论文摘要
近年来,阿霉素(Doxorubicin, DOX)被广泛应用于急、慢性白血病,淋巴瘤以及各种实体瘤的治疗过程中,然而它的临床使用因其心脏毒性的出现而受到了很大的限制。对于DOX心脏毒性的产生机制,目前存在很多假说,其中的一种主要观点认为是DOX在体内的代谢产物导致了其心脏毒性的产生。然而至今为止,DOX细胞内代谢途径的机制还没有得到清楚的阐明。为了更加详细的阐明DOX的代谢途径,我们发展了一种液质联用(Liquid chromatography-tandem mass spectrometry, LC/MS/MS)的分析方法同时测定亚细胞组分内的DOX及其主要代谢物阿霉素醇(Doxorubicinol, DOXo1)的水平。通过固相萃取,将细胞样品纯化和富集,进行方法学的验证,DOX及DOXol的线性范围分别为5.00-1000 ng/mL和0.50-50.0 ng/mL。应用建立的分析方法,比较了两种T淋巴细胞(Jurkat和CCRF-CEM)里全细胞内、细胞核部分及亚细胞部分的DOX及DOXol的分布情况。同时,采集DOX及代谢产物在初步分离的亚细胞组分中的“量—时”变化数据,监测DOX亚细胞代谢水平变化。DOX及DOXol在亚细胞组分内的分布不同及量-时曲线的差异可能归因于不同细胞里代谢酶的表达水平,代谢活性的不尽相同。利用免疫磁性的分离方法,进一步分离了线粒体、酸性细胞器等亚细胞组分,并应用蛋白免疫印迹(Western-blotting)方法对分离组分进行了纯度、回收率和完整性验证。我们将一抗(Anti-voltage-dependent anion-selective channel 1,anti-VDAC1)与初步分离的亚细胞组分混合,它能够特异性识别吸附靶细胞器线粒体表面的特征抗原,再与包被有二抗的磁珠结合,形成磁珠-线粒体的复合物,最后在磁力作用下,即可将线粒体和酸性细胞器等其他亚细胞组分分离开来。各亚细胞组分产量和纯度都较高,组分间不交叉污染,回收率在65%左右。而且,免疫磁性分离技术处理温和,分离得到的各组分保持了较好的完整性。应用免疫磁性技术,监测DOX及其代谢产物在人乳腺癌细胞(MCF-7/WT和MCF-7/ADR)亚细胞组分中的分布变化,并研究了P糖蛋白抑制剂(如维拉帕米)和趋溶酶体试剂(如氯化铵)等对其在亚细胞组分中分布的影响。为进一步阐明DOX代谢途径的机制,我们构建了稳定过表达醛-酮还原酶(Aldo-keto reductase 1C3, AKR1C3)的MCF-7细胞株。应用建立的LC/MS/MS分析方法,本研究比较了MCF-7/AKR1C3细胞和MCF-7/WT细胞的DOX代谢产物的水平变化。与对照组MCF-7/WT细胞相比,实验组MCF-7/AKR1C3细胞DOX的转化水平(DOXol/DOX)明显增加,有统计学差异(P=0.0373)。这一结果表明,AKR1C3可能是催化DOX代谢反应的主要参与酶之一。
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