论文摘要
背景骨缺损的治疗至今仍是骨科临床上的一个难题。目前最好的治疗方法依然是自体骨的移植,但是自体骨来源比较有限,而且自体骨取材会给患者带来一定的痛苦及并发症,极大的限制了其临床应用。近年来,骨组织工程发展迅速,骨组织工程对骨缺损的治疗成为研究和临床应用的一个热点领域。组织工程骨诱导新生骨的形成和血管化问题已成为制约其临床应用的关键因素。骨形态发生蛋白(BMP)的新骨形成作用已被广泛认可,血管内皮生长因子(VEGF)是最为重要的促新生血管形成细胞因子。有研究发现,在骨缺损或骨损伤的修复过程中,BMP和VEGF都有大量的表达上调,并相互协同,共同修复缺损的骨组织。VEGF基因和BMP基因的联合应用,可以实现新生骨形成和骨血管化的双重重建,是完善骨缺损修复的一个合理的研究思路和方法。利用缺陷型单纯疱疹病毒载体携带外源性的BMP及VEGF基因进入组织工程骨的种子细胞中,并使其与支架材料进行复合,组建BMP和VEGF双基因修饰的组织工程骨是目前国际上对骨缺损研究的一个热点。缺陷型单纯疱疹病毒载体具有安全、高效、稳定表达各生长因子基因的优点,目前开始应用于基因药物的研发中。目的(1)构建rdHSV-1-VEGF165-BMP4骨缺损修复载体,并使其在种子细胞MSCs中大量共表达。(2)观察rdHSV-1-VEGF165-BMP4与生物活性玻璃(BG)复合后骨胶原蛋白、骨钙素、碱性磷酸酶活性等指标,鉴定组织工程骨的体外成骨能力。(3)验证rdHSV-1-VEGF165-BMP4复合BG材料的组织工程骨在修复骨缺损模型中的治疗效果。材料和方法(1)取人骨肉瘤成骨样细胞(MG-63),并进行裂解处理,克隆出人BMP4基因及VEGF165基因;对单纯疱疹病毒HSV1进行改造,组建缺陷型单纯疱疹病毒载体系统;将调取的BMP4及VEGF165基因通过穿梭质粒载入单纯疱疹病毒载体,构建rdHSV-1-VEGF165-BMP4病毒载体。(2)日本大耳白兔的骨髓间质干细胞(MSCs)的分离、培养和体外增殖。(3)前3部分的实验分为两组:rdHSV-1-VEGF165-BMP4实验组(或rdHSV-1-VEGF165-BMP4与BG复合组织工程骨)和对照组,分别感染MSCs细胞;第4部分分为4组:rdHSV-1-VEGF165-BMP4复合BG组(VEGF165-BMP4组)、单纯生物玻璃组(BG组)、自体骨髓移植组(AB组)及对照组(CON组),分别植入建立的兔桡骨缺损部位。(4)感染rdHSV-1-VEGF165-BMP4病毒后48小时,通过间接免疫荧光、蛋白免疫印迹反应、免疫组织化学、酶联免疫吸附实验等方法检测各组VEGF165及BMP4基因的表达情况。(5)感染rdHSV-1-VEGF165-BMP4两周后,对VEGF165-BMP4实验组及对照组CON进行碱性磷酸酶活性含量的检测,骨胶原蛋白、骨钙素的检测以鉴定其成骨能力。(6)将感染rdHSV-1-VEGF165-BMP4病毒的MSCs细胞与生物玻璃材料进行复合,并于复合后2周观察碱性磷酸酶活性、胶原蛋白及骨钙素的表达情况。(7)构建兔桡骨骨缺损模型,并将组织工程骨复合物植入骨缺损部位,并于植入后4、8、12周用X线、免疫组织化学、骨密度检测等观察体内成骨情况。结果(1)成功构建了rdHS V-1-VEGF165-BMP4病毒载体系统。(2)感染MSCs细胞后,VEGF165及BMP4基因的mRNA转录水平及蛋白表达水平显著高于对照组。(3)感染MSCs细胞后,VEGF165-BMP4组细胞中碱性磷酸酶活性含量、骨胶原蛋白、骨钙素显著高于CON组的水平。(4)感染rdHSV-1-VEGF165-BMP4病毒的MSCs细胞与生物玻璃材料进行复合后,其碱性磷酸酶活性含量、骨胶原蛋白、骨钙素表达显著高于CON组的水平。(5)骨缺损模型修复实验中X线结果显示,VEGF165-BMP4组及AB组植入后4周,已有骨痂形成,植入后8周已有大量骨痂、骨小梁及皮质骨形成,而在BG组和CON组形成很少。植入后12周,VEGF165-BMP4组及AB组形成了完整的板层骨,骨髓腔完全贯通,骨缺损完全修复,而BG组合CON组骨缺损处主要被结缔组织填充。(6)骨缺损模型修复实验中组织学检测结果显示,VEGF165-BMP4组成骨细胞活跃,可见大量骨母细胞;VEGF165-BMP4组合AB组形成的骨小梁及编制骨都多于BG组及CON组。组织学评分显示,VEGF165-BMP4组骨痂的生成量显著多于BG组及CON组(P<0.01)。(7)生物力学检测显示,术后的第4、8、12周时VEGF165-BMP4组的最大抗折载荷均高于BG组和CON组(P<0.01),但VEGF165-BMP4组与AB组无显著差异(P<0.01)。(8)骨密度检测显示,VEGF165-BMP4组和AB组的骨密度值间无差异,但二者的骨密度均显著的高于BG组合CON组(P<0.01)。结论利用缺陷型单纯疱疹病毒载体系统进行VEGF及BMP基因感染的兔MSCs细胞复合生物玻璃(BG)构建的组织工程骨,在体外水平上可以使MSCs细胞安全、高效、稳定的表达VEGF165及BMP4基因;具有显著的体外成骨作用。建立的组织工程骨在体内可以促进成骨和血管化作用,对缺损的兔桡骨具有良好的骨传导性及骨诱导性,对骨缺损的修复效果显著优于单纯BG材料,且与自体骨移植效果相似。图18幅,表29个,参考文献165篇。
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- [1].中国北方人群非综合征性唇腭裂与BMP4基因多态性的关系[J]. 北京口腔医学 2013(02)
- [2].BMP4在胶质母细胞瘤的多药耐药中的作用及机制研究[J]. 中国神经肿瘤杂志 2013(02)
- [3].BMP4对人牙周膜细胞骨钙素分泌的影响[J]. 现代口腔医学杂志 2008(04)
- [4].BMP4、HIF-1α在上皮性卵巢癌中的相关性研究[J]. 南通大学学报(医学版) 2019(04)
- [5].BMP4在诱导骨髓间充质干细胞向生殖细胞分化中的作用[J]. 安徽农业大学学报 2016(05)
- [6].中国美利奴羊BMP4基因的克隆、序列分析与真核表达[J]. 石河子大学学报(自然科学版) 2014(06)
- [7].左乙拉西坦对致痫大鼠海马组织中BMP4表达的影响[J]. 黑龙江医药科学 2014(03)
- [8].皖西白鹅BMP4基因部分cDNA序列的克隆及序列分析[J]. 畜牧兽医学报 2008(07)
- [9].黄淮山羊骨形态发生蛋白4(BMP4)基因的克隆及优化表达[J]. 中国兽医学报 2010(10)
- [10].不同绵羊群体BMP4基因多态性与产羔数关系分析[J]. 河北农业大学学报 2012(01)
- [11].梅花鹿骨形态发生蛋白BMP4基因的克隆与序列分析[J]. 福州大学学报(自然科学版) 2012(02)
- [12].BMP4增强结直肠癌耐药细胞化疗敏感性的作用及机制[J]. 华中科技大学学报(医学版) 2015(03)
- [13].猪BMP4基因原核表达及优化[J]. 西北农业学报 2011(01)
- [14].哺乳动物BMP4基因A型启动子的比较分析[J]. 安徽农业科学 2010(11)
- [15].BMP4调控龟甲提取物促骨髓间充质干细胞的增殖作用[J]. 中药材 2015(01)
- [16].BMP4和拮抗剂Noggin在显性脊柱裂胎鼠发病中的作用[J]. 中国妇幼保健 2017(20)
- [17].BMP4基因rs17563位点多态性与中国华东地区部分人群非综合征性唇腭裂的关系[J]. 江苏医药 2012(08)
- [18].Notch信号参与BMP4诱导的间充质干细胞成骨分化及其机制的初步探讨[J]. 中国生物工程杂志 2017(04)
- [19].BMP2和BMP4基因在草原红牛睾丸组织中的表达量分析[J]. 中国兽医学报 2016(04)
- [20].从BMP4表达探讨地黄多糖诱导MSCs向神经细胞分化的机理[J]. 湖南中医杂志 2011(03)
- [21].BMP4参与海人酸损伤后成年大鼠海马齿状回颗粒细胞增殖及胶质增生[J]. 局解手术学杂志 2011(03)
- [22].黄连素调节BMP4转录通路基因表达改善2型糖尿病地鼠内脏白色脂肪组织胰岛素抵抗的研究[J]. 中国中药杂志 2016(03)
- [23].BMP4基因T538C多态性与中国东北地区非综合征性唇腭裂的相关性研究[J]. 实用口腔医学杂志 2014(03)
- [24].携载BMP4基因的核壳结构纳米粒子修复兔桡骨临界骨缺损的研究[J]. 安徽医科大学学报 2017(11)
- [25].尖鼠牙齿发育中Shh与Bmp4基因的表达[J]. 北京口腔医学 2009(03)
- [26].鸡bmp4过表达和敲除载体构建及活性验证[J]. 生物学杂志 2020(03)
- [27].BMP4对胃癌细胞迁移和侵袭的影响及其作用机制[J]. 山东医药 2017(08)
- [28].苏淮猪BMP4基因克隆、组织表达及真核表达[J]. 江苏农业学报 2016(03)
- [29].龟板提取物靶向BMP4通路抑制PC12细胞凋亡[J]. 中草药 2011(01)
- [30].脑室内注射对β-淀粉样蛋白大鼠海马BMP4和nestin表达的研究[J]. 重庆医学 2008(07)