拟南芥PLDα1赤霉素不敏感突变体的研究

拟南芥PLDα1赤霉素不敏感突变体的研究

论文摘要

本研究以拟南芥为材料,利用改良的农杆菌介导法将T-DNA导入拟南芥野生型植株,获得T-DNA导入突变,进行了特异PCR扩增、PCR-Southern杂交检测,结果证明T-DNA片段整合到了受体的基因组中;由于T-DNA插入点一般在转录调控区,得到了插入在PLDα1调控区对赤霉素不敏感的突变体,并出现了大量的矮化株。PLDα1表达量受到了影响,在植株生长后期,用脱落酸处理,植株的衰老延迟,具体结果如下:1.T-DNA插入标签群体的获得。用改造的PKYL7质粒和哥伦比亚野生型拟南芥为材料,通过改良的农杆菌浸染法,获得了拟南芥T-DNA插入标签群体。在盆栽选择和PCR选择的基础上,进行PCR-Southern杂交检测验证,结果证明T-DNA已经整合到拟南芥基因组中。2.T-DNA标签系的T0,T1代表型鉴定。通过观察,对拟南芥T-DNA标签系T0、T1代表型性状进行了鉴定,发现有以下几种类型:(1)矮秆,株高降低程度不一,T0代个别株高仅为7.5 cm,不结实。(2)早熟,程度不一,其中T0-01从种植到成熟仅25天。(3)生长能力有差异,T1代发现单茎及弱势生长的植株。(4)在T0中出现一定比例的白化苗,到抽苔后死亡。但仍有一株叶片白绿镶嵌,但结实较少。(5) T0代发现有不育株。3.拟南芥繁育技术试验。选用了3种培养方法进行拟南芥繁育技术试验:移栽法、蛭石法、5∶5法。在室内室温(26℃左右)和人工光照(白色荧光灯,16h光照,8h黑暗)条件下培养。在不同的培养条件下,野生型拟南芥均可很好的生长。但不同的培养方法,拟南芥的生长也有所不同:移栽法成活率较低,始花期延迟,初花高度矮,莲座数少,但生活周期变化不大,稍有延长。4.赤霉素不敏感突变体的筛选。对转基因T-DNA标签系进行赤霉素筛选,得到了对赤霉素不敏感的突变株。采用浓度为50、100、150PPM的赤霉素进行处理,生长受到影响,但相差不大,只是苗期生长受到影响较大。用如此大剂量赤霉素处理,突变株能较正常生长而未受到伤害,而未用赤霉素处理的植株几乎不能发芽,可以说明该突变株为赤霉素不敏感突变体。5.突变体和野生型拟南芥比较试验。结果表明突变体植株生长矮小,根伸长比较慢,差异显著。营养生长期的缩短势必造成营养生长和生殖生长的不足,生育期缩短。突变体花发育受到影响,造成花少,花小,甚至有的植株出现雄性不育现象,这可能和突变体营养生长有关。6.突变体遗传分析。突变体自交三代纯化后与野生型杂交,检测F1和F2代株高。结果表明,F1代株高有所提高,但又低于野生型,称之为中间型。而F2则出现高株、矮株、中间株三者的分离,比例是1:1:2,如果将中间株归于高株,可以呈现1:3的分离。这样看来,该突变是共显性突变。7.脱落酸处理分析。ABA处理24h后,叶绿素、SOD、POD、丙二醛含量、测定表明,Ws型受到影响较大,而PLDa1略有变化但不明显。8.赤霉素不敏感突变体插入位点的估测。通过生物软件在线查找和分析,T-DNA插入点在结构基因PLDα1的转录调控区,致使在激素存在下不能很好的转录表达,既对激素信号反应不敏感,而导致PLDα1表达量减少,脱落酸处理试验也能提供一定的证据。

论文目录

  • 英文缩略表
  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 1 引言
  • 1.1 “模式”植物拟南芥
  • 1.1.1 拟南芥的生物学特性
  • 1.1.2 拟南芥在植物遗传学研究中的应用
  • 1.1.3 拟南芥在植物分子生物学研究中的应用
  • 1.2 创造突变体的方法
  • 1.2.1 插入突变在功能基因研究中的应用
  • 1.2.2 转座子标签技术
  • 1.2.3 T-DNA 插入标签技术
  • 1.3 赤霉素( GAS)突变体的研究
  • 1.3.1 GA 缺陷型和不敏感型矮化突变体
  • 1.3.2 GA 对种子萌发和休眠的调控
  • 1.4 植物磷脂酶D
  • 1.4.1 PLD
  • 1.4.2 蛋白激酶与受体样激酶
  • 2+'>1.4.3 Ca2+
  • α'>1.4.4 PLDα
  • 1.4.5 展望
  • 2 研究方法与意义
  • 2.1 技术路线
  • 2.2 目的意义与创新点
  • 3 材料与方法
  • 3.1 材料
  • 3.1.1 拟南芥材料
  • 3.1.2 农杆菌菌株和质粒
  • 3.2 试剂
  • 3.2.1 植物培养基
  • 3.2.2 激素
  • 3.2.3 抗生素
  • 3.2.4 细菌培养基
  • 3.2.5 植物基因组DNA 提取液
  • 3.2.6 农杆菌质粒提取试剂
  • 3.2.7 Southern 杂交试剂
  • 3.2.8 电泳缓冲液配制
  • 3.2.9 酶与生化试剂
  • 3.2.10 植物组织中SOD、POD、CAT、MAD 的测定
  • 3.3 仪器
  • 3.4 方法
  • 3.4.1 拟南芥培养
  • 3.4.2 拟南芥种植条件
  • 3.4.3 拟南芥种子处理
  • 3.4.4 农杆菌的活化与培养
  • 3.4.5 农杆菌浸染的方法
  • 3.4.6 转化株系的分子检测
  • 3.4.7 突变体的遗传分析
  • 3.4.8 ABA 处理
  • 3.4.9 生理指标的测定
  • 4. 结果与讨论
  • 4.1 突变株的分子检测
  • 4.1.1 拟南芥DNA 的提取
  • 4.1.2 PCR 扩增
  • 4.1.3 PCR-Southern
  • 4.2 PLDΑ1 的结构
  • 4.3 突变株的培养
  • 4.3.1 野生型拟南芥栽培方法的比较
  • 4.3.2 T0 突变体的培养
  • 4.3.3 T1 突变体根生长特点
  • 4.4 突变株的筛选
  • 0, T1 代表型鉴定'>4.4.1 T-DNA 标签系T0, T1代表型鉴定
  • 4.4.2 赤霉素对突变体生长的影响
  • 4.4.3 始花期的变化
  • 4.4.4 拟南芥花发育的变化
  • 4.4.5 结荚数的变化
  • 4.4.6 Ws及其突变体形态差异
  • 4.4.7 突变体遗传分析
  • 4.5 生理指标的变化
  • 4.5.1 叶绿素含量的变化
  • 4.5.2 抗氧化酶系活力比较
  • 4.5.3 过氧化物酶活力比较
  • 4.5.4 丙二醛含量的比较
  • 4.6 讨论
  • 4.6.1 拟南芥的培养方法
  • 4.6.2 T-DNA 在基因工程中的作用
  • 4.6.3 PLDα1 突变体 T-DNA 的插入位置
  • 4.6.4 赤霉素不敏感突变
  • 4.6.5 脱落酸和赤霉素的关系
  • 4.6.6 突变体后代的遗传分析
  • 4.7 进一步研究的设想
  • 5 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 攻读期间发表的论文
  • 相关论文文献

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