
论文摘要
本文以金龟子绿僵菌蝗变种(Metarhizium anisopliae var. acridum )CQMa102菌株为研究材料,用酪蛋白从液体培养基中诱导出一条pI为9.45的磷酸酶,纯化后酶特性研究表明是一种嗜热酶。该酶的氨基酸序列分析表明其与真菌碱性磷酸酶同源,但其底物特异性、酶抑制剂的专一敏感性和含有酪氨酸蛋白磷酸酶的标志序列证明这是一个新的酪氨酸蛋白磷酸酶。而且,该酶在体外能改变其寄主(蝗虫)血淋巴中与信号传导相关的蛋白(Toll-like receptor)的磷酸化状态,进而可能干涉寄主体内免疫活动,这为设计和改造新的真菌杀虫剂提供一种新的技术途径,具有重要的理论与应用价值。全文的主要结论如下:一、发酵条件研究采用单因子实验分析培养条件对绿僵菌生长及产酸性磷酸酶的影响,结果表明,有机氮、葡萄糖和蛋白有机磷有利于绿僵菌生长和产酸性磷酸酶。酸性磷酸酶同工酶分析表明,酪蛋白作为磷源培养绿僵菌时,有一条比较特别的磷酸酶带出现,其pI为9.45,明显不同于其他磷源。因此,我们选择了这条磷酸酶带为我们纯化的目标。根据实验结果确定了纯化目标蛋白的培养条件为:葡萄糖,20g/L;(NH4)2SO4,2g/L;酪蛋白,4g/L;KCl,0.5g/L;MgSO4,0.5g/L;微量元素混合液,10ml/L;接种量,1×107孢子/100ml培养基;装液量,100ml;10g/LMES,pH 6.0;在27°C条件下振荡(160rpm)培养78h。二、蛋白纯化及特性研究培养液经过ConA-Sepharose亲和层析、HighQ阴离子交换层析和25S阳离子交换层析后,得到均一性好,纯度高的目标蛋白,回收率达41%。电泳法测定蛋白的pI为9.45,分子量为82.5kDa,用TMSF去糖基后表观分子量为69kDa,因此该蛋白含碳水化合物16.4%。酶底物特异性研究表明该磷酸酶对磷酸酪氨酸残基底物专一性强,而且丝氨酸/苏氨酸蛋白磷酸酶抑制剂(EDTA、NaF和冈田酸)、酸性磷酸酶抑制剂(EDTA、酒石酸钠)和碱性磷酸酶抑制剂(EDTA)对酶酶解pNPP和O-phospho-L-tyrosine活性没有明显的抑制作用;但酪氨酸蛋白磷酸酶抑制剂(钼酸钠、原钒酸钠、N-乙基马来酰亚胺和钨酸钠)显著抑制酶对O-phospho-L-tyrosine的酶解活性,因此该磷酸酶应该是酪氨酸蛋白磷酸酶。该酶的最适作用温度大约是75°C,最适pH是5.5,热稳定性及pH稳定性好。除Ni2+外,Ca2+、Co2+、Mg2+、Zn2+、Fe2+、Mn2+和Ba2+在5mM以上都明显抑制酶降解pNPP的活性。Zn2+、Fe2+、Cu2+和Ag+显著抑制酶水解O-phospho-L-tryosine的活
论文目录
中文摘要英文摘要1 绪论1.1 虫生真菌的侵染循环1.2 绿僵菌杀虫机理研究进展1.2.1 绿僵菌对寄主的识别与粘附1.2.2 绿僵菌侵入寄主机理1.2.3 绿僵菌进入寄主体内后的作用机制1.3 磷酸酶研究现状1.3.1 碱性磷酸酶1.3.2 酸性磷酸酶1.3.3 丝氨酸/苏氨酸蛋白磷酸酶1.3.4 酪氨酸蛋白磷酸酶(Protein tyrosine phosphatases, PTPs, EC3.1.3.48)1.3.5 磷酸酶在病原菌侵入寄主中的作用1.4 本研究的目的意义1.5 研究内容及技术路线1.5.1 主要研究内容1.5.2 研究的技术路线1.6 本文的创新点2 培养条件对绿僵菌产胞外磷酸酶的影响2.1 引言2.2 材料与方法2.2.1 实验菌株及基本培养基2.2.2 主要仪器设备2.2.3 主要溶液及配制2.2.4 供试菌株培养及分生孢子悬浮液的制备2.2.5 酸性磷酸酶活性测定方法2.2.6 绿僵菌生物量测定方法2.2.7 培养条件对绿僵菌产酸性磷酸酶和生物量的影响2.2.8 粗酶液的制备及蛋白浓度的测定2.2.9 垂直等电聚焦电泳及酸性磷酸酶同工酶分析2.2.10 粗酶液的酸性磷酸酶活性的热稳定性2.3 结果与分析2.3.1 培养基pH、绿僵菌接种孢子浓度和通气效率对绿僵菌产酸性磷酸酶和生物量的影响2.3.2 不同碳源和氮源对绿僵菌产酸性磷酸酶和生物量的影响2.3.3 无机磷不同起始浓度对绿僵菌产酸性磷酸酶和生物量的影响2.3.4 不同磷源对绿僵菌产酸性磷酸酶及生物量的影响2.3.5 在优化培养条件下绿僵菌生长及酸性磷酸酶活性随培养时间的动态变化2.3.6 温度对粗酶液中磷酸酶活性的影响2.4 问题与讨论2.4.1 当用酵母膏、蛋白胨和牛肉浸膏培养时蛋白酶活性高,而用酪蛋白培养时产生的蛋白酶活性很低,甚至比只用低无机磷培养时还低2.4.2 绿僵菌在不同磷源条件下产生不同的磷酸酶2.4.3 在粗酶液的热稳定性实验中,粗酶液中的有部分酸性磷酸酶活性在20℃ 的条件下也很快丧失2.4.4 粗酶液在60℃、70℃ 和75℃ 水浴过程中,从15min 到225min 期间,酸性磷酸酶的活性持续上升。而在50℃ 水浴时,酶活性从225min 才开始上升2.5 本章小结3 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶的纯化及其特性研究3.1 引言3.1.1 蛋白分离纯化及特性研究的目的意义3.1.2 蛋白分离纯化常用的方法与策略3.1.3 本实验的原则和纯化技术路线3.2 材料与方法3.2.1 实验菌株及培养条件3.2.2 主要仪器设备3.2.3 主要试剂3.2.4 主要溶液及配制3.2.5 酸性磷酸酶活性及酪氨酸蛋白磷酸酶活性分析测定3.2.6 待纯化样品的制备3.2.7 ConA-Sepharose 48 亲和层析3.2.8 离子交换层析3.2.9 天然等电聚焦凝胶电泳(IEF-PAGE)及磷酸酶等电点(pI)测定3.2.10 天然聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)和SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) 及表观分子量的测定3.2.11 磷酸酶特性研究3.3 结果与分析3.3.1 酶的纯化3.3.2 酶纯度鉴定和酶分子量及等电点测定3.3.3 酶的底物特异性3.3.4 酶的最适温度及其热稳定性分析3.3.5 金龟子绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶的最适pH 及其pH 稳定性分析3.3.6 酶的动力学特性——米氏常数(Km)分析3.3.7 磷酸酶特异抑制剂对酶活性的影响3.3.8 金属离子对酶活性的影响3.3.9 无机磷对酶活性的反馈抑制3.3.10 酶的糖基含量分析3.4 问题与讨论3.4.1 蛋白分离纯化策略的制定3.4.2 酶蛋白纯度的鉴定3.4.3 磷酸酶的类型确定3.4.4 酶的热稳定性3.5 本章小结4 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶的基因克隆及分析4.1 引言4.1.1 基因克隆的意义4.1.2 基因克隆常用方法4.1.3 本实验克隆绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶的基因的技术路线4.2 材料与方法4.2.1 主要仪器设备4.2.2 主要质粒、试剂及培养基4.2.3 主要溶液及配制4.2.4 酶蛋白的鉴定4.2.5 绿僵菌总DNA 提取分离、定量及检测4.2.6 绿僵菌全基因组文库的构建4.2.7 大肠杆菌(JM109)感受态的制备及转化4.2.8 PCR 产物的琼脂糖凝胶回收4.2.9 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶基因的文库筛选4.2.10 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶基因的cDNA 克隆4.2.11 引物合成及核酸序列测定4.2.12 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶基因及氨基酸序列特性分析4.3 结果与分析4.3.1 酪氨酸蛋白磷酸酶的肽质量指纹分析图谱及其搜索比对结果4.3.2 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶的多肽de novo 测序4.3.3 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶基因PCR 扩增4.3.4 酪氨酸蛋白磷酸酶基因的3’-RACE 和5’-RACE cDNA 序列克隆4.3.5 金龟子绿僵菌基因组文库的构建及其质量评估4.3.6 绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶基因的文库筛选4.3.7 蛋白氨基酸序列相似性及其糖基化、磷酸化位点等性质分析4.4 问题与讨论4.4.1 未知蛋白的鉴定4.4.2 该磷酸酶基因克隆中的问题与方法4.4.3 酪氨酸蛋白磷酸酶基因序列分析4.5 本章小结5 蝗虫血淋巴中绿僵菌 PTPase 的靶标分析5.1 引言5.2 材料与方法5.2.1 东亚飞蝗5.2.2 主要仪器设备5.2.3 主要试剂及配制5.2.4 蝗虫血淋巴的收集5.2.5 蝗虫血浆的磷酸化蛋白的亲和层析5.2.6 蛋白浓度的测定5.2.7 蝗虫血淋巴与纯化的PTPase 作用5.2.8 双向电泳5.2.9 PDQUEST 软件分析蛋白差异点5.2.10 肽指纹图谱分析5.3 结果与分析5.3.1 凝胶图谱匹配性分析5.3.2 凝胶图谱重复性分析5.3.3 磷酸化蛋白差异点分析5.3.4 差异点蛋白MALDI-TOF-MS 质谱分析及比对结果5.4 讨论6 主要研究结论及后续研究建议6.1 主要研究结论6.1.1 培养基pH、孢子接种浓度、通气效率不同的氮源和碳源及磷源对绿僵菌生长及产酸性磷酸酶都有很大影响6.1.2 蛋白纯化及特性研究6.1.3 酪氨酸蛋白磷酸酶基因克隆及分析6.1.4 蝗虫血淋巴中绿僵菌PTPase 的靶标分析6.2 后续工作建议致谢参考文献附录:作者在攻读博士学位期间论文发表的论文目录独创性声明学位论文版权使用授权书
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一种新的金龟子绿僵菌酪氨酸蛋白磷酸酶的纯化、特性及基因克隆
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