HMGA1基因转染诱导NIH3T3细胞恶性转化研究

HMGA1基因转染诱导NIH3T3细胞恶性转化研究

论文摘要

利用基因转导技术将目的基因导入某一靶细胞,通过观察细胞生物学行为的变化来认知基因功能是目前应用最广泛、技术最成熟的基因功能研究方法。在本研究中,我们选择了自身无HMGA1蛋白表达的小鼠成纤维细胞NIH3T3为研究对象。将HMGA1基因的cDNA片段克隆入真核表达载体pcDNA3.0中,在脂质体介导下将质粒pcDNA3.0-HMGA1转染进小鼠成纤维细胞NIH3T3中,经G418筛选获得阳性克隆。细胞扩增培养后,进行RT-PCR分析,检测外源HMGA1基因在NIH3T3细胞中的转录表达。在确定HMGA1基因已经成功转染到NIH3T3细胞中后,我们从以下几个方面研究HMGA1对NIH3T3细胞生物学性能的影响:通过光镜观察到HMGA1基因转染后NIH3T3细胞的分化程度和形态学都发生了改变;MTT法和流式细胞术显示转染后细胞生长增殖加快;通过软琼脂集落形成实验发现转染后的NIH3T3细胞获得了非锚定依赖性生长能力;RT-PCR方法检测到转染后的细胞免疫抑制因子VEGF mRNA和FasL mRNA的表达显著增强。通过本研究我们观察到NIH3T3细胞由于稳定转染外源HMGA1基因而获得HMGA1蛋白表达之后,细胞的生物学特性发生了一定程度的变化,表现为细胞恶性转化,并且有明显的免疫抑制因子的mRNA表达。提示HMGA1是肿瘤发生发展、转移以及诱发免疫逃逸的关键分子。本研究为进一步探索HMGA1基因的功能与作用机制提供了一定的实验依据,并为以HMGA1为靶点的肿瘤基因治疗和预后评价奠定理论基础。

论文目录

  • 提要
  • 引言
  • 第一章 文献回顾
  • 一、高迁移率族蛋白概述
  • 二、HMGA 基因与分子结构
  • 三、HMGA 生物学功能
  • 第二章 实验研究
  • 第一节 稳定表达外源HMGA1 基因NIH3T3 细胞系的建立
  • 一、实验材料
  • 二、实验方法
  • 1. HMGA1 基因的获得
  • 2. 真核表达载体pcDNA3.0-HMGA1 的构建
  • 3. 重组基因pcDNA3.0-HMGA1 稳定转染 NIH3T3 细胞
  • 三、实验结果
  • 1. 真核表达载体pcDNA3.0-HMGA1 的构建
  • 2. 基因转染及细胞克隆的筛选
  • 3. 稳定转染细胞株的鉴定
  • 第二节 HMGA1 基因对 NIH3T3 细胞免疫生物学特性的影响
  • 一、实验材料
  • 二、实验方法
  • 1. 细胞形态学观察
  • 2. MTT 比色法检测稳定转染细胞株的增殖
  • 3. 流式细胞术检测稳定转染细胞株的细胞周期
  • 4. 软琼脂集落形成试验检测稳定转染细胞株的非锚定依赖性生长能力
  • 5. RT-PCR 法检测稳定转染细胞株免疫抑制因子及FasL mRNA 的表达
  • 三、实验结果
  • 1. 稳定转染细胞株形态学改变
  • 2. 稳定转染细胞株生长加快
  • 3. 稳定转染细胞株生长周期改变
  • 4. 稳定转染细胞株获得非锚定依赖性生长能力
  • 5. 稳定转染细胞株表达免疫抑制因子VEGF mRNA 和FasL m RNA
  • 讨论
  • 小结
  • 参考文献
  • 中文摘要
  • Abstract
  • 致谢
  • 攻读硕士期间已(待)发表的文章
  • 相关论文文献

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