论文摘要
马铃薯(Solanum tuberosum L.)是世界上重要的粮菜兼用型作物,在人们的日常生活和国民经济中起着举足轻重的作用。在目前马铃薯生产中,病虫害等问题严重限制了马铃薯产业的发展。同时,市场对马铃薯品质的要求也越来越高,加工型品种的匮乏给马铃薯育种工作提出了新的课题。由于马铃薯栽培种具有同源四倍体遗传分离复杂的特点,所以用常规育种的手段很难在较短时间内育成优良品种。利用转基因技术可以将有价值的基因转入现有的优良品种中,不改变现有品种本身所特有的优良性状,在较短的时间内获得有价值的育种新材料。本研究采用农杆菌介导的遗传转化技术主要开展两方面的研究工作:一是将淀粉合成过程中的关键酶基因glgC导入马铃薯栽培品种,获得转基因植株;二是将诱导非寄主过敏性反应的hrp基因导入马铃薯中,验证调控元件马铃薯损伤诱导型启动子Wun1和Me13’增强子在广谱抗病策略中的可行性,获得转基因植株并进行检测。在遗传转化过程中,首先对受体再生系统建立进行了研究。选用试管苗茎段、叶片作为外植体材料,以MS为基本培养基成分,对生长激素的浓度和配比进行优化组合,筛选出有利于受体材料的高效培养基配方。最终确定出有利于茎段和叶片愈伤诱导的培养基为:MS+6-BA2.5mg/L+2,4-D0.6mg/L,诱愈率可达100%;有利于芽分化的培养基为:MS+6-BA2.5mg/L+IAA0.25mg/L +2,4-D0.25mg/L,出芽率可达65.33%。随后通过外植体材料生长状态、Kan敏感性、预培养时间、农杆菌浓度、浸染时间、共培养时间等对转化的影响研究,建立和优化了转化体系。总体来讲,在1/2 MS(大量元素减半)附加3%蔗糖的液体培养基上生长的材料的茎段为最佳外植体,通过Kan敏感性试验,确定了使用75 mg/L Kan作为转化茎段愈伤诱导过程适宜选择压力,在转化苗生根诱导培养中,使用50mg/L Kan进行选择比较适合。愈伤组织发生到出芽阶段的Kan25、50、75 mg/L的逐步增加浓度筛选及生根阶段的Kan25、50mg/L的筛选有效地减少了后期鉴定的工作量,获得了较高的转化率。茎段预培养2天,抗性愈伤诱导率达到48.24%;农杆菌浓度在OD600为0.5,侵染时间为8min时,抗性愈伤生长状态最好,抗性愈伤成功率最高(可达84.15%);共培养时间以3d时转化效果较好,出愈率可达83.5%。在优化转化体系建立的前提下,以三个马铃薯四倍体栽培品种陇薯3号、甘农薯2号和台湾红皮试管苗茎段为受体材料,分别用块茎特异性表达启动子驱动的glgC基因
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中文摘要Abstract缩略语表第一章 文献综述1 马铃薯遗传转化研究进展1.1 马铃薯转化的再生系统及靶组织的选择1.1.1 愈伤组织再生系统1.1.2 直接分化再生系统1.1.3 原生质体再生系统1.2 马铃薯遗传转化的方法1.2.1 农杆菌介导的遗传转化1.2.1.1 农杆菌-植物间基因转移的分子基础1.2.1.2 农杆菌介导基因转化的方法1.2.1.3 马铃薯基因工程中农杆菌介导的遗传转化1.2.2 基因枪法遗传转化1.2.3 微束激光穿刺转化法1.2.4 PEG 介导法1.2.5 超声波介导法1.3 转基因植物中的标记基因1.3.1 植物遗传转化中常用的标记基因1.3.2 标记基因的安全性问题1.3.3 转基因作物中标记基因的消除1.3.4 目标基因及其产物的安全性问题1.3.5 外源基因在转基因后代中的整合、表达和遗传1.3.5.1 外源基因在植物体内的整合1.3.5.2 转基因植株的遗传行为1.3.6 转基因沉默及对策1.3.7 转基因植物的商业化生产2 基因工程技术在马铃薯遗传改良上的应用2.1 马铃薯淀粉基因工程2.1.1 淀粉在食品及其它工业中的应用2.1.2 淀粉的生物合成2.1.3 ADPG 焦磷酸化酶基因研究与马铃薯高淀粉基因工程2.1.3.1 AGPase 的功能2.1.3.2 AGPase 的定位2.1.3.3 AGPase 的酶学2.1.3.4 AGPase 的分子生物学2.1.3.5 基因工程提高淀粉含量2.2 马铃薯抗病基因工程及广谱抗病策略的应用2.2.1 过敏反应2.2.2 hrp 基因与抗病的研究应用2.2.2.1 hrp 基因的遗传组成2.2.2.2 hrp 基因结构和功能保守性2.2.2.3 hrp 基因的表达和调控2.2.2.4 hrp 基因产物及其功能2.2.2.5 hrp 基因与马铃薯广谱抗病基因工程3 本研究的目的意义第二章 马铃薯再生体系的建立1 材料与方法1.1 材料1.1.1 植物材料1.1.2 植物培养基1.2 方法1.2.1 外植体材料的准备1.2.1.1 马铃薯无菌苗的快繁1.2.1.2 马铃薯试管苗的复壮1.2.2 再生体系的建立1.2.2.1 茎段和叶片的再生和培养基筛选1.2.2.2 芽的分化1.2.2.3 外植体创伤方式与愈伤的发生2 结果与分析2.1 茎段、叶片愈伤组织的发生2.2 芽的分化2.3 外植体创伤方式与愈伤的发生3 讨论第三章 农杆菌介导马铃薯遗传转化体系的优化研究1 材料和方法1.1 材料1.1.1 植物材料1.1.2 农杆菌菌株与质粒1.1.3 抗生素、选择试剂及其浓度设置1.2 方法1.2.1 转化方法1.2.1.1 农杆菌工程菌的培养和活化1.2.1.2 外植体的预培养1.2.1.3 外植体的转化1.2.1.4 转化体的筛选和抗性芽的获得1.2.2 遗传转化体系的优化1.2.2.1 植物材料的生长状态对遗传转化的影响1.2.2.2 受体材料Kan 选择压力的确定1.2.2.2.1 对愈伤形成的选择压力1.2.2.2.2 对生根的选择压力1.2.2.3 茎段和叶片遗传转化的效果比较1.2.2.4 工程菌浓度及侵染时间对遗传转化的影响1.2.2.5 预培养时间对遗传转化的影响1.2.2.6 共培养时间对遗传转化的影响1.2.2.7 抗生素的抑菌试验1.2.2.8 梯度筛选对遗传转化的影响2 结果与分析2.1 植物材料的生理状态对遗传转化的影响2.2 受体材料Kan 适合选择压力2.2.1 愈伤诱导过程中Kan 适合浓度2.2.2 生根过程中Kan 适合浓度2.3 茎段与叶片遗传转化效果比较2.4 工程菌浓度及侵染时间对遗传转化的影响2.5 预培养时间对遗传转化的影响2.6 共培养时间对遗传转化的影响2.7 抗生素的抑菌效果及对遗传转化的影响2.8 梯度筛选对遗传转化的影响3 讨论3.1 关于马铃薯基因转化受体系统的建立3.2 菌种的活力对遗传转化的影响3.3 农杆菌与再生之间的矛盾及农杆菌污染问题3.4 农杆菌与外植体的共培养3.5 抗生素对转化的影响3.6 转化中采用两阶段选择培养的意义第四章 glgC 基因的导入与转基因植株的鉴定1 材料与方法1.1 材料1.1.1 植物材料与繁殖1.1.2 农杆菌菌株及质粒1.1.3 酶和试剂1.1.4 主要培养基的配制1.2 方法1.2.1 质粒的PCR 鉴定1.2.1.1 农杆菌质粒DNA 提取(碱裂解法)1.2.1.2 PCR 鉴定1.2.2 转glgC 基因马铃薯的培育1.2.3 转基因马铃薯植株PCR 检测1.2.3.1 马铃薯叶片总DNA 提取(SDS 法)1.2.3.2 转化植株PCR 检测1.2.4 转化植株总DNA 的Southern 检测1.2.5 转基因植株的RT-PCR 检测1.2.5.1 转基因植株微型薯的获得1.2.5.2 马铃薯块茎总RNA 的提取1.2.5.3 转基因植株RT-PCR 检测1.2.6 转基因植株AGPase 酶活性、淀粉和还原糖的提取与测定1.2.6.1 AGPase 的提取和活性测定1.2.6.2 淀粉提取与含量测定1.2.6.3 还原糖含量测定2 结果与分析2.1 质粒的PCR 鉴定2.2 转基因马铃薯植株再生2.3 转基因植株PCR 鉴定2.4 转基因马铃薯Southern 杂交鉴定2.5 转基因植株的RT-PCR 检测2.6 转基因马铃薯块茎AGPase 活性、淀粉和还原糖含量测定分析3 讨论第五章 hrp 基因的导入与转基因植株的鉴定1 材料与方法1.1 材料1.1.1 植物材料与繁殖1.1.2 农杆菌菌株及质粒1.1.3 酶和试剂1.2 方法1.2.1 质粒的PCR 鉴定1.2.2 马铃薯遗传转化和植株再生1.2.3 转基因马铃薯植株PCR 检测1.2.4 转基因马铃薯的Southern 杂交检测1.2.5 转基因植株的RT-PCR 检测1.2.5.1 马铃薯叶片总RNA 的提取1.2.5.2 转基因植株RT-PCR 检测1.2.6 转hrp 基因植株抗病性测定1.2.6.1 P.infestans 接种物制备1.2.6.2 Erwinia persicinus 接种物制备1.2.6.3 接种方法1.2.6.4 病斑生长速率(Lesion Growth Rate,LGR)测量、记录及统计分析2 结果与分析2.1 质粒的PCR 鉴定2.2 转基因马铃薯植株再生2.3 转基因植株PCR 鉴定2.4 转基因马铃薯Southern 杂交鉴定2.5 转基因植株的 RT-PCR 检测2.6 转基因植株抗病性测定3 讨论第六章 讨论1 马铃薯遗传转化中的几个问题2 AGPase 基因与马铃薯高淀粉育种3 拟过敏性反应与马铃薯广谱抗病育种4 马铃薯基因工程尚存的不足结 论图 版 Ⅰ图 版 Ⅱ图 版 Ⅲ图 版 说 明参考文献附录 博士在读期间发表论文致 谢导师简介作者介绍
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标签:马铃薯论文; 遗传转化论文; 淀粉论文; 基因论文; 广谱抗病论文;
利用转基因技术培育马铃薯(Solanum tuberosum L.)高淀粉及抗病新品系
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