论文摘要
目的和意义:脑缺血及脑损伤是严重威胁人类生命健康的多发病,其主要的病理损害是神经元的损伤和缺失,导致神经功能缺损。直到上世纪90年代,神经再生与神经干细胞(neural stem cells,NSCs)的发现为中枢神经系统损伤的修复带来了希望。NSCs具有强大的增殖能力和多分化潜能,病理情况下,内、外源性的NSCs能够增殖并向病灶区迁移,最终分化成各种类型的神经元和神经胶质细胞,以修复损伤的神经系统。但研究发现内、外源性NSCs的存活、增殖能力有限,并且易分化为胶质细胞;而微环境对NSCs的增殖、分化起着决定性作用。因而,如何调控NSCs的增殖及分化方向,是应用NSCs治疗神经系统疾病之前急需解决的问题。近年来研究发现,核因子-κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)信号系统与中枢神经系统疾病发生发展密切相关,并且可能参与了NSCs增殖分化的调控,但其确切机制尚不清楚。本实验通过观察NF-κB信号通路激活剂(肿瘤坏死因子α,tumor necrosis factor-alpha,TNF-α)、NF-κB信号通路抑制剂(四氢化吡咯二硫代氨基甲酸盐,pyrrollidine dithiocarbamate,PDTC)对体外培养的NSCs增殖状况的影响,探讨NF-κB在NSCs增殖过程中的调控作用;同时初步探讨稀土化合物氯化镧(Lanthanum chloride,LaCl3)对体外培养的NSCs增殖状况的可能影响,以进一步了解NSCs增殖分化的调控机制,为更好地利用NSCs治疗神经系统疾病提供理论依据。方法:1、小鼠神经干细胞(mouse neural stem cells,mNSCs)的分离培养及鉴定:采用成球悬浮法分离培养mNSCs,至第三代后,行细胞冰冻切片,免疫组化方法鉴定NSCs标志蛋白nestin。2、实验分组:将生长状态良好的第3代mNSCs分为空白对照组、TNF-α组、PDTC组,分别采用常规NSCs培养液、含10ng/ml TNF-α的NSCs培养液、含0.1mmol/l PDTC的NSCs培养液培养30分钟、4小时和72小时;另设一组氯化镧组,以含氯化镧2.5μmol/L的NSCs培养液培养NSCs 13天。3、观察指标及方法:采用免疫荧光细胞化学方法及Western Blotting方法检测NSCs NF-κB活化状况(即P65在细胞中的分布变化);采用免疫荧光细胞化学方法检测与细胞增殖相关的指标(包括CyclinD1、Ki-67)及神经球计数、神经球体积测量方法观察NSCs的增殖状况。结果:1、mNSCs的生长状况及鉴定结果:mNSCs原代培养时,镜下见培养2天后细胞分裂增殖逐渐形成呈悬浮生长的形态规则的神经球,球周边不断有分裂增殖的细胞凸出。57天后球体积不断增大,球中央的细胞因营养缺乏而逐渐变黑,予以传代。免疫细胞荧光法鉴定神经球中大部分为Nestin表达阳性细胞。2、NSCs的NF-κB活化状况:细胞免疫荧光染色结果显示,TNF-α组可见明显的p65活化由胞浆转位至胞核;而PDTC组P65仍表达在胞浆,未见核转位。Western Blotting结果显示,TNF-α组胞核NF-κB/p65蛋白含量显著高于对照组,而PDTC组胞核p65蛋白含量极少。结果表明,TNF-α能使mNSCs NF-κB活化。3、NSCs的增殖状况:神经球计数和神经球体积测量结果显示,TNF-α组和氯化镧(2.5μmol/L)组神经球数量分别为[(74.56±2.6)个/瓶]和[(62.32±2.8)个/瓶],较对照组[(42.28±3.5)个/瓶]明显增多,P<0.05;神经球体积分别为[(0.82±0.16)×106(μm3)]和[(0.66±0.12)×106(μm3)],较对照组[(0.26±0.08)×106(μm3)]明显增大,P<0.05。细胞免疫荧光染色结果显示,TNF-α组和空白对照组中,CyclinD1阳性细胞率分别为(68.6±4.2)%和(38.8±3.7)%,明显高于PDTC组的(24.2±2.8)%,p<0.01;Ki-67阳性细胞率分别为(48.2±3.6)%和(35.2±4.7)%,明显高于PDTC组的(18.7±1.8)%,p<0.01。以上研究结果表明,TNF-α可使mNSCsNF-κB活化,并促进NSCs增殖;PDTC能抑制mNSCs NF-κB的活化,从而抑制NSCs增殖;一定浓度的氯化镧可促进mNSCs增殖。结论:1、NF-κB的激活或抑制可促进或抑制NSCs的增殖,NF-κB在NSCs的增殖过程中可能起着重要的调控作用。2、一定浓度的氯化镧具有促进NSCs增殖的作用。
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- [1].神经球方法在神经生物学中的应用及其局限性[J]. 生命的化学 2011(05)
- [2].神经球的异质性、发生方式及神经球方法的适用性[J]. 细胞生物学杂志 2008(01)
- [3].碱性成纤维细胞生长因子和表皮生长因子联合诱导骨髓基质细胞分化形成神经球[J]. 解剖学报 2010(03)
- [4].大鼠神经球蛋白的原核表达及多克隆抗体制备[J]. 第三军医大学学报 2008(04)
- [5].角质细胞生长因子促进人胚神经干细胞增殖与分化的实验研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2013(10)
- [6].不同厚度神经球冰冻切片免疫荧光细胞化学染色结果的比较[J]. 细胞与分子免疫学杂志 2018(06)
- [7].脑肿瘤干细胞的培养及生物学特性研究[J]. 中国实验诊断学 2011(02)
- [8].Science:寨卡病毒导致人神经球和大脑类器官生长下降和畸形[J]. 现代生物医学进展 2016(16)
- [9].食蟹猴神经干细胞的培养与分化[J]. 中国组织工程研究与临床康复 2009(45)
- [10].稀土化合物氯化镧影响神经干细胞增殖的探讨[J]. 实验与检验医学 2008(05)
- [11].胚胎中脑神经干细胞的培养及分化条件探讨[J]. 重庆医科大学学报 2015(01)
- [12].人胎脑神经干细胞在发育期脑脊液中的迁移和分化[J]. 中国组织工程研究与临床康复 2010(01)
- [13].25例恶性胶质瘤中肿瘤干细胞的分离与检测[J]. 中华神经外科疾病研究杂志 2013(04)
- [14].胶质瘤中脑肿瘤干细胞的分离、培养和鉴定[J]. 江苏医药 2009(01)
- [15].骨髓间质细胞源性神经球移植对大鼠脊髓损伤的修复作用[J]. 脑与神经疾病杂志 2013(03)
- [16].多组分冷冻保护剂导入神经干细胞球的传质模拟[J]. 高校化学工程学报 2015(01)
- [17].神经球结合异种细胞生长的实验研究[J]. 四川动物 2008(04)
- [18].胶质瘤C6肿瘤干细胞蛋白质组学初步分析[J]. 江苏大学学报(医学版) 2010(06)
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- [21].神经干细胞提取与培养方法的比较研究[J]. 中国药理学通报 2018(05)
- [22].胚胎小鼠神经干细胞的培养和诱导分化[J]. 成都医学院学报 2017(01)
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- [25].腺苷促进体外培养神经干细胞增殖作用研究[J]. 医药导报 2008(08)
- [26].胶质母细胞瘤干细胞的分离、培养及其生物学特性[J]. 吉林大学学报(医学版) 2012(06)
- [27].胰岛素样生长因子结合蛋白-4对大鼠骨髓间充质干细胞增殖和神经分化的影响[J]. 基础医学与临床 2016(04)
- [28].13-顺维甲酸体外诱导神经母细胞瘤干细胞分化的体外实验[J]. 中国循证儿科杂志 2010(05)
- [29].小鼠室管膜下区神经干细胞增殖及分化研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2015(06)
- [30].神经球方法体外无血清含生长因子培养的神经干细胞主要向神经胶质细胞分化[J]. 中国组织工程研究 2012(01)