TGEV TaqMan荧光定量RT-PCR检测方法的建立及其S蛋白抗原位点的原核表达

TGEV TaqMan荧光定量RT-PCR检测方法的建立及其S蛋白抗原位点的原核表达

论文摘要

猪传染性胃肠炎(Porcine transmissible gastroenteritis,TGE)是由猪传染性胃肠炎病毒(Porcine transmissible gastroenteritis virus,TGEV)引起的一种以一周龄以下仔猪呕吐、水样腹泻和高死亡率(通常为100%)为主要特征的传染病。该病是一种世界性的疾病,给畜牧业生产带来巨大的经济损失。由丁它主要引起一周龄以下仔猪几乎100%死亡,所以及早的确诊对该病的防治就具有特别重要的意义,因此建立一种快速、高灵敏度的诊断方法对防治TGE是十分必要的。而传统的检测方法都不能满足特定要求,荧光定量PCR技术的出现解决了这一难题。本研究根据猪传染性胃肠炎病毒N基因和猪肌动蛋白的基因序列设计合成了引物和探针,RT-PCR扩增得到目的基因,并克隆到pMD18-T载体得到阳性质粒,用分光光度计对质粒定量,10倍梯度稀释即为质粒标准品。通过对荧光定量RT-PCR反应条件的优化,建立了TaqMan荧光定量RT-PCR检测TGEV的方法。同时对60份现地病料进行检测并与常规RT-PCR方法、TGEV抗原快速检测试剂盒(免疫层析法)比较。结果,该方法的检测敏感性达到15拷贝/μl,且具有很好的特异性和重复性,而常规RT-PCR方法只能检测到1.53×103拷贝/μl。对现地病料的检测结果也表明该法比常规RT-PCR方法和TGEV抗原快速检测试剂盒的敏感性高。猪呼吸道冠状病毒(Porcine respiratory coronavirus,PRCV)是TGEV的基因缺失变异株,PRCV和TGEV核苷酸序列比较同源性达96%。由于TGEV和PRCV基因组结构十分相似,抗原有相关性,产生的中和抗体有交叉反应,因此多克隆抗体等血清学方法很难将二者区分开。PRCV与TGEV相比,其S基因N末端有大量碱基缺失,不同的PRCV毒株其碱基缺失情况也各不相同,有621~681个碱基不等的缺失,并导致PRCV失去两个抗原位点。本研究根据已发表的PRCV基因组序列(GenBank登陆号:DQ811787)中的S基因序列和本实验室测定的TGEV华毒弱毒株的S基因序列进行比对分析,用一对特异性引物对PRCV S基因缺失区域即TGEV S蛋白的B和C抗原位点(91~513nt)进行扩增,扩增后的片段克隆到pET30a(+)表达载体进行原核表达。SDS-PAGE结果表明,目的蛋白成功表达,且蛋白表达量很高,占菌体总蛋白的45.4%。Western blot分析结果表明目的蛋白具有很好的免疫学活性。本研究成功的高效表达了TGEV S蛋白B、C抗原位点多肽,为TGEV和PRCV的血清学鉴别诊断,或用于制备特异性单克隆抗体以区分TGEV和PRCV等奠定了重要的基础。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 英文缩略表
  • 第一章 绪论
  • 1.1 猪传染性胃肠炎概述
  • 1.1.1 病原
  • 1.1.2 病毒生长培养特征
  • 1.2 TGEV分子生物学研究进展
  • 1.2.1 基因织结构
  • 1.2.2 TGEV蛋白结构与功能
  • 1.2.3 TGEV的组织嗜性
  • 1.3 TGEV分子生物学诊断方法研究进展
  • 1.3.1 核酸探针杂交技术检测 TGEV
  • 1.3.2 聚合酶链式反应检测 TGEV
  • 1.3.3 TGEV与 PRCV的鉴别诊断方法
  • 1.3.4 展望
  • 1.4 荧光定量 PCR技术研究进展
  • 1.4.1 荧光定量 PCR定量原理
  • 1.4.2 常用的荧光定量 PCR仪
  • 1.4.3 荧光探针的种类及其作用原理
  • 1.4.4 荧光定量 PCR技术的优点
  • 1.4.5 荧光定量 PCR技术的应用
  • 1.5 研究的目的和意义
  • 第二章 TaqMan荧光定量 RT-PCR检测 TGEV方法的建立与应用
  • 2.1 材料
  • 2.1.1 病毒与细胞
  • 2.1.2 病料
  • 2.1.3 载体与受体菌
  • 2.1.4 主要试剂
  • 2.1.5 主要仪器设备
  • 2.1.6 引物与探针
  • 2.2 方法
  • 2.2.1 病毒的增殖
  • 2.2.2 电镜观察
  • 50)的测定(Reed-Muench法)'>2.2.3 TGEV组织培养半数感染量(TCID50)的测定(Reed-Muench法)
  • 2.2.4 病毒 RNA及内参基因组的提取
  • 2.2.5 反转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)
  • 2.2.6 PCR产物鉴定及纯化回收
  • 2.2.7 PCR产物连接与转化
  • 2.2.8 重组质粒提取、鉴定及序列测定
  • 2.2.9 质粒浓度测定
  • 2.2.10 荧光定量PCR的各种反应条件和参数摸索
  • 2.2.11 标准曲线的建立
  • 2.2.12 敏感性试验
  • 2.2.13 特异性试验
  • 2.3.14 重复性试验
  • 2.2.15 现地病料的检测
  • 2.3 结果
  • 2.3.1 电镜观察
  • 50的测定'>2.3.2 TCID50的测定
  • 2.3.3 TGEVN基因与β-actin基因目的片断的PCR扩增
  • 2.3.4 重组质粒pMD-TGEVN和pMD-actin的构建与鉴定
  • 2.3.5 重组质粒浓度的测定
  • 2.3.6 荧光定量 RT-PCR反应条件的优化
  • 2.3.7 标准曲线的建立
  • 2.3.8 敏感性试验
  • 2.3.9 特异性试验
  • 2.3.10 重复性试验
  • 2.3.11 现地病料的检测
  • 2.4 讨论
  • 第三章 TGEV S基因抗原位点的原核表达
  • 3.1 材料
  • 3.1.1 病毒
  • 3.1.2 菌体和载体
  • 3.1.3 主要试剂
  • 3.1.4 引物
  • 3.2 方法
  • 3.2.1 目的基因的获得
  • 3.2.2 重组表达质粒的构建
  • 3.2.3 重组蛋白诱导表达及条件优化
  • 3.2.4 重组蛋白的纯化
  • 3.2.5 Western Blot检测
  • 3.3 结果
  • 3.3.1 目的基因的获得
  • 3.3.2 重组质粒的 PCR鉴定
  • 3.3.3 重组蛋白的表达鉴定及条件优化
  • 3.3.4 重组蛋白的纯化
  • 3.3.5 Western blot分析
  • 3.4 讨论
  • 第四章 全文结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 作者简历
  • 攻读硕士期间发表的学术论文
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