大猿叶甲不同地理种群滞育及其遗传多样性的比较研究

大猿叶甲不同地理种群滞育及其遗传多样性的比较研究

论文摘要

大猿叶甲为重要的十字花科蔬菜害虫,从成虫在土中滞育。本研究以江西龙南、江西修水、山东泰、哈尔滨4个地理种群的大猿叶甲为对象,探索了不同群体的滞育变异,并采用几种分子标记技术对其群体遗传多样性和遗传结构进行了研究,同时比较了与其滞育变异之间的相关性。光周期和温度对大猿叶甲不同地理种群滞育诱导的影响在不同的恒温(18-30℃)条件下,测试经历了越冬滞育的大猿叶甲四个地理种群[江西龙南种群(JXL)、江西修水种群(JXX)、山东泰安种群(SDT)、黑龙江哈尔滨种群(HEB)]后代在光照8-16 h下滞育诱导的光周期反应。结果表明,随纬度的增高,光照时间缩短,温度降低,大猿叶甲从南到北呈现明显的地理变异。龙南种群对光周期和温度的反应与山东和哈尔滨种群不同,与修水种群相似。温度在大猿叶甲的滞育诱导中起决定性作用:无论光周期如何,当温度≤18℃时,龙南种群成虫均进入滞育;修水种群在温度≤20℃时,成虫均进入滞育;山东泰安种群在温度<25℃时,全部个体进入滞育;哈尔滨种群在温度≤28℃时,全部个体进入滞育。光周期对滞育诱导的影响受温度的调节,龙南种群为典型的短日照型昆虫,当温度>18℃时,随着温度的升高,短日照的滞育抑制作用逐渐增强;修水种群的光周期反应亦表现为典型的短日照类型,当温度>20℃时,不同短光照条件下诱导的滞育率随温度的升高而明显降低;当温度>22℃时,不同长光照诱导的滞育率随温度的升高而明显降低;山东泰安种群在28℃时,滞育率在69.23%~90.9l%之间;在30℃时,反应曲线呈不规则波浪状,没有呈现典型的光周期反应。哈尔滨种群没有光周期反应,滞育的诱导完全取决于温度。不同的滞育特性,导致大猿叶甲的生活史不同。遗传多样性研究采用了线粒体DNA COI基因序列、RAPD和PCR-RFLP三种分子标记研究大猿叶甲4个地理种群的遗传结构和群体遗传多样性。1、对长约335bp的mtDNA COI片段进行序列分析,在4个群体64个个体中,共发现37个单倍型,总变异位点35个,多态位点29个,(A+T)含量(63.68%)大于(G+C)含量(36.32%)。4个地理种群的核苷酸多样性指数分别为,0.082(JXL)、0.035(JXX)、0.099(SDT)、0.186(HEB)。Fst分析和中性检验结果显著,显示大猿叶甲群体存在显著的种群遗传结构,mtDNA COI基因不是按照中性理论进化。遗传距离分析表明,哈尔滨种群与江西龙南种群的遗传距离最远,其次是与江西修水种群;山东泰安种群与江西龙南种群的遗传距离最近,江西修水与江西龙南种群的遗传距离大于其与山东泰安种群间的距离。群体遗传距离与其相对地理距离的远近不吻合。2、从80个引物组合中筛选出的11个引物对大猿叶甲4个地理种群进行RAPD分析,共得到65个扩增位点,多态位点53个。多态位点、遗传相似性指数和遗传距离分析表明:4个种群的多态位点的百分率为36.92%~67.69%,Nei遗传多样性指数为0.1049~0.20611,Shannon多样性指数为0.1641~0.3167,江西龙南群体内的遗传变异最低,山东泰安群体内遗传变异最高。遗传距离分析表明,江西龙南种群和江西修水种群间的遗传距离最小,山东泰安种群与哈尔滨种群间的遗传距离次小,哈尔滨种群与江西龙南种群间的遗传距离最大。群体遗传距离与其相对地理距离吻合,与群体的滞育变异及生物学特征相符。3、利用7种限制性内切酶对大猿叶甲COI基因进行PCR-RFLP分析,结果表明,利用AseI、MboI、NlaⅢ、RsaⅠ,在大猿叶甲4个地理群体中均没检测到多态性;利用AluⅠ和DraⅠ只检测到群体间的多态性;利用HaeⅢ既检测到了群体间的多态性,又在山东群体中检测到群体内多态性。根据酶切图谱,共发现4种酶切类型,酶切型的特异性可以作为种群鉴别的标志。根据限制性片段共享度,利用POPGEN3.2计算4个群体的遗似距离,并利用MEGA3.1进行聚类分析,结果表明其遗传变异与其滞育变异的特征不相符。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第一章 文献综述
  • 1 昆虫滞育的简述
  • 2 遗传多样性的研究方法
  • 2.1 形态学标记
  • 2.2 细胞学标记
  • 2.3 生化标记
  • 2.4 DNA分子标记
  • 2.4.1 基于DNA-DNA杂交的分子标记
  • 2.4.1.1 限制性片段长度多态性
  • 2.4.1.2 可变数目串联重复序列
  • 2.4.2 基于PCR技术的分子遗传标记
  • 2.4.2.1 随机引物的PCR标记
  • 2.4.2.2 特异引物的PCR标记
  • 2.4.3 基于限制性酶切和PCR技术的分子标记
  • 2.4.3.1 扩增片段长度多态性
  • 2.4.3.2 CAPS标记
  • 2.4.4 基于单链构象的分子标记
  • 2.4.4.1 聚合酶链反应-单链构象多态性分析(PCR-SSCP)
  • 2.4.5 基于单个核苷酸多态性的分子标记
  • 2.4.5.1 单核苷酸多态性(SNP:single nucleotide p01ymorphism)技术
  • 2.4.6 DNA序列分析技术
  • 3、大猿叶甲的研究现状及本研究的目的意义
  • 3.1 研究现状
  • 3.2 本研究的目的意义
  • 第二章 大猿叶甲不同地理种群滞育变异的研究
  • 前言
  • 第一节 光周期和温度对大猿叶甲不同地理种群滞育的影响
  • 1 材料与方法
  • 1.1 供试虫源
  • 1.2 试验方法
  • 1.2.1 大猿叶甲不同地理种群滞育诱导的光周期反应
  • 1.2.2 滞育判断与数据处理
  • 2 结果
  • 2.1 不同温度下,龙南种群滞育诱导的光周期反应
  • 2.2 不同温度下,修水种群滞育诱导的光周期反应
  • 2.3 不同温度下,泰安种群滞育诱导的光周期反应
  • 2.4 不同温度下,哈尔滨种群滞育诱导的光周期反应
  • 第二节 大猿叶甲不同地理种群滞育的解除
  • 1 材料与方法
  • 1.1 供试虫源
  • 1.2 试验方法
  • 1.2.1 大猿叶甲不同地理种群滞育的解除
  • 1.2.2 数据处理
  • 2 实验结果
  • 2.1 龙南种群滞育的解除
  • 2.2 修水种群滞育的解除
  • 2.3 泰安种群滞育的解除
  • 2.4 哈尔滨种群滞育的解除
  • 第三节 分析和讨论
  • 第三章 大猿叶甲四个地理种群的线粒体COI基因序列分析
  • 1 前言
  • 2 材料与方法
  • 2.1 样品采集和DNA提取
  • 2.2 PCR扩增与测序
  • 2.3 数据分析
  • 2.3.1 序列分析
  • 2.3.3 群体遗传结构分析
  • 3 结果
  • 3.1 群体的多态性分析
  • 3.2 单倍型多样性和核苷酸多样性分析
  • 3.3 单核苷酸多态性及群体内序列间的相似度
  • 3.4 群体的遗传结构
  • 3.5 系统进化树
  • 4 讨论
  • 4.1 大猿叶甲群体多态性分析
  • 4.2 群体遗传结构与遗传分化
  • 4.3 与滞育变异的关系
  • 第四章 大猿叶甲四个地理种群的RAPD分析
  • 1 实验材料与方法
  • 1.1 实验材料与DNA提取
  • 1.2 RAPD反应体系及反应条件
  • 1.3 数据处理
  • 2 结果分析
  • 2.1 RAPD扩增结果
  • 2.2 多态性分析
  • 2.3 群体遗传变异
  • 2.3.1 地理种群间的遗传距离指数和遗传相似系数
  • 2.3.2 遗传多样性指数
  • 2.3.3 群体内的遗传变异
  • 2.4 群体遗传结构与遗传分化
  • 2.5 大猿叶甲4个地理种群间的聚类关系
  • 3 讨论
  • 第五章 大猿叶甲四个地理种群的PCR—RFLP辨别分析
  • 1 材料与方法
  • 1.1 实验材料与DNA提取
  • 1.2.PCR扩增
  • 1.3 PCR产物纯化
  • 1.4 酶切反应
  • 1.5 数据分析
  • 2 结果
  • 2.1 线粒体COI基因酶切片段的检测分析
  • 2.2 单倍型及遗传多态性
  • 2.3 大猿叶甲不同群体间的遗传差异及系统聚类分析
  • 3 讨论
  • 小结与讨论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 相关论文文献

    标签:;  ;  ;  ;  ;  

    大猿叶甲不同地理种群滞育及其遗传多样性的比较研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢