香蕉炭疽病优势拮抗酵母菌的筛选及鉴定

香蕉炭疽病优势拮抗酵母菌的筛选及鉴定

论文摘要

香焦是重要的热带水果之一,也是世界热带水果中贸易量最大的一种商品。香焦属于呼吸跃变型果实,在后熟过程中,容易受到病原菌的侵染而发生病害,引起果实的大量腐烂,造成较大的经济损失。香蕉炭疽病(Banana anthracnose)是香蕉主要的采后病害,对其进行采后生物防治研究可以有效地控制香蕉采后病害的发生,延长贮藏期限,提高好果率,并确保果品安全卫生,减少经济损失。本实验从8个不同品种香蕉果实上分离纯化酵母菌;然后通过离体(in vitro)筛选和活体(in vivo)筛选的方法,筛选出对香蕉炭疽病有显著抑制作用的优势拮抗酵母菌株;再从形态学特征、生理生化特征和分子生物学特征3个方面鉴定优势拮抗酵母菌的种类。结果如下:1、本实验从8818、红香蕉、粉蕉、大蕉、巴西蕉、皇帝蕉、泰国蕉、芝麻蕉等8个不同品种香蕉的健康果皮表而及炭疽病果病健交界处,共分离纯化329株酵母菌。2、从典型香蕉炭疽病果上分离纯化病原菌,对其进行rDNA-ITS序列分析,得知该病原菌的rDNA-ITS序列全长为575 bp,与香蕉炭疽菌(Colletotrichum musae)有99%的同源性,结合该病原菌的生物学特性及其培养特征,可确定分离的病原菌为香蕉炭疽菌(Colletotrichum musae)。3、对分离的329株酵母菌进行离体筛选,筛选出对香蕉炭疽病原菌拮抗作用最明显的3株酵母菌Z-BR-16、Z-BP-④4和Z-BP-①I2,其抑菌圈半径分别达到4.75 mm、4.63 mm和3.63mm。4、将离体筛选出的对香蕉炭疽病原菌拮抗作用最明显的3株酵母菌进行活体筛选,筛选出拮抗效果最好且稳定的1株拮抗酵母菌Z-BR-16,以无菌水为对照,接种7d后,其1.0×108CFU/ml菌液对香蕉炭疽病的抑制率为75.94%。5、通过形态学特征和生理生化特征鉴定酵母菌Z-BR-16得知:细胞为圆形或椭圆形,多边芽殖,通常有假菌丝,真菌丝少或无,每个子囊中有1-4个帽形或上星形的孢子,成熟时子囊容易破裂而释放出孢子;发酵葡萄糖,不同化硝酸盐,经检索得知该酵母菌为异常毕赤酵母(Pichia anomala)。采用r DNA-ITS序列分析法对酵母菌Z-BR-16进行序列分析,得知该酵母菌的ITS序列全长为617 bp,与异常毕赤酵母(Pichia anomala)的rDNA-ITS序列同源性(Max ident)为100%。结合形态学特征、生理生化特征和rDNA-ITS序列分析3个方面的鉴定结果,得知优势拮抗酵母菌Z-BR-16为异常毕赤酵母(Pichia anomala)。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 1 前言
  • 1.1 香蕉产业
  • 1.2 香蕉采后主要病害种类
  • 1.3 果蔬采后生物防治研究进展
  • 1.3.1 果蔬采后生物防治的应用前景
  • 1.3.2 生物防治在果蔬采后上的应用
  • 1.4 研究目的意义及技术路线
  • 1.4.1 研究目的及意义
  • 1.4.2 技术路线
  • 2 材料与方法
  • 2.1 香蕉果实实验材料
  • 2.2 培养基
  • 2.2.1 常用培养基
  • 2.2.1.1 豆芽汁葡萄糖琼脂培养基
  • 2.2.1.2 马铃薯葡萄糖琼脂培养基
  • 2.2.1.3 葡萄糖-酵母汁-蛋白胨固体培养基
  • 2.2.1.4 酵母增值培养基
  • 2.2.1.5 麦芽汁固体培养基
  • 2.2.2 酵母菌鉴定培养基
  • 2.2.2.1 醋酸盐琼脂培养基
  • 2.2.2.2 Gorodkowa琼脂培养基
  • 2.2.2.3 玉米粉琼脂培养基
  • 2.2.2.4 酵母膏-葡萄糖-蛋白胨培养基
  • 2.2.2.5 McClary培养基
  • 2.2.2.6 糖类发酵培养基
  • 2.2.2.7 碳源同化培养基
  • 2.2.2.8 氮源同化培养基
  • 2.2.2.9 高渗透压培养基
  • 2.2.2.10 LB(Luria-Bertani)培养基
  • 2.3 酵母菌的分离、纯化
  • 2.3.1 样品采集
  • 2.3.2 蕉果附生物的分离
  • 2.3.3 酵母菌的分离、纯化
  • 2.3.3.1 稀释平板法分离酵母单菌落
  • 2.3.3.2 平板划线法分离酵母单菌落
  • 2.3.4 酵母菌种保藏
  • 2.3.4.1 斜而保藏法
  • 2.3.4.2 甘油冷冻保藏法
  • 2.4 病原菌的分离、纯化及保存
  • 2.4.1 病原菌的分离纯化
  • 2.4.2 病原菌保存
  • 2.4.2.1 斜面保藏法
  • 2.4.2.2 甘油冷冻保藏法
  • 2.5 病原菌的鉴定及致病性检测
  • 2.5.1 病原菌的鉴定
  • 2.5.1.1 病原菌的形态学特征鉴定
  • 2.5.1.2 香蕉炭疽病原菌的rDNA-ITS序列分析
  • 2.5.2 病原菌的致病性检测
  • 2.6 拮抗酵母菌的离体(IN VITRO)筛选
  • 2.6.1 酵母菌琼脂块的制备
  • 2.6.2 病原菌孢子悬浮液制备
  • 2.6.2.1 浓度梯度稀释
  • 2.6.2.2 血球计数板法
  • 2.6.3 离体初筛
  • 2.6.4 离体复筛
  • 2.6.4.1 离体复筛Ⅰ
  • 2.6.4.2 离体复筛Ⅱ
  • 2.7 拮抗酵母菌的活体(IN VIVO)筛选
  • 2.7.1 果实消毒
  • 2.7.2 果实分配
  • 2.7.3 果实刺伤
  • 2.7.4 接种菌液
  • 2.8 优势拮抗酵母菌的鉴定
  • 2.8.1 酵母菌的形态学特征观察
  • 2.8.1.1 菌落形态观察
  • 2.8.1.2 细胞形态及液体培养群体特征观察
  • 2.8.1.3 假菌丝的显微镜检
  • 2.8.1.4 掷孢子的显微镜检
  • 2.8.1.5 子囊孢子的显微镜检
  • 2.8.2 酵母菌的生理生化指标测定
  • 2.8.2.1 糖类发酵
  • 2.8.2.2 碳源同化
  • 2.8.2.3 氮源同化
  • 2.8.2.4 高浓度D-葡萄糖生长测试
  • 2.8.2.5 37℃生长测试
  • 2.8.3 酵母茵的rDNA-ITS序列分析
  • 2.9 数据分析
  • 3 结果与分析
  • 3.1 酵母菌的分离纯化结果
  • 3.2 病原菌的鉴定及致病性检测结果
  • 3.2.1 病原菌的形态特征观察结果
  • 3.2.2 病原菌的rDNA-ITS序列分析结果
  • 3.2.3 病原菌的致病性检
  • 3.3 拮抗酵母菌离体(IN VITRO)筛选结果
  • 3.3.1 拮抗酵母菌离体初筛
  • 3.3.2 拮抗酵母菌离体复筛
  • 3.4 拮抗酵母菌活体(IN VIVO)筛选结果
  • 3.4.1 不同浓度酵母菌液对香蕉炭疽病的抑制作用
  • 3.4.2 不同接种时间下酵母菌液对香蕉炭疽病的防治效果
  • 3.4.3 不同酵母菌株对香蕉炭疽病的抑制作用
  • 3.5 优势拮抗酵母菌的鉴定结果
  • 3.5.1 酵母菌形态学特征观察结果
  • 3.5.2 酵母菌生理生化指标测定结果
  • 3.5.2.1 糖类发酵实验结果
  • 3.5.2.2 碳源同化实验结果
  • 3.5.2.3 氮源同化实验结果
  • 3.5.2.4 其他生理生化特征培养结果
  • 3.5.3 酵母菌Z-BR-16的rDNA-ITS序列分析结果
  • 4 讨论
  • 4.1 酵母菌的分离
  • 4.2 关于香蕉炭疽病原菌的分离及鉴定
  • 4.3 关于拮抗酵母菌的筛选
  • 4.4 关于优势拮抗酵母菌的鉴定
  • 4.5 关于下一步研究计划
  • 5 结论
  • 5.1 酵母菌的分离纯化
  • 5.2 香蕉炭疽病原菌分离、鉴定及致病性检测
  • 5.3 离体筛选拮抗酵母菌
  • 5.4 活体筛选拮抗酵母菌
  • 5.5 优势拮抗酵母菌的鉴定
  • 参考文献
  • 附录
  • 附录1 酵母各属检索表
  • 附录2 部分试剂及其配制方法
  • 相关论文文献

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