辅酶Q10纳米脂质体的应用及辅酶Q10前体脂质体的研究

辅酶Q10纳米脂质体的应用及辅酶Q10前体脂质体的研究

论文摘要

辅酶Q10是生物体内广泛存在的脂溶性醌类化合物,对缓解体力疲劳、抗氧化、提高机体免疫力有着特殊意义。以脂质体作为输送系统是改善辅酶Q10等亲脂性营养物的水溶性并提高其口服生物利用度的有效途径,可作为营养强化剂添加到运动饮料中,充分发挥其生物效应。采用冷冻干燥法制备的辅酶Q10前体脂质体能进一步提高辅酶Q10脂质体的长期贮存稳定性。本论文研究了辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的稳定性并选择合适的超高压杀菌条件;采用动物试验评价其抗疲劳效果;并进一步研究了辅酶Q10前体脂质体的冷冻干燥工艺、冻干保护剂、配方及贮存稳定性。研究辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的稳定性并优化超高压杀菌条件。通过响应面分析确定在温度为20~25℃时超高压杀菌的最优工艺参数为:压力394 MPa,保压时间8.44 min。高压处理后该饮料中菌落总数低于10 cfu/mL,其中辅酶Q10纳米脂质体平均粒径仍可维持在100 nm以下,包封率在90%以上,4℃贮存6个月后辅酶Q10的保留率可维持在90%以上。通过动物试验评价辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的抗疲劳作用,同时研究了采用纳米脂质体作为载体输送的辅酶Q10在小鼠血浆、肝脏和心脏组织中的分布。该运动饮料能延长小鼠负重游泳时间,维持游泳小鼠肝糖原水平,抑制蛋白质分解,降低血清中血乳酸含量,并显著提高血清中超氧化物歧化酶活力(P<0.05),降低血清中丙二醛含量(P<0.05),从而延缓疲劳的产生或有助于运动后疲劳的消除。以纳米脂质体为输送系统具有肝脏被动靶向性,有效提高了辅酶Q10在小鼠肝脏中的蓄积量(5.56±0.90μg/g,P<0.05)。为提高辅酶Q10脂质体的长期贮存稳定性,采用冷冻干燥法成功研制了具有良好复水特性的辅酶Q10前体脂质体。对其冻干工艺进行了优化,确定冻干最优工艺为:-70℃快速预冻,保持24h;冷冻干燥参数为-30℃22h,-10℃10h,-4℃5h,25℃3h,(升温速率1.5℃/min)。初步选择蔗糖、海藻糖、甘露醇、乳糖等作为冻干保护剂,比较冻干后辅酶Q10前体脂质体的形态及复水后形成的辅酶Q10脂质体的平均粒径和包封率。确定最优保护剂为海藻糖,浓度为20%(w/v),与卵磷脂质量比为4︰1。确定用于冻干的辅酶Q10脂质体配方为辅酶Q10/蛋黄磷脂/胆固醇/吐温80=0.47︰2.5︰0.4︰1.8(w/w),水化介质为磷酸盐缓冲液(pH 7.4,0.01 mol/L)。采用冷冻干燥法制得的辅酶Q10前体脂质体呈淡黄色均匀饼状,水分散性好,于室温干燥条件贮存6个月,复水后得到的辅酶Q10脂质体包封率达85%以上,平均粒径为255 nm,且在复水后24 h内稳定。红外光谱分析表明海藻糖与磷脂P=O基团之间形成较强的氢键作用,初步认为保护剂的作用机制与“水代替假说”相符。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第一章 绪论
  • 10'>1.1 辅酶Q10
  • 10 简介'>1.1.1 辅酶Q10简介
  • 10 的生理功能'>1.1.2 辅酶Q10的生理功能
  • 10 的应用'>1.1.3 辅酶Q10的应用
  • 10 的量和安全性'>1.1.4 人体需要辅酶Q10的量和安全性
  • 1.2 脂质体技术
  • 1.2.1 脂质体简介
  • 1.2.2 前体脂质体简介
  • 1.2.3 脂质体冷冻干燥技术
  • 1.2.4 脂质体杀菌技术
  • 1.3 超高压杀菌技术
  • 1.3.1 原理
  • 1.3.2 特点及应用
  • 1.4 国内外研究现状
  • 10 的开发应用'>1.4.1 水溶性辅酶Q10的开发应用
  • 10 脂质体'>1.4.2 辅酶Q10脂质体
  • 10 前体脂质体'>1.4.3 辅酶Q10前体脂质体
  • 1.5 立题背景和意义
  • 1.6 主要研究内容
  • 10纳米脂质体强化运动饮料稳定性和超高压杀菌条件的研究'>第二章 辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料稳定性和超高压杀菌条件的研究
  • 2.1 前言
  • 2.2 材料与设备
  • 2.2.1 材料
  • 2.2.2 主要设备
  • 2.3 实验方法
  • 10 纳米脂质体的制备'>2.3.1 辅酶Q10纳米脂质体的制备
  • 10 含量的测定'>2.3.2 游离辅酶Q10含量的测定
  • 10 总含量的测定'>2.3.3 辅酶Q10总含量的测定
  • 10 纳米脂质体包封率、保留率和载量的计算'>2.3.4 辅酶Q10纳米脂质体包封率、保留率和载量的计算
  • 10 纳米脂质体粒径的测定'>2.3.5 辅酶Q10纳米脂质体粒径的测定
  • 2.3.6 Zate 电位的测定
  • 10 纳米脂质体强化运动饮料的制备工艺'>2.3.7 辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的制备工艺
  • 2.3.8 贮存稳定性测定
  • 2.3.9 超高温瞬时杀菌工艺
  • 2.3.10 超高压杀菌工艺
  • 2.3.11 运动饮料菌落总数的测定
  • 2.3.12 薄层色谱法分析磷脂
  • 2.3.13 液质联用分析磷脂水解产物
  • 2.4 结果与讨论
  • 10 纳米脂质体的包封率、平均粒径及Zate 电位'>2.4.1 辅酶Q10 纳米脂质体的包封率、平均粒径及Zate 电位
  • 10 纳米脂质体强化运动饮料的物理稳定性'>2.4.2 不同贮存条件下辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料的物理稳定性
  • 2.4.3 超高温瞬时杀菌
  • 2.4.4 超高压杀菌工艺条件的确定
  • 2.4.5 避光冷藏条件下运动饮料的贮存稳定性
  • 2.4.6 运动饮料中磷脂的化学稳定性
  • 2.5 小结
  • 10纳米脂质体强化运动饮料对小鼠的抗疲劳作用'>第三章 辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料对小鼠的抗疲劳作用
  • 3.1 前言
  • 3.2 材料与设备
  • 3.2.1 材料
  • 3.2.2 主要设备
  • 3.2.3 实验动物及饲料
  • 3.2.4 实验制剂制备方法
  • 3.3 实验方法
  • 3.3.1 受试小鼠分组与灌胃剂量
  • 3.3.2 运动耐力试验
  • 3.3.3 肝糖原、血清尿素氮含量、血清中SOD 活力及MDA 含量的测定
  • 3.3.4 血乳酸含量变化的测定
  • 10 及辅酶Q9 含量的测定'>3.3.5 血浆、心脏和肝脏中辅酶Q10 及辅酶Q9 含量的测定
  • 10'>3.3.6 液质联用(HPLC/ESI-MS)鉴定肝脏中的辅酶Q10
  • 3.3.7 实验数据统计分析
  • 3.4 结果与讨论
  • 10 纳米脂质体强化运动饮料对小鼠体重的影响'>3.4.1 辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料对小鼠体重的影响
  • 10 纳米脂质体强化运动饮料对小鼠运动耐力与生化指标的影响'>3.4.2 辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料对小鼠运动耐力与生化指标的影响
  • 10 纳米脂质体强化运动饮料对SOD 活力和MDA 含量的影响'>3.4.3 辅酶Q10 纳米脂质体强化运动饮料对SOD 活力和MDA 含量的影响
  • 10 的RP-HPLC 分析'>3.4.4 血浆及组织中辅酶Q9 和辅酶Q10 的RP-HPLC 分析
  • 10 的HPLC/ESI-MS 鉴定'>3.4.5 肝脏中辅酶Q10 的HPLC/ESI-MS 鉴定
  • 10纳米脂质体强化运动饮料对血浆及组织中辅酶Q10及辅酶Q9含量的影响'>3.4.6 辅酶Q10纳米脂质体强化运动饮料对血浆及组织中辅酶Q10及辅酶Q9含量的影响
  • 3.5 小结
  • 10前体脂质体的制备及其性质'>第四章 辅酶Q10前体脂质体的制备及其性质
  • 4.1 前言
  • 4.2 材料与设备
  • 4.2.1 材料
  • 4.2.2 主要设备
  • 4.3 实验方法
  • 10 前体脂质体的制备'>4.3.1 辅酶Q10前体脂质体的制备
  • 10 脂质体包封率、保留率和载量的测定'>4.3.2 辅酶Q10脂质体包封率、保留率和载量的测定
  • 10 脂质体粒径的测定'>4.3.3 辅酶Q10脂质体粒径的测定
  • 10 脂质体的差示扫描量热分析'>4.3.4 辅酶Q10脂质体的差示扫描量热分析
  • 10 前体脂质体水分含量的测定'>4.3.5 辅酶Q10前体脂质体水分含量的测定
  • 4.3.6 脂质体氧化指数的测定
  • 4.3.7 傅里叶红外光谱(FTIR)分析
  • 10 脂质体表观形貌的观察'>4.3.8 辅酶Q10脂质体表观形貌的观察
  • 10 前体脂质体超微结构的观察'>4.3.9 辅酶Q10前体脂质体超微结构的观察
  • 10 前体脂质体复水后超微结构的观察'>4.3.10 辅酶Q10前体脂质体复水后超微结构的观察
  • 10 前体脂质体的贮存稳定性测定'>4.3.11 辅酶Q10前体脂质体的贮存稳定性测定
  • 4.4 结果与讨论
  • 4.4.1 冷冻干燥工艺的确定
  • 4.4.2 冻干保护剂的选择
  • 10 脂质体配方的确定'>4.4.3 辅酶Q10脂质体配方的确定
  • 10 前体脂质体复水后平均粒径的影响'>4.4.4 超声破碎对辅酶Q10前体脂质体复水后平均粒径的影响
  • 4.4.5 磷脂的氧化指数
  • 10 前体脂质体的FTIR 分析'>4.4.6 辅酶Q10 前体脂质体的FTIR 分析
  • 10 前体脂质体的超微结构'>4.4.7 辅酶Q10前体脂质体的超微结构
  • 10 前体脂质体复水后的性质'>4.4.8 辅酶Q10前体脂质体复水后的性质
  • 10 前体脂质体的贮存稳定性'>4.4.9 辅酶Q10前体脂质体的贮存稳定性
  • 4.5 小结
  • 主要结论
  • 致谢
  • 参考文献
  • 附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文
  • 相关论文文献

    • [1].伊曲康唑柔性脂质体的制备及体外性能研究[J]. 中国药师 2020(05)
    • [2].3种不同溶媒介质脂质体的制备及其初步稳定性考察[J]. 中国药师 2018(05)
    • [3].多功能复合载药脂质体的制备方法及性能[J]. 化工进展 2016(S2)
    • [4].醋酸地塞米松脂质体滴眼液的制备[J]. 中南药学 2017(02)
    • [5].脂质体与细胞相互作用的研究进展[J]. 泸州医学院学报 2016(01)
    • [6].乙醇对脂质体膜的影响[J]. 民营科技 2015(01)
    • [7].中药脂质体应用研究进展[J]. 河南中医 2015(09)
    • [8].多肽诱导的巨型脂质体出芽和泄露行为[J]. 物理化学学报 2015(10)
    • [9].扇贝多肽脂质体凝胶的制备及体外透皮研究[J]. 药学与临床研究 2013(06)
    • [10].叶黄素口服脂质体的制备[J]. 黑龙江畜牧兽医 2013(21)
    • [11].共载多西他赛和维拉帕米脂质体逆转肿瘤耐药性的研究[J]. 药学学报 2020(05)
    • [12].脂质体技术在皮肤递药系统中的应用研究[J]. 现代医学与健康研究电子杂志 2020(02)
    • [13].花青素脂质体的修饰及体外稳定性[J]. 食品科技 2018(01)
    • [14].透明质酸修饰的绿原酸脂质体的制备及细胞学研究[J]. 重庆医学 2018(04)
    • [15].多肽修饰的pH敏感脂质体研究进展[J]. 中国药学杂志 2018(11)
    • [16].蛇床子素脂质体凝胶剂的制备及其体外透皮试验的初步研究[J]. 广东药学院学报 2016(01)
    • [17].山楂叶提取物类脂质体的制备工艺研究[J]. 食品科技 2014(12)
    • [18].盐酸罗哌卡因多囊脂质体含量及包封率测定[J]. 中国药师 2015(01)
    • [19].复方鸦胆子油脂质体的制备工艺研究[J]. 山西中医学院学报 2013(05)
    • [20].芒果苷脂质体的理化性质和体外经皮渗透性能的研究[J]. 现代药物与临床 2014(02)
    • [21].多囊脂质体在递药系统中的应用研究进展[J]. 中国药房 2014(37)
    • [22].脂质体镶囊的体内分布及载多柔比星镶囊的体外评价[J]. 中国药学杂志 2013(07)
    • [23].脂质体应用的研究进展[J]. 黑龙江畜牧兽医 2011(09)
    • [24].黄芪多糖脂质体对鸡淋巴细胞增殖的影响[J]. 南京农业大学学报 2011(04)
    • [25].高效液相色谱法测定奥硝唑脂质体凝胶的含量[J]. 中国医院药学杂志 2011(11)
    • [26].主动靶向脂质体药物的研究进展[J]. 医药导报 2010(06)
    • [27].中药脂质体研究进展[J]. 实用中医药杂志 2010(08)
    • [28].热敏脂质体的研究进展[J]. 药学进展 2010(09)
    • [29].脂质体技术在抗肿瘤药物开发中的应用[J]. 上海医药 2010(11)
    • [30].交错融合脂质体的制备[J]. 西南国防医药 2010(12)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  

    辅酶Q10纳米脂质体的应用及辅酶Q10前体脂质体的研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢