论文摘要
分泌型IgA是人体合成分泌最多的免疫球蛋白,主要存在于泪液、唾液、初乳、胃肠液等外分泌液中,是粘膜局部免疫的最重要因素。分泌型IgA主要由黏膜中的IgA浆细胞分泌,受神经、内分泌、和免疫系统的调节,能够抑制细菌黏附黏膜表面,中和肠道内的毒素、酶和病毒,降低病毒与黏膜的接触,另外对肠道菌群中的革兰氏阴性杆菌具有特殊的亲和力,同时具有对嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞脱颗粒作用和ADCC作用。本研究通过基因工程技术克隆分泌片基因,表达分泌片蛋白,将其制备成单克隆抗体,为建立检测SIgA试剂盒奠定基础。以真核表达质粒为模板,通过PCR扩增出SC基因,将SC基因克隆到原核表达载体PQE80L中,将其转化入大肠杆菌T1, PCR和双酶切鉴定转化菌落,再将质粒转入表达感受态BL21(DE3),经IPTG诱导,SDS-PAGE分析靶蛋白的表达,用Ni-NTA柱亲和层析法纯化目的蛋白。用纯化后的蛋白免疫BALB/c小鼠,间接ELISA测定效价,然后与SP2/0瘤细胞融合,经过亚克隆筛选,得到抗SC的单克隆抗体,Western Blot检测抗体。本研究扩增了SC基因,成功构建了其原核表达质粒pQE80L-SC, SDS-PAGE分析蛋白大小为70kd,与理论值一致。使用纯化后的蛋白免疫小鼠,得到高效价的多克隆血清,将小鼠脾细胞与SP2/0瘤细胞融合,筛选到2株分泌单克隆抗体的细胞株。
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