硒对氟致血管内皮细胞损伤的影响

硒对氟致血管内皮细胞损伤的影响

论文摘要

目的研究不同浓度氟对体外培养人脐静脉血管内皮细胞的损伤作用;不同浓度硒对体外培养人脐静脉血管内皮细胞生长的影响;不同浓度的硒对不同浓度氟造成的血管内皮细胞损伤的拮抗作用。为硒拮抗氟致动脉硬化的应用提供理论依据。方法人脐静脉血管内皮细胞(Human umbilical vein endothelialcells,HUVEC)置于37℃,5%CO2,饱和湿度条件下培养。待细胞处于对数生长期,进行实验。实验分组分为加氟组、加硒组、加氟加硒组。加氟组氟化钠(NaF)浓度分别为0、100、400、700、1000、2000μmol/L。加硒组亚硒酸钠(Na2SeO3)的浓度分别为0、50、100、500、1000、2000nmol/L。加硒加氟组氟化钠(400、700、1000、2000μmol/L)+亚硒酸钠(100 nmol/L)。连续培养48h后收集细胞培养液与细胞待用。瑞氏-吉姆萨染色(Wrigh-Giema staining)观测细胞形态,吖啶橙荧光染色(Acridine orang staining)测定细胞凋亡的情况。采用四唑盐(Methyl thiazolyl tetrazolium,MTT)比色法测定细胞活性;检测培养液中谷胱甘肽过氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GSH-px)、超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase,SOD)、丙二醛(Malondialdehyde,MDA)的活性。检测培养液中诱导型一氧化氮合酶(Inducible nitric oxidesynthase,iNOS)、内皮型一氧化氮合酶(Endothelial nitric oxidesynthase,eNOS)的活性和浓度。采用酶联免疫吸附试验(enzyme linkedimmunosorbent assay,ELISA)测定培养液中的细胞粘附因子(Intercellularcell adhesion molecule-1,ICAM-1)和血管粘附因子(Vasular cell adhesionmolecule-1,VCAM-1)的表达。采用逆转录聚合酶连反应(Reversetranscription polymersade chain reaction,RT-PCR)为,测定iNOS-mRNA、eNOS-mRNA的表达。结果采用多组间比较采用方差分析,两两比较采用q检验。结果1氟对血管内皮细胞损伤作用1.1细胞形态学观察瑞氏-吉姆萨染色发现加氟组细胞随着氟剂量增加数量开始减少,形态变化明显;血管内皮细胞的数量随着浓度增大而减少,内皮细胞中出现似成纤维细胞样改变,,细胞间隙增大。随着NaF浓度增大,变形的细胞所占得比例越大。吖啶橙染色NaF浓度达到2000μmol/L时,细胞核有明显变形,聚集在细胞边缘,呈月牙形排列,并有少许荧光碎片1.2氟化钠对细胞生长的影响HUVEC给予NaF处理后48h后,MTT法测定细胞增值,在低浓度NaF,对细胞的生长几乎没有作用(P>0.05),当NaF浓度为700、1000μmol/L时,可以明显抑制细胞得生长(P<0.05)。当浓度为2000μmol/L时抑制的作用更强。1.3氟对培养液中SOD、GSH-Px活性和MDA含量的影响氟的剂量为100μmol/L时,SOD、GSH-px、MDA的活性或者是浓度都没有显著变化(P>0.05)。随着NaF浓度增大,SOD、GSH-px的活性明显的降低(P<0.05),而MDA的浓度则明显的升高(P<0.05)。1.4氟对内皮细胞eNOS和iNOS表达的影响低浓度氟对eNOS影响不大(p>0.05),随着氟浓度增大eNOS的活性逐渐减弱(p<0.01)。而iNOS的活性则随着氟浓度的增高逐渐的增强(p<0.01)。RT-PCR检测细胞eNOS mRNA和iNOS mRNA水平的变化,HUVEC与低浓度氟作用以后,其eNOS和的RT-PCRiNOS产物没有明显变化,但在氟浓度增大后具有统计学意义(P<0.05)。1.5检测培养液中ICAM-1和VCAM-1浓度当NaF浓度时,培养液中的ICAM-1和VCAM-1的浓度并没有显著变化(P>0.05)。当氟浓度增大,在400-2000μmol/L时,培养液中两种粘附因子的浓度都明显的增大,统计学检验有显著的统计学意义(P<0.05)。2硒对血管内皮细胞的影响通过研究硒对内皮细胞形态、细胞活性、培养液中SOD、GSH-px活性和MDA含量、内皮细胞eNOS和iNOS表达、内皮细胞的ICAM-1和VCAM-1表达的影响,确定硒在浓度为100nmol/L时对细胞明显有保护作用,从而确定硒的干预剂量为100nmol/L。3硒对氟造成血管内皮细胞损伤的干预作用3.1硒对氟造成细胞形态改变的影响细胞在加硒加氟的培养液中培养48 h后染色观察,氟浓度100-700μmol/L细胞形态正常;当加硒加氟组的氟浓度达到1000μmol/L时,出现零星成纤维样细胞,当加硒加氟组的氟浓度达到2000μmol/L时,与加氟组没有明显的改变,细胞形态变化较大,细胞核可见浓染致密并可见荧光碎片3.2硒对氟造成的细胞活性改变的影响MTT测定细胞活性在不同组细胞中加入不同浓度的氟和硒共同培养48h后,MTT结果显示,在氟(100-700μmol/L)+硒组时,细胞生长并不受到抑制(P>0.05)。在氟(1000-2000μmol/L)+硒组时,细胞生长明显受到抑制(P<0.05)。但是与只加氟相比,细胞增值都增高。3.3硒对氟造成内皮细胞培养液中SOD、GSH-PX活性和MDA浓度改变的影响与同剂量加氟组相比,在氟(400-1000μmol/L)+硒组SOD与GSH-Px在培养液中的活性明显的增高(P<0.05),而MDA浓度则明显的降低(P<0.05);氟(2000μmol/L)+硒组,SOD、GSH-Px活性和MDA浓度都没有明显的变化(P>0.05)。3.4硒对氟造成内皮细胞NOS的异常表达的影响与同剂量加氟组相比,氟(400,700μmol/L)+硒组培养液中iNOS的活性明显的降低(P<0.05),而eNOS的活性则明显的增高(P<0.05);氟(1000,2000μmol/L)+硒培养液中eNOS和iNOS活性没有明显的变化(P>0.05)。RT-PCR测定结果显示,与同剂量加氟组比较,氟(400-1000μmol/L)+硒组iNOS mRNA表达明显的降低(P<0.05),而氟(2000μmol/L)+硒组iNOSmRNA的表达没有明显的变化;氟(400,1000μmol/L)+硒组的eNOS mRNA表达明显增高(P<0.05),而氟(2000μmol/L)+硒组eNOS mRNA的表达没有明显变化。3.5硒对氟造成内皮细胞黏附因子异常表达的影响与同剂量加氟组比较,氟(400-1000μmol/L)+硒组培养液中ICAM-1和VCAM-1的浓度明显降低(P>0.05),氟(2000μmol/L)+硒组培养液中ICAM-1和VCAM-1的浓度则没有明显变化(P>0.05)。结论1、高浓度氟可以使内皮细胞的形态发生改变,并且可以导致细胞的调亡;适量剂量硒可以拮抗氟化钠对细胞的损伤。2、氟可以使培养液中的GSH-Px,SOD活性降低,使MDA的含量增高;适量浓度的硒可以改善这种现象,使SOD、GSH-Px活性明显升高,MDA浓度下降。3、氟可以抑制eNOS mRNA的表达,使培养液中的eNOS活性降低;可以刺激iNOS mRNA的表达,使培养液中iNOS活性增强;适量浓度硒可以抑制氟对细胞eNOS和iNOS的刺激,使eNOS和iNOS的表达和活性趋于正常。4、氟可以激活内皮细胞的粘附因子的表达,使培养液中ICAM-1和VCAM-1的含量增高;适量浓度硒可以抑制氟对细胞黏附因子的刺激,使其在培养液中的浓度明显的低于只加氟的实验组

论文目录

  • 摘要
  • 英文摘要
  • 符号说明
  • 前言
  • 第一部分 氟对血管内皮细胞的损伤作用
  • 1 材料和方法
  • 2 结果
  • 第二部分 硒对脐静脉血管内皮细胞生长状态的影响
  • 1 方法
  • 2 结果
  • 第三部分 硒对氟造成的血管内皮细胞损伤的干预作用
  • 1 方法
  • 2 结果
  • 讨论
  • 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 攻读学位期间发表论文目录
  • 学位论文评阅及答辩情况表
  • 相关论文文献

    • [1].介绍几种配制草履虫培养液的材料[J]. 生物学教学 2010(09)
    • [2].超级培养液[J]. 科学启蒙 2015(08)
    • [3].奶牛卵丘细胞无血清体外培养液的优化[J]. 畜牧兽医学报 2009(06)
    • [4].不同类型的培养液对第一代试管婴儿成功率的影响[J]. 中国性科学 2012(11)
    • [5].生物培养液技术在酱香调味酒生产中的应用[J]. 酿酒科技 2011(09)
    • [6].草履虫在不同培养液中培养的探究性试验研究[J]. 科技创新导报 2012(35)
    • [7].2种培养液对小球藻生长的影响[J]. 安徽农业科学 2010(16)
    • [8].细叶美女樱花粉培养液筛选的研究[J]. 辽宁林业科技 2009(01)
    • [9].麦胚富集γ-氨基丁酸的培养液组分优化[J]. 食品工业 2012(10)
    • [10].液相质谱联用法同时检测体外生殖培养液中的18种氨基酸[J]. 中国组织工程研究 2018(18)
    • [11].水痘带状疱疹病毒培养液的筛选[J]. 中国生物制品学杂志 2017(11)
    • [12].胎盘间充质干细胞缺氧培养液对血管内皮细胞生物学特性的影响[J]. 解剖学研究 2016(02)
    • [13].培养液酸碱度与麻疹病毒增殖动态关系的研究[J]. 吉林医学 2010(04)
    • [14].羊膜培养液体外抑制兔角膜上皮细胞血管内皮生长因子的表达[J]. 国际眼科杂志 2010(04)
    • [15].细胞来源和培养液成分对大鼠神经前体细胞增殖和分化的影响[J]. 神经解剖学杂志 2008(06)
    • [16].关于“探究培养液中酵母菌种群数量的变化”的两个问题[J]. 学苑教育 2012(23)
    • [17].两种商品化培养液对胚胎体外发育和临床结局的影响比较[J]. 浙江医学 2019(10)
    • [18].几种培养液对水螅种群增长影响探究[J]. 绿色科技 2019(18)
    • [19].“探究培养液中酵母菌种群数量的动态变化”实验研究[J]. 生物学通报 2011(05)
    • [20].不同浓度培养液对小球藻生长的影响[J]. 环境科学与技术 2014(S2)
    • [21].螺旋藻培养液配方的优化研究[J]. 中国土壤与肥料 2011(05)
    • [22].耻垢分枝杆菌7天培养滤液与Middlebrook 7H9培养液蛋白质组对比分析[J]. 现代医院 2013(08)
    • [23].草履虫的采集和培养研究[J]. 湛江师范学院学报 2011(03)
    • [24].一株海水藻类培养液的絮凝活性及机理分析[J]. 安徽农业科学 2013(01)
    • [25].不同培养液对鹅胚胎体外培养的影响[J]. 中国农学通报 2013(08)
    • [26].连续微量培养液胃癌组织块贴壁培养法[J]. 肿瘤防治研究 2008(02)
    • [27].培养液成份变化对胚胎发育的影响[J]. 生殖医学杂志 2019(11)
    • [28].酵母培养液中胰蛋白酶初探[J]. 科学技术与工程 2015(29)
    • [29].培养液中酵母菌种群数量的变化[J]. 考试(高考理科版) 2011(06)
    • [30].复合富血小板血浆培养液对兔骨髓间充质干细胞增殖及矿化的影响[J]. 武警医学 2013(08)

    标签:;  ;  ;  ;  

    硒对氟致血管内皮细胞损伤的影响
    下载Doc文档

    猜你喜欢