昆虫酚氧化酶免疫学功能及其对杀虫剂等外来干扰因子的响应

昆虫酚氧化酶免疫学功能及其对杀虫剂等外来干扰因子的响应

论文摘要

酚氧化酶(phenoloxidase, EC.1.14.18.1, PO),又称酪氨酸酶,在昆虫的正常发育过程中具有重要的生理作用。它主要参与表皮的硬化、黑化过程;参与对外来侵染物的免疫防御反应;参与伤口愈合反应。研究酚氧化酶的特性及其在昆虫生长发育过程中的活性变化和生理功能对开发以酚氧化酶为靶标的新型害虫控制剂具有重要的理论意义。本文在前人的研究基础之上,以黄粉虫和小菜蛾为材料,研究了酚氧化酶在昆虫生长发育过程中的活性变化、生理学意义及免疫学功能。1.为了本研究的简便易行,首先比较了传统的紫外分光光度计比色法与酶标仪微量法在测定酚氧化酶活性和蛋白质含量方面的异同。研究发现,两者都能准确地测定酚氧化酶的活性和蛋白质含量,但是相比而言,酶标仪微量法更简捷、方便、灵活,对试剂的消耗更少,重复性更稳定。2.研究了黄粉虫蜕皮后血淋巴和体壁中的酚氧化酶活性变化。刚完成蜕皮过程的幼虫血淋巴中PO活性较高,但随着蜕皮后时间的延长,其活性呈现下降趋势,在34小时内达到最低点,而后PO活性逐渐上升,7小时的酶活性上升至最高,并接近于正常幼虫;在刚蜕完皮后的1小时内,体壁PO活性基本没有变化,但随后即开始下降,3小时左右降到最低点,然后开始回升,67小时左右恢复到正常水平,并趋于稳定;通过双倒数曲线做图法求得黄粉虫血淋巴PO的Km=1.176mmol/L,体壁PO的Km=0.881mmol/L,表明血淋巴和体壁中的酚氧化酶可能是不同的同工酶,体壁PO催化能力要高于血淋巴PO。3.研究了抑制剂槲皮素对黄粉虫血淋巴酚氧化酶的生理效应。结果表明,在离体条件下,槲皮素对黄粉虫血淋巴PO的IC50为0.625 mmol/L;在活体情况下,当槲皮素-DMSO溶液或槲皮素水悬浮液(5μL)注入虫体后,在浓度低于1 mmol/L时对黄粉虫血淋巴PO具有激活作用,当浓度高于2 mmol/L时则对PO具有明显的抑制作用;单独注射5μL DMSO溶液对PO活性亦有一定的激活作用,但是注射水对酚氧化酶活性没有影响。试虫被注射不同浓度的槲皮素后,PO活性在2~4 h内迅速下降,然后缓慢上升,处理后8 h左右达到最高点,其后低浓度处理PO活性保持不变,而高浓度处理则逐渐下降,表明低浓度槲皮素可以在一定程度上引起试虫的免疫反应。在PO测活体系中加入0.5%的牛血清蛋白(BSA)后对PO活性无影响,并能使槲皮素在测活体系中保持稳定。4.以大肠杆菌Escherichia coli DH5α菌株为免疫刺激因子,研究了黄粉虫在受到细菌侵染后所产生的免疫反应及酚氧化酶活性变化。结果表明,大肠杆菌水悬浮液与黄粉虫血淋巴一起冰浴后,其血淋巴酚氧化酶活性明显上升,大约为对照的2.4倍;将血淋巴进行离心除去血细胞后与E. coli一起冰浴,则不能使酚氧化酶活性升高;但是将离心后的血淋巴与胰蛋白酶一起冰浴,随着胰蛋白酶浓度的升高,酚氧化酶活性也逐渐升高,说明血浆中有酚氧化酶酶原(PPO)存在;综合以上实验结果,认为黄粉虫体内对入侵病原菌E. coli起识别作用的识别因子存在于血细胞或其它大分子的表面,这些细胞或大分子在离心过程中被除去,因而血浆与E. coli冰浴后不能启动PPO级联反应,即不能使酚氧化酶活性升高。将病原菌E. coli采用注射法注入黄粉虫体内1小时后,黄粉虫体内很快出现黑色的结节(nodules),表明很快就发生了免疫防御反应,10小时后结节数量达到最高峰,严重时大量的结节可联结成片;在结节形成的同时,黄粉虫血淋巴酚氧化酶的活性亦发生变化,在E. coli注入的初期,酚氧化酶活性大幅下降,12小时左右达到最低点,然后随着时间的延长,酚氧化酶活性逐渐恢复,20小时左右恢复到正常水平,说明酚氧化酶参与了结节的形成。5.研究了经丁烯氟虫腈抗性筛选后抗性小菜蛾与敏感小菜蛾酚氧化酶活性的变化。结果表明:无论是抗性品系还是敏感品系,其酚氧化酶都有相近的Km值,分别是1.108mmol/L和1.114mmol/L,但最大反应速度有明显的差别,抗性品系PO的最大反应速度为153.84μmol/L·min-1·mg-1蛋白,敏感品系PO的最大反应速度为67.114μmol/L·min-1·mg-1蛋白,抗性品系是敏感品系的2.29倍;抗性品系和敏感品系酚氧化酶的最适pH均为6.5,并且均在pH 7.0处最为稳定;抗性品系酚氧化酶在pH=5.5的环境下较敏感品系酚氧化酶稳定,两者在pH=4.4的环境下均不稳定,且蛋白质产生变性而产生沉淀;两者具有相似的温度稳定性,即在2540℃范围内相对较为稳定,温度高于40℃时活性明显下降。以上数据说明,抗性品系与敏感品系相比较具有较高的酚氧化酶活性,酚氧化酶可能对昆虫抗性的产生具有重要的贡献。6.以5种不同类型与4种不同作用机制的杀虫剂为胁迫因子,研究了其在亚致死剂量下对黄粉虫血淋巴酚氧化酶活性的影响:氨基甲酸酯类的灭多威与沙蚕毒素类的杀虫单对酚氧化酶的活性影响相似,即在较高的剂量浓度下可提高酚氧化酶活性,而低剂量浓度下对酚氧化酶活性无明显影响;有机磷类的毒死蜱在亚致死剂量下可降低酚氧化酶的活性;拟除虫菊酯类的高效氯氰菊酯在亚致死剂量下对酚氧化酶活性无影响;昆虫生长调节剂类的除虫脲在亚致死剂量下可使黄粉虫血淋巴酚氧化酶活性升高。以上结果表明不同作用机制或不同分子结构的化学药剂对黄粉虫酚氧化酶的活性影响不同。

论文目录

  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 第一章 昆虫酚氧化酶研究概况
  • 1.1 酚氧化酶的组织定位
  • 1.2 酚氧化酶的生理作用
  • 1.3 酚氧化酶的免疫功能
  • 1.4 酚氧化酶的抑制
  • 1.5 酚氧化酶在害虫控制领域的应用前景
  • 第二章 黄粉虫幼虫蜕皮后酚氧化酶活性变化
  • 第一节 分光光度计比色法与酶标仪微量法测定酚氧化酶活性的比较
  • 2.1.1 材料与方法
  • 2.1.1.1 材料
  • 2.1.1.2 仪器设备
  • 2.1.1.3 酶液制备
  • 2.1.1.4 比色法与酶标仪微量法测定酚氧化酶蛋白含量及活力比较
  • 2.1.2 结果与分析
  • 2.1.2.1 分光光度计比色法与酶标仪微量法测定酚氧化酶蛋白含量比较
  • 2.1.2.2 分光光度计比色法与酶标仪微量法测定酚氧化酶活力比较
  • 2.1.2.3 分光光度计比色法与酶标仪微量法测定抑制剂对酚氧化酶活力影响的比较
  • 2.1.3 讨论
  • 第二节 黄粉虫幼虫蜕皮后酚氧化酶活性变化
  • 2.2.1 材料和方法
  • 2.2.1.1 试虫选择及饲养
  • 2.2.1.2 试剂及仪器
  • 2.2.1.3 酶液制备
  • 2.2.1.4 酚氧化酶活性测定
  • m 值测定'>2.2.1.5 Km值测定
  • 2.2.2 结果与分析
  • 2.2.2.1 黄粉虫蜕皮后血淋巴中PO 活性变化规律
  • 2.2.2.2 黄粉虫幼虫蜕皮后体壁酚氧化酶活性变化
  • m 值测定'>2.2.2.3 血淋巴和体壁酚氧化酶Km值测定
  • 2.2.3 讨论
  • 第三章 抑制剂对黄粉虫血淋巴酚氧化酶的生理效应
  • 3.1 材料与方法
  • 3.1.1 试虫与饲养
  • 3.1.2 试剂及仪器
  • 3.1.3 试虫的处理
  • 3.1.4 黄粉虫血淋巴的采集及PO 活性的活体测定(in vivo)
  • 50的测定'>3.1.5 槲皮素对黄粉虫血淋巴PO IC50的测定
  • 3.2 结果
  • 3.2.1 槲皮素对黄粉虫活体PO 抑制作用
  • 3.2.1.1 槲皮素DMSO 溶液对黄粉虫PO 的影响
  • 3.2.1.2 槲皮素水悬浮液对黄粉虫PO 的影响
  • 3.2.1.3 经槲皮素注射不同时间后PO 活性的变化
  • 50的离体测定'>3.2.2 槲皮素对黄粉虫血淋巴酚氧化酶IC50的离体测定
  • 3.3 结论和讨论
  • 第四章 黄粉虫酚氧化酶在免疫系统中的作用
  • 4.1 材料和方法
  • 4.1.1 试虫与饲养
  • 4.1.2 试剂及仪器
  • 4.1.3 酚氧化酶活性测定
  • 4.1.4 E. coli 在体外对PO 的激活作用
  • 4.1.5 E. coli 在体内对PO 的作用
  • 4.2 结果
  • 4.2.1 E. coli 在体外对PO 的激活作用
  • 4.2.2 胰蛋白酶对血浆酚氧化酶的激活作用
  • 4.2.3 E. coli 注入虫体后酚氧化酶活性变化
  • 4.2.4 E. coli 注入虫体后结节的形成
  • 4.3 讨论
  • 第五章 抗丁烯氟虫腈小菜蛾酚氧化酶性质变化
  • 5.1 材料和方法
  • 5.1.1 试剂及仪器
  • 5.1.2 小菜蛾的饲养及抗丁烯氟虫腈种群的选育
  • 5.1.3 酚氧化酶制备和纯化
  • 5.1.4 蛋白质含量测定
  • 5.1.5 酶活性测定
  • m 测定'>5.1.6 酚氧化酶Km测定
  • 5.1.7 酚氧化酶最适pH 及pH 稳定性测定
  • 5.1.8 酚氧化酶温度稳定性的测定
  • 5.2 试验结果
  • 5.2.1 蛋白质含量
  • m 值'>5.2.2 酚氧化酶Km
  • 5.2.3 最适pH 和pH 稳定性值
  • 5.2.4 酚氧化酶对温度的稳定性
  • 5.3 讨论
  • 第六章 不同类型的杀虫剂对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.1 材料和方法
  • 6.1.1 供试虫种
  • 6.1.2 供试药剂和试剂
  • 6.1.3 试虫处理
  • 6.1.3.1 氨基甲酸酯类杀虫剂灭多威对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.1.3.2 有机磷酸酯类杀虫剂毒死蜱对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.1.3.3 沙蚕毒素类杀虫剂杀虫单对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.1.3.4 拟除虫菊酯类杀虫剂高效氯氰菊酯对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.1.3.5 昆虫生长调节剂类杀虫剂除虫脲对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.1.4 黄粉虫血淋巴的采集和酚氧化酶活性测定
  • 6.2 结果
  • 6.2.1 灭多威对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.2.2 毒死蜱对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.2.3 杀虫单对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.2.4 高效氯氰菊酯对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.2.5 除虫脲对黄粉虫酚氧化酶活性的影响
  • 6.3 讨论
  • 第七章 结论
  • 参考文献
  • 本论文的创新之处
  • 致谢
  • 攻读博士学位期间发表的论文
  • 相关论文文献

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