论文摘要
此文对本研究小组发现的鸭瘟病毒(DPV)UL6基因(GenBank登录号EF055890)开展了以下系列研究:DPV UL6基因密码子偏爱性分析及多肽抗原表位预测,主要抗原域的克隆、原核表达和抗体制备,利用表达蛋白建立检测DPV抗体的间接ELISA方法,应用表达蛋白制备亚单位疫苗进行攻毒保护试验,基于UL6抗原域蛋白的间接免疫荧光和间接免疫组化检测石蜡切片中DPV方法的建立、UL6基因产物在DPV强毒人工感染鸭组织中的表达动态及定位监测等,结果如下:1.采用软件DNAStar Protean程序,综合运用二级结构、亲水性、可塑性和抗原性指数等参数,对DPV CHv毒株UL6基因(GenBank登录号EF055890)的氨基酸序列进行B细胞表位预测,分析结果显示在位于UL6蛋白羧基端第Thr507-Gln515、Thr521-Met529、Asp531-Phe539、Gly544-Asn562、Thr568-Gln585、Lys592-Val604、Ala681-Ala778和Tyr780-Lys790区域内含有主要抗原决定簇。将UL6编码蛋白密码子偏爱性特征与大肠杆菌、酵母及人的密码子偏爱性相比较,为选择合适的表达系统提供参考。2.以DPV CHv毒株基因组作为PCR反应模板,利用Oligo6.0软件设计一对引物,整体扩增涵盖具有优势表位的基因片段(1483-2385bp),进行原核表达。以兔抗DEV多克隆血清进行Western blotting,检测显示抗血清可与该融合蛋白发生特异性反应。利用重组表达蛋白所带的6×His标签用镍柱亲和层析两种方法对其进行纯化,获得较高纯度的重组蛋白。过柱纯化蛋白分别对家兔进行免疫,制备兔高免血清,ELISA效价高达1:512000。3.以纯化的鸭瘟病毒UL6M蛋白为抗原,建立了用于检测鸭血清中抗DPV特异性IgG抗体的间接ELISA方法。并对其进行了标准化研究,确定了最佳工作条件。结果显示,抗原包被浓度为3.125ug/孔的包被反应板可获得良好的敏感性,与DEV标准阳性血清呈阳性反应,而与鸭乙型肝炎病毒(Duck hepatitis B virus,DHBV)、鸭病毒性肝炎(Duck virus hepatitis,DHV)、鸭传染性浆膜炎(Riemerella anatipestiferinfectious,RA)、鸭大肠杆菌(E.coli)、鸭沙门氏菌(Salmonella bacillus,SB)5种疾病阳性血清均无交叉反应。批间、批内试验变异系数不超过10%。这一结果表明该法特异性强、敏感性高、重复性好,可用于鸭瘟病毒感染鸭的血清抗体检测4.应用基因工程技术获得的UL6主要抗原域蛋白制备亚单位疫苗,攻毒保护试验显示:重组亚单位疫苗免疫雏鸭,免疫后7d左右能刺激机体开始出现抗体,14d抗体效价达到最高(OD为2.535),能够显著高于对照组(P≤0.05),与弱毒疫苗免疫组比较,效价的消长时间与弱毒免疫组变化相似,在56d体内均维持较高水平。重组蛋白组发病率、死亡率分别为50%(5/10)、40%(4/10)明显低于对照组的100%(10/10)、100%(10/10),表明UL6主要抗原域重组蛋白在雏鸭体内具有良好的免疫原性,但保护效率较弱毒疫苗组略差。5.检测鸭瘟病毒UL6基因产物在人工感染雏鸭组织中的表达动态与定位分布表明:感染鸭瘟病毒强毒4h,法氏囊、胸腺等免疫器官即可见UL6衣壳蛋白的表达。随后,十二指肠、空肠、回肠、直肠等消化道组织靶细胞可见UL6衣壳蛋白持续稳定地表达,3d后直至死亡鸭体内各组织器官均可检测到UL6表达蛋白的存在。由此推测DPV UL6蛋白为晚期基因中率先表达的一类,并持续参与病毒DNA复制全过程。
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本论文的创新性研究工作中文摘要ABSTRACT文献综述第一章 疱疹病毒UL6基因的研究进展1.疱疹病毒概述2.UL6基因在疱疹病毒中的特征3.关于UL6基因的展望第二章 蛋白质B细胞抗原表位的研究方法进展1 抗原表位的概念2 B细胞抗原表位的理论预测法3 B细胞表位的实验测定法选题目的和意义实验研究第三章 鸭瘟病毒UL6基因B细胞表位预测及密码子偏爱性分析1 材料和方法1.1 数据1.2 主要生物信息学分析方法2.结果2.1 DEV CHv毒株UL6蛋白的二级结构预测2.2 DEV CHv毒株UL6蛋白亲水性预测结果2.3 DEV CHv毒株UL6蛋白可塑性预测结果2.4 DEV CHv毒株UL6蛋白的抗原指数预测结果2.5 DPV UL6基因密码子使用频率和氨基酸组成偏爱分析2.6 DPV UL6基因与大肠杆菌、酵母及人的密码子使用偏爱性比较3.讨论3.1 B细胞表位预测对UL6多肽链的分析3.2 UL6基因密码子偏嗜性分析结果对表达的影响3.3 选取截段表达的意义第四章 鸭瘟病毒UL6基因主要抗原域蛋白的原核表达、纯化及其抗体制备1.材料1.1 材料及试剂1.2 引物的设计与合成1.3 实验动物1.4 主要溶液配制2.方法2.1 PCR扩增DPV CHv株UL6M基因2.2 UL6M基因的T-载体克隆与鉴定2.3 UL6M基因重组表达菌株的构建2.4 重组表达质粒的小量诱导表达2.5 表达蛋白的Western Blotting检测2.6 重组质粒表达条件的优化2.7 重组蛋白的纯化2.8 兔抗UL6M蛋白高免血清的制备2.9 兔抗UL6M IgG的纯化3.结果3.1 主要抗原域片段的克隆和鉴定3.2 SDS-PAGE和Western blotting分析3.3 重组蛋白的诱导表达及条件优化3.4 重组蛋白的纯化3.5 免疫兔血清的Western-blotting检测3.6 免疫兔血清的ELISA抗体效价的检测4.讨论4.1 基于UL6基因保守区段的主要抗原域的选取4.2 外源基因的融合表达的意义4.3 诱导表达第五章 基于UL6主要抗原域蛋白的间接ELISA检测DPV抗体方法的建立1.材料1.1 血清1.2 主要器材1.3 主要试剂2.方法2.1 最佳抗原包被浓度的确定2.2 酶标二抗最佳工作浓度的确定2.3 待检血清最佳稀释度的确定2.4 ELISA检测程序流程2.5 ELISA阴阳性临界值的确定2.6 特异性试验2.7 重复性试验2.8 敏感性试验3.结果3.1 最佳抗原包被浓度确定的结果3.2 酶标抗体和检测血清最适度的确定3.3 ELISA阴阳性临界值的确定3.4 特异性试验结果3.5 重复性试验结果3.6 敏感性试验3.7 样品血清的临床检测结果4.讨论4.1 应用表达蛋白建立ELISA方法对鸭瘟检测的意义4.2 ELISA方法的建立与优化4.3 UL6抗原域蛋白间接ELISA方法的特异性第六章 鸭瘟病毒UL6基因主要抗原域基因工程重组亚单位疫苗的研制及免疫原性研究1 材料1.1 毒株、疫苗和试验动物:1.2 主要试剂及仪器:2 方法2.1 重组亚单位疫苗的制备2.2 试验动物分组与免疫:2.3 攻毒保护试验2.4 血清抗体检测试验3 结果3.1 不同时间段鸭血清ELISA抗体效价3.2 攻毒保护试验结果:4 讨论4.1 应用重组表达蛋白制备亚单位疫苗的研究4.2 UL6主要抗原域蛋白制备重组亚单位疫苗的攻毒保护效果第七章 基于DPV UL6基因主要抗原域蛋白的免疫组化方法建立及其在UL6基因功能研究和DPV强毒感染鸭组织中定位分布规律的检测1 材料1.1 毒株、病料及试验动物1.2 免疫酶组织化学技术所需试剂1.3 主要仪器2 方法2.1 实验动物人工感染DPV及样品采集2.2 样品组织包埋及切片2.2.1 载(盖)玻片准备2.2.2 组织包埋及切片2.3 间接免疫酶组化检测DPV方法的建立与优化3.结果3.1 免疫组化方法检测DPV的建立与优化3.2 免疫组化方法检测鸭瘟病毒特异性试验结果:3.3 间接免疫组化检测石蜡切片中DPV UL6基因产物在人工感染鸭体内的表达动态3.4 免疫组化方法检测石蜡切片中DPV UL6基因产物在鸭体内组织定位分布4 讨论4.1 间接免疫组化方法的建立与优化4.2 免疫组化方法对UL6基因产物在组织上的动态表达监测与其基因功能的关系探讨4.3 免疫组化方法对鸭瘟病毒在鸭体组织内侵染规律的研究第八章 基于DPV UL6基因主要抗原域蛋白的免疫荧光方法建立及其在UL6基因功能研究和DPV强毒感染鸭组织中定位分布规律的检测1 材料1.1 毒株、病料及试验动物1.2 免疫荧光技术所需试剂1.3 主要仪器2 方法2.1 实验动物人工感染DPV及样品采集2.2 样品组织包埋及切片2.3 间接免疫荧光检测DPV方法的建立与优化2.4 免疫荧光检测石蜡切片中DPV UL6基因在人工感染鸭体内的表达动态2.5 免疫荧光检测石蜡切片中DPV UL6基因产物在鸭体内的组织定位分布3 结果3.1 免疫荧光方法检测DPV的建立与优化3.2 免疫荧光方法检测鸭瘟病毒特异性试验结果:3.3 间接免疫荧光检测石蜡切片中DPV UL6基因产物在人工感染鸭体内的表达动态3.4 间接免疫荧光检测石蜡切片中DPV UL6基因产物在鸭体内的组织定位分布4 讨论4.1 间接免疫荧光方法的建立与优化4.2 免疫荧光方法对UL6基因产物在组织上的动态表达监测与其基因功能的关系探讨4.3 间接免疫荧光方法对鸭瘟病毒在鸭体组织内侵染规律的研究结论参考文献致谢
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