海洋细菌Cellulophaga sp.QY3ι-卡拉胶酶的研究

海洋细菌Cellulophaga sp.QY3ι-卡拉胶酶的研究

论文摘要

卡拉胶酶是一类能够专一性降解卡拉胶分子中β-1,4糖苷键的糖水解酶,根据其降解底物的不同主要分为κ-、ι-和λ-卡拉胶酶。根据序列和结构的特征,ι-卡拉胶酶被归属为糖水解酶82家族(GH82),目前已经发现了九种ι-卡拉胶酶,但只有四种进行了部分的性质研究。关于该家族酶的结构与功能研究目前还处于起步阶段,只有和催化相关的部分氨基酸残基有所报道。因此新ι-卡拉胶酶的发现和深入研究不仅可以丰富GH82家族ι-卡拉胶酶资源,而且对GH82家族酶的结构与功能阐释有重要意义。来自Cellulophaga sp. QY3的ι-卡拉胶酶CgiA的研究工作是在本实验室前期工作的基础上继续进行的。首先研究了CgiA降解不同类型底物的降解方式。CgiA降解非胶态底物时表现为随机内切酶的特点,而降解胶态底物时采用持续性降解的方式,在GH82家族的ι-卡拉胶酶中属于首次报道。其次,利用同源模建的方法获得了CgiA的三维结构。结合荧光辅助碳水化合物电泳分析表明,CgiA降解ι-卡拉胶的终产物为新ι-卡拉四糖和新ι-卡拉二糖,最小降解底物为新ι-卡拉六糖。该酶的催化腔大小为八(-4+4)六糖在催化腔中占据-4+2位点。利用序列标识图(sequence logo)的方式展示出GH82家族催化腔中与底物相距6以内的氨基酸残基。从GH82家族催化腔的保守分析可以明显看出催化腔-1和+1位点处的残基保守性高于其他位点。根据氨基酸残基的保守性及残基在结构中的空间位置,我们选择了六个位点(G228,Y229,R254,R314,K335和K480)进行突变实验。通过GH82家族多个底物结合位点的突变及性质比较,验证了功能残基的保守性与其重要性是正相关的。根据突变前后酶活力变化,米氏常数变化及高级结构分析,证明了催化腔-1,+1位点处G228, Y229,R254和R314是该酶与底物结合相关的残基。其中G228, Y229和R254在GH82家族中完全保守,因此推测它们为该家族最重要的与底物结合相关的残基。GH82家族最重要的两个底物结合残基(Y229和R254)是与底物的硫酸根直接作用的,推测这是该家族酶专一性降解ι-卡拉胶的关键。这是首次对GH82家族ι-卡拉胶酶的底物结合残基的研究,进一步阐释了该家族的底物专一性机制。接下来,利用简并PCR和Sitefinding PCR成功从Cellulophaga sp. QY3中克隆得到了一种新的ι-卡拉胶酶CgiB的编码序列。该基因含有一段长度为1383bp的ORF编码框,编码得到461aa的蛋白序列。CgiB归属于GH82家族,除了一个未进行表达和研究的序列,与其相似度最高的蛋白序列是来自Zobellia galactanovora DsiJT的CgiA2,相似度仅为32%。对重组酶CgiB的性质研究表明:该酶的最适反应条件为45℃、pH6.5磷酸盐缓冲液;在低于40℃条件下存放1h该酶还能保留70%的活性;在pH6.0-9.6的缓冲体系中存放较稳定;Na+和K+对酶活力有促进作用,CuCl2, SDS和EDTA都非常显著的抑制了酶活性,而一些二价金属离子,如Mg2+, Fe2+及Mn2+对酶活力有明显的促进。利用凝胶色谱分析酶解产物随时间的变化可知该酶是一种典型的内切酶,降解主产物四糖在终产物中约占80%。利用二级质谱技术鉴定出酶解主产物为新ι-卡拉四糖,表明该酶通过断裂卡拉胶分子中的β-1,4糖苷键实现对ι-卡拉胶的降解。CgiB具有与已报道的ι-卡拉胶酶不同的性质特点,不仅丰富了ι-卡拉胶酶的资源,而且对卡拉寡糖的制备和纯化具有重要意义。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 前言
  • 1 卡拉胶
  • 1.1 卡拉胶来源
  • 1.2 卡拉胶结构
  • 1.3 卡拉胶分类
  • 1.4 卡拉胶理化性质
  • 1.5 卡拉胶的应用价值
  • 2 卡拉胶寡糖
  • 2.1 卡拉胶寡糖的制备方法
  • 2.2 卡拉胶寡糖的分离纯化
  • 2.3 卡拉胶寡糖结构的鉴定方法
  • 2.4 卡拉胶寡糖的生物活性
  • 3 卡拉胶酶
  • 3.1 卡拉胶酶的来源
  • 3.2 卡拉胶酶的分类
  • 3.3 卡拉胶酶的应用
  • 4 蛋白质的结构与功能研究
  • 4.1 蛋白质的三维结构
  • 4.2 生物信息学手段在蛋白质结构和功能研究中的作用
  • 第一章 Cellulophaga sp. QY3 中ι-卡拉胶酶 CgiA 的研究
  • 第一节 ι-卡拉胶酶 CgiA 的降解方式研究
  • 1 实验设计
  • 2 仪器与材料
  • 2.1 实验仪器
  • 2.2 实验试剂及材料
  • 3 实验方法
  • 3.1 糖含量的测定方法
  • 3.2 荧光辅助糖电泳方法
  • 3.3 酶解不同类型底物的降解时间曲线
  • 3.4 CgiA 降解不同类型底物的酶活力比较
  • 4 实验结果
  • 4.1 酶解胶态和非胶态底物的酶活力比较
  • 4.2 酶解非胶态底物的降解时间曲线
  • 4.3 酶解胶态底物的降解时间曲线
  • 5 小结与讨论
  • 第二节 ι-卡拉胶酶 CgiA 的催化腔特征研究
  • 1 实验设计
  • 2 仪器与材料
  • 2.1 实验仪器
  • 2.2 实验试剂及材料
  • 3 实验方法
  • 3.1 卡拉胶酶 CgiA 的同源模建
  • 3.2 卡拉胶酶 CgiA 的降解实验
  • 4 实验结果
  • 4.1 卡拉胶酶 CgiA 的同源模建及结构分析
  • 4.2 卡拉胶酶 CgiA 的催化腔特征
  • 5 小结与讨论
  • 第三节 ι-卡拉胶酶 CgiA 重要残基的功能研究
  • 1 实验设计
  • 2 实验材料
  • 2.1 实验仪器
  • 2.2 实验菌株及培养基
  • 2.3 实验试剂及材料
  • 3 实验方法
  • 3.1 GH82 家族ι卡拉胶酶的系统进化树构建
  • 3.2 GH82 家族ι卡拉胶酶的序列保守性分析
  • 3.3 ι卡拉胶酶 CgiA 的定点突变
  • 3.4 CgiA 及突变体表达载体的构建
  • 3.5 CgiA 及突变体的表达与纯化
  • 3.6 卡拉胶酶活力的测定
  • 3.7 重组蛋白纯度及浓度的检测
  • 3.8 酶促反应动力学常数测定
  • 3.9 CgiA 及突变体的三维结构分析
  • 4 实验结果
  • 4.1 GH82 家族ι卡拉胶酶的系统进化树
  • 4.2 GH82 家族ι卡拉胶酶的序列保守性分析
  • 4.3 重组表达载体的体系构建
  • 4.4 CgiA 及突变体的表达和分离纯化
  • 4.5 卡拉胶酶活力测定方法的改进
  • 4.6 CgiA 催化腔-1 位保守残基的功能
  • 4.7 CgiA 催化腔+1 位保守残基的功能
  • 4.8 CgiA 催化腔+4 位氨基酸残基的功能
  • 5 小结与讨论
  • 第二章 Cellulophaga sp. QY3 中ι-卡拉胶酶 CgiB 的研究
  • 第一节 Cellulophaga sp. QY3 中ι-卡拉胶酶 CgiB 的基因克隆
  • 1 实验设计
  • 2 仪器与材料
  • 2.1 实验仪器
  • 2.2 实验菌株及培养基
  • 2.3 实验试剂及材料
  • 3 实验方法
  • 3.1 海洋细菌 Cellulophaga sp. QY3 进化树的构建
  • 3.2 GH82 家族ι-卡拉胶酶的多序列比对
  • 3.3 海洋细菌 Cellulophaga sp. QY3 基因组 DNA 的提取
  • 3.4 简并 PCR 克隆ι-卡拉胶酶 CgiB 的部分编码基因
  • 3.5 利用 Sitefinding PCR 克隆ι-卡拉胶酶 CgiB 全长编码基因
  • 3.6 ι-卡拉胶酶 CgiB 的基因及蛋白序列的生物信息学分析
  • 4 实验结果
  • 4.1 海洋细菌 Cellulophaga sp. QY3 的系统进化树
  • 4.2 多糖水解酶 82 家族ι-卡拉胶酶的多序列比对结果
  • 4.3 简并 PCR 扩增ι-卡拉胶酶 CgiB 的编码基因
  • 4.4 Sitefinding PCR 扩增ι-卡拉胶酶 CgiB 的编码基因
  • 4.5 ι-卡拉胶酶 CgiB 序列拼接和比对分析
  • 5 小结与讨论
  • 第二节 ι-卡拉胶酶 CgiB 重组表达、分离纯化及酶学性质的研究128
  • 1 实验设计
  • 2 仪器与材料
  • 2.1 实验仪器
  • 2.2 实验菌株及培养基
  • 2.3 实验试剂及材料
  • 3 实验方法
  • 3.1 重组载体质粒的构建
  • 3.2 重组ι-卡拉胶酶 CgiB 的表达和纯化
  • 3.3 重组ι-卡拉胶酶 CgiB 的酶学性质研究
  • 3.4 重组酶 CgiB 降解方式及降解产物的研究
  • 4 实验结果
  • 4.1 重组表达载体的体系构建
  • 4.2 重组酶 CgiB 的表达和分离纯化
  • 4.3 重组酶 CgiB 的酶学性质研究
  • 4.4 重组酶 CgiB 降解方式及降解产物的研究
  • 5 小结与讨论
  • 参考文献
  • 附录
  • 附录 1 常用培养基的配制方法
  • 附录 2 常用试剂、溶液的配制方法
  • 个人简历及发表的学术论文
  • 相关论文文献

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