论文摘要
正常细胞在体外培养时生命期是有限的,细胞增殖一段时间后会出现群体生长缓慢,有丝分裂停滞,进而衰老死亡,这种现象叫做复制衰亡（replicative senescence）。细胞的这种生物学现象导致一些体外培养的细胞因生长增殖能力衰竭、数量不足而不能充分满足实验研究和临床应用的要求。后来人们观察到一些肿瘤细胞具有持续生长和增殖的能力,可长期传代,即细胞的永生化（immortalization）。进一步研究发现部分永生化的肿瘤细胞中含有病毒基因（virus gene）,因此通过转染技术将病毒基因导入并整合在体外培养的正常细胞基因组上,使其出现永生化就成为了细胞实验研究的热门。猿猴病毒40（simian virus 40,SV40）是60年代初发现和分离的猴肾细胞病毒,人是其自然宿主。SV40的基因组能编码T（Large T）和t（small t）抗原。T抗原具有ATP酶和DNA解旋酶活性,使蛋白质丝氨酸/苏氨酸残基磷酸化、ADP核糖基化和己酰基化。T抗原还有活化宿主细胞核糖体基因、诱导DNA合成、修饰蛋白质合成起始因子等作用。t抗原能反式激活RNA多聚酶基因的启动子,以及c-myc和c-fos癌基因转录,使细胞质肌动蛋白缺失和细胞粘附性下降。T抗原为细胞转化启动所必需的,对转化起决定作用,而且转化细胞表型的维持必须要T抗原的连续表达。t抗原对细胞的转化是非必需的,但可起加强作用,两者共同维持转化表型。因此SV40T抗原基因被广泛应用于诱导人类和动物细胞的永生化。SV40T抗原引起细胞转化是一个复杂的过程,目前仍不完全清楚其机制。一些研究发现SV40T抗原能与肿瘤抑制因子pRb和p53相互作用,影响它们调控正常细胞生长周期和细胞凋亡的功能,也有研究认为SV40T抗原基因可通过调节端粒酶的活性使细胞的端粒长度得到维持。细胞的永生化被认为可能是向肿瘤细胞转化的必经阶段,因其安全性受到质疑制约了转化细胞应用于临床的前景。我科前期实验利用位点特异性重组酶Cre/loxP系统联合SV40T抗原基因成功构建了可逆性永生化黑素细胞（reversible immortalized melanocytes, RIMC）。其基本原理是利用基因打靶技术,引入Cre/loxP系统,该系统具有高度保守性和特异性,可准确的根据loxP位置切除整合在细胞基因组的外源性SV40T抗原基因。实验研究发现该细胞S-100、HMB-45等细胞表型未发生改变,而且软琼脂克隆实验和裸鼠移植实验也未观察到致瘤性。为进一步了解SV40T抗原基因对诱导的RIMC生物学性状和功能,特别是潜在致瘤性的影响,我们对培养至第15代的IMC（immortalized melanocytes,IMC）进行染色体分析,免疫组织化学方法检测HLA-DR和hTERT蛋白的表达,RT-PCR检测hTERT mRNA表达;对第20代细胞进行MTT比色法分析细胞增殖情况,流式细胞仪分析细胞周期和DNA倍体;RT-PCR半定量分析细胞hMLH1、hMSH2错配修复基因表达;并提取细胞基因组,对1p22（D1S187）、5q14（D5S107）、18q12.2-12.3（D18S34）三个位点PCR产物进行变性聚丙烯酰胺电泳分析微卫星不稳定性（microsatellite instability,MI）;同时对细胞的酪氨酸酶活性和黑素含量与正常MC进行对比,分析细胞的生物学功能变化。结果表明永生化和去永生化的黑素细胞均保持正常核型、HLA-DR的表达不受体外长期传代培养和SV40T抗原的影响;SV40T抗原不通过上调端粒酶逆转录酶活性途径介导细胞永生化;细胞周期分析和MTT比色法分析细胞增殖实验表明IMC的生长增殖较正常MC明显,长期培养未见复制衰亡现象。而切除SV40T抗原基因后的去永生化黑素细胞可出现部分凋亡,生长变缓;错配修复基因hMLH1、hMSH2在IMC中较正常细胞表达上调;D1S187、D5S107、D18S34三个位点上均未出现条带的增加和缺失,无微卫星不稳定性发生,保持了细胞的遗传稳定性。细胞的酪氨酸酶活性和黑素含量与体外培养的正常MC无明显差别。上述结果说明转化细胞不易向恶性转化,并能保持MC正常的黑素代谢的生物学功能,可以为自体MC移植治疗白癜风和MC的实验研究提供有用的种子细胞。
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- [4].脂质体介导SV40T基因转染东方田鼠成纤维细胞的研究[J]. 中国兽医科学 2016(06)
- [5].永生化骨髓间充质干细胞模型的构建[J]. 现代医院 2015(01)
- [6].SV40T抗原荧光真核表达载体构建及在胰岛细胞中的表达[J]. 中国组织工程研究与临床康复 2008(40)
- [7].不同品系SV40T转基因小鼠血浆胃泌素水平测定[J]. 郑州大学学报(医学版) 2010(06)
- [8].纯合子胃壁细胞特异性表达SV40T抗原转基因小鼠品系的建立[J]. 郑州大学学报(医学版) 2010(06)
- [9].SV40T抗原真核表达载体的构建及表达[J]. 郑州大学学报(医学版) 2008(02)
- [10].携带双自杀基因且可诱导敲除SV40T的逆转录病毒载体的构建与结构鉴定[J]. 医学分子生物学杂志 2008(04)
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- [12].利用诱导因子Oct4、Sox2和SV40T的mRNA介导体细胞重编程研究[J]. 畜牧兽医学报 2012(11)
- [13].SV40T抗原真核表达载体的构建及其在食管癌细胞EC9706中的表达鉴定[J]. 山东医药 2008(26)
- [14].转基因重组质粒ATP4B-SV40T-IRES-GFP的构建及鉴定[J]. 世界华人消化杂志 2012(04)
- [15].SV40T促进施旺细胞重编程为间充质干细胞[J]. 基础医学与临床 2019(10)
- [16].SV40T抗原肝细胞特异性表达载体的构建与鉴定[J]. 生物技术世界 2016(05)
- [17].新生大鼠前软骨干细胞株的体外培养分选、鉴定及永生化研究(英文)[J]. 中国组织工程研究与临床康复 2008(43)
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