磷脂酶A1的非水相催化及固定化研究

磷脂酶A1的非水相催化及固定化研究

论文摘要

大豆卵磷脂(PC)广泛应用于食品、医药、化妆品、农产品等行业,近年来对卵磷脂的酶法改性研究较多。本文利用磷脂酶在非水介质中催化卵磷脂水解生成甘油磷酸胆碱(GPC),对其反应体系的构建、产物初步分离纯化及分析方法的建立、制备工艺的优化、有机溶媒的回收、反应机理及酶的固定化进行了探索性研究。论文首先以底物PC为表面活性剂,己醇为助表面活性剂,庚烷为油相,醋酸盐缓冲液为水相构建W/O型微乳体系,初步确定的微乳液的构成为:PC:庚烷:己醇:水相=1:6.3:0.9:0.5,其中PC为质量单位(g),其它为体积单位(mL)。在此反应体系中以磷脂酶为催化剂做催化反应,酸碱滴定法判断反应终点。反应结束后反应液经初步的分离纯化——萃取后,分别以TLC法和HPLC法对GPC粗品做定性和定量检测,此时GPC产率为85%。其次,对酶法制备GPC的工艺进行了优化。最适温度40℃;最适pH5.0;Ca2+对产物的产量没影响;补加底物前,酶与缓冲液的体积比为1:2;初始反应底物浓度为0.278g/mL,即此时初始反应体系变为:PC:庚烷:己醇:水相=2:6.3:0.9:0.5;补加底物浓度为0.437g/mL;补加质量为初始质量的一半;补加底物的同时要补充适量水相缓冲液,缓冲液的量按PC:庚烷:己醇:水相=1:2:0.286:0.25计算;补加时间为反应后1.5h;反应总时间为6h;实行补加工艺后,GPC产率增长到96.5%。采用将反应液先旋蒸后萃取的方法使反应试剂与萃取剂分离,分别回收。其中萃取剂二氯甲烷、甲醇/水可通过旋蒸回收,反应试剂庚烷和己醇利用气相色谱外标定量法测出体积比,然后配成原比例7:1,重新用于下一批反应。在磷脂酶催化水解PC制备GPC的过程中,通过TLC法证实了反应过程中确有中间产物LPC的生成,通过酰基转移反应最终转化为GPC。论文最后对磷脂酶的固定化进行了研究。通过比较戊二醛交联法、吸附包埋法、吸附法三种方法制备的固定化酶催化制备GPC的研究,发现吸附法制备的固定化酶催化效果较好。然后研究了硅藻土、阳离子交换树脂001*7(732)、Seplite树脂LX-1000EP、Seplite树脂LX-1000NHF四种载体的吸附固定化效果。其中LX-1000NHF载体制备的固定化酶催化反应时间稍短,产物产量较高。其固定化条件为:载体与酶量比为5:2(m/v),吸附时间5h,吸附温度为室温;固定化酶与游离酶的Km值分别为0.705g/mL和0.184g/mL;以5g底物为例,固定化酶制备GPC的最适加酶量为3g,最适温度60℃,最适水含量2mL。其中前2批的产率比游离酶(85%)的高,分别是98.6%、87.6%。本研究为甘油磷酸胆碱的制备提供了一种可行的方法,为其产业化应用奠定了基础,为卵磷脂的酶法改性研究提供了可靠的理论依据。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 致谢
  • 第一章 绪论
  • 1.1 卵磷脂(PC)及甘油磷酸胆碱(GPC)
  • 1.1.1 卵磷脂(PC)
  • 1.1.2 甘油磷酸胆碱(GPC)
  • 1.2 磷脂酶 A1(PLA1)
  • 1.3 非水相酶催化
  • 1.3.1 非水相酶催化介质体系
  • 1.3.2 非水相酶催化的优点及含水的作用
  • 1.3.3 促进酶在非水相催化活性的方法
  • 1.3.3.1 酶的处理
  • 1.3.3.2 酶反应体系的选择
  • 1.4 固定化方法
  • 1.4.1 吸附法
  • 1.4.2 包埋法
  • 1.4.3 交联法
  • 1.4.4 共价连接法
  • 1.5 本课题的研究内容、创新点及意义
  • 1.5.1 选题依据、意义及创新点
  • 1.5.2 研究内容及思路
  • 第二章 反应体系的构建及磷脂酶催化制备 GPC 研究
  • 2.1 引言
  • 2.2 实验仪器及材料
  • 2.3 实验方法
  • 2.3.1 反应体系的构建
  • 2.3.2 微乳体系的鉴定
  • 2.3.3 催化反应
  • 2.3.4 产物初步纯化——萃取工艺研究
  • 2.3.4.1 第一次萃取
  • 2.3.4.2 第二次萃取
  • 2.3.5 产物分析方法的建立
  • 2.3.5.1 GPC 粗品转化率的计算
  • 2.3.5.2 TLC 检测
  • 2.3.5.3 HPLC 检测
  • 2.4 实验结果与分析
  • 2.4.1 反应体系的构建
  • 2.4.2 微乳液的鉴定
  • 2.4.2.1 稳定性考察结果
  • 2.4.2.2 粒径测量
  • 2.4.3 萃取工艺
  • 2.4.3.1 第一次萃取
  • 2.4.3.2 第二次萃取
  • 2.4.4 产物的分析检测
  • 2.4.4.1 TLC 检测
  • 2.4.4.2 HPLC-ELSD 检测
  • 2.5 本章小结
  • 第三章 酶法制备 GPC 的工艺优化及催化机理初探
  • 3.1 引言
  • 3.2 实验仪器及材料
  • 3.3 实验方法
  • 3.3.1 催化工艺的优化
  • 3.3.1.1 酸碱滴定
  • 3.3.1.2 GPC 产率的计算
  • 3.3.1.3 反应时间的确定
  • 3.3.1.4 反应温度
  • 3.3.1.5 初始 pH
  • 3.3.1.6 酶与缓冲液体积比
  • 3.3.1.7 Ca2+对产物产量的影响
  • 3.3.1.8 底物补加工艺的研究
  • 3.3.2 溶媒回收
  • 3.3.2.1 反应试剂的回收
  • 3.3.2.2 萃取试剂的回收
  • 3.3.3 优化后工艺放大制备 GPC 粗品
  • 3.3.4 催化机理研究——中间产物的生成与转化
  • 3.4 实验结果与分析
  • 3.4.1 催化工艺的优化
  • 3.4.1.1 反应时间的确定
  • 3.4.1.2 反应温度
  • 3.4.1.3 初始 pH
  • 3.4.1.4 酶与缓冲液体积比
  • 3.4.1.5 Ca2+对产物产量的影响
  • 3.4.1.6 GPC 产率的计算
  • 3.4.1.7 初始底物浓度的确定
  • 3.4.1.8 补加底物浓度的确定
  • 3.4.1.9 补加底物质量的确定
  • 3.4.1.10 补加工艺反应时间的确定
  • 3.4.1.11 补加时间的确定
  • 3.4.1.12 补加的缓冲液量的确定
  • 3.4.2 溶媒的回收
  • 3.4.2.1 反应试剂的回收
  • 3.4.2.2 萃取试剂的回收
  • 3.4.3 优化后工艺放大制备 GPC 粗品
  • 3.4.3.1 HPLC 检测 GPC 粗品
  • 3.4.3.2 GPC 粗品的转化率、含量、产率
  • 3.4.4 催化机理初探——中间产物 LPC 的生成与转化
  • 3.5 本章小结
  • 第四章 磷脂酶的固定化研究
  • 4.1 引言
  • 4.2 实验仪器与材料
  • 4.3 实验方法
  • 4.3.1 固定化率的计算
  • 4.3.2 固定化方法的选择
  • 4.3.2.1 戊二醛交联法
  • 4.3.2.2 吸附包埋法
  • 4.3.2.3 吸附法
  • 4.3.3 LX-1000NHF 载体的吸附固定化条件
  • 4.3.3.1 加酶量
  • 4.3.3.2 固定化时间
  • 4.3.3.3 固定化温度
  • 4.3.4 固定化磷脂酶非水相催化制备 GPC 的研究
  • 4.3.4.1 Km 值的测定
  • 4.3.4.2 最适加酶量的考察
  • 4.3.4.3 最适温度的测定
  • 4.3.4.4 最适水含量的考察
  • 4.3.4.5 固定化酶前 2 批反应产物的转化率与产率计算
  • 4.4 实验结果与分析
  • 4.4.1 固定化方法的选择
  • 4.4.1.1 戊二醛交联法
  • 4.4.1.2 吸附包埋法
  • 4.4.1.3 吸附法
  • 4.4.2 LX-1000NHF 载体的吸附固定化条件
  • 4.4.2.1 加酶量
  • 4.4.2.2 固定化时间
  • 4.4.2.3 固定化温度
  • 4.4.2.4 固定化酶的电镜观察
  • 4.4.3 固定化磷脂酶非水相催化制备 GPC 的研究
  • 4.4.3.1 Km 值的测定
  • 4.4.3.2 最适加酶量的考察
  • 4.4.3.3 最适温度的测定
  • 4.4.3.4 最适水含量的考察
  • 4.4.3.5 固定化酶前 2 批反应产物的转化率与产率
  • 4.5 本章小结
  • 第五章 结论与展望
  • 5.1 结论
  • 5.2 展望
  • 参考文献
  • 攻读硕士学位期间发表的论文
  • 相关论文文献

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