2.1 主要实验仪器
  • 2.2.2 实验材料
  • 2.3 实验方法与步骤
  • 2.3.1 绿豆预处理
  • 2.3.2 提取液的制备
  • 2.3.3 工艺流程
  • 2.3.4 鲎试验
  • 2.3.5 不同的提取条件对提取效果的影响
  • 2.3.6 不同溶剂萃取物对内毒素的清除作用
  • 2.3.7 清除内毒素有效成分的初探
  • 2.4 结果与讨论
  • 2.4.1 内毒素标准曲线的绘制
  • 2.4.2 不同提取条件对提取效果的影响
  • 2.4.3 不同溶剂萃取物对内毒素的清除作用
  • 2.4.4 绿豆提取物成分的定性测定结果
  • 2.5 本章小结
  • 3 绿豆正丁醇萃取物抑菌作用研究
  • 3.1 引言
  • 3.2 实验仪器与材料
  • 3.2.1 仪器与设备
  • 3.2.2 主要实验材料
  • 3.3 实验方法及步骤
  • 3.3.1 培养基的制备
  • 3.3.2 菌悬液的制备
  • 3.3.3 滤纸片法测定抑菌效果
  • 3.3.4 绿豆提取物抑菌活性稳定性研究
  • 3.4 结果与讨论
  • 3.4.1 不同萃取物的抑菌效果
  • 3.4.2 不同浓度正丁醇萃取物对各个菌种的抑菌效果
  • 3.4.3 正丁醇萃取物的MIC测定结果
  • 3.4.4 正丁醇提取物抑菌稳定性试验
  • 3.4.5 热处理对抑菌效果的影响
  • 3.4.6 紫外线处理对抑菌效果的影响
  • 3.4.7 pH值对抑菌效果的影响
  • 3.5 本章小结
  • 4 绿豆正丁醇萃取物清热解毒作用研究
  • 4.1 前言
  • 4.2 实验仪器与材料
  • 4.2.1 主要实验仪器
  • 4.2.2 主要实验材料
  • 4.3 实验方法及步骤
  • 4.3.1 气相色谱法测定正丁醇残留
  • 4.3.2 正丁醇萃取物对对内毒素致小鼠死亡率的影响
  • 4.3.3 内毒素致小鼠死亡中血清、肝脏、脑中中SOD活力的测定
  • 4.3.4 内毒素致小鼠死亡中血清、肝脏、脑中中丙二醛(MDA)的测定
  • 4.3.5 正丁醇萃取物对内毒素致小鼠发热的解热试验
  • 4.3.6 数据处理及结果判定
  • 4.4 实验结果与分析
  • 4.4.1 气相色谱法测定正丁醇残留
  • 4.4.2 正丁醇萃取物对对内毒素致小鼠死亡率的影响
  • 4.4.3 内毒素致小鼠死亡中小鼠血清、肝脏、脑SOD活力的测定
  • 4.4.4 内毒素致小鼠死亡中血清、肝脏、脑中丙二醛(MDA)的测定
  • 4.4.5 正丁醇萃取物对内毒素致小鼠发热的解热试验
  • 4.5 本章小结
  • 5 绿豆正丁醇萃取物化学成分分离纯化
  • 5.1 引言
  • 5.1.1 柱层析
  • 5.1.2 薄层色谱
  • 5.2 实验仪器与材料
  • 5.2.1 实验仪器
  • 5.2.2 实验材料
  • 5.3 实验内容
  • 5.3.1 薄层层析分离正丁醇提取物的成分
  • 5.3.2 纯化路线
  • 5.3.3 硅胶柱层析分离正丁醇提取物的成分
  • 5.3.4 聚酰胺柱层析分离正丁醇组分
  • 5.3.5 TLC分离制备正丁醇组分
  • 5.3.6 各组分的紫外扫描图谱
  • 5.3.7 纯度的鉴定
  • 5.3.8 各组分的薄层检识
  • 5.4 结果与讨论
  • 5.4.1 硅胶柱层析分离正丁醇提取物的成分
  • 5.4.2 硅胶柱层析分离正丁醇提取物的成分
  • 5.4.3 聚酰胺柱层析分离正丁醇组分
  • 5.4.4 TLC分离制备正丁醇组分
  • 5.4.5 各组分的紫外扫描图谱
  • 5.4.6 纯度的测定
  • 5.4.7 薄层检识
  • 5.5 本章小结
  • 6 清热解毒有效成分稳定性的研究
  • 6.1 引言
  • 6.2 实验仪器与材料
  • 6.2.1 实验仪器
  • 6.2.2 实验材料
  • 6.3 实验方法与步骤
  • 6.3.1 各组分标准曲线的测定
  • 6.3.2 微生物限量的测定
  • 6.3.3 各组分稳定性试验
  • 6.4 实验结果与分析
  • 6.4.1 各组分的标准曲线
  • 6.4.2 湿度对稳定性的影响
  • 6.4.3 温度对稳定性的影响
  • 6.4.4 紫外线照射试验
  • 6.4.5 pH试验
  • 6.5 本章小结
  • 结论
  • 参考文献
  • 攻读学位期间发表的学术论文
  • 致谢
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